Introdução de proteínas efetoras bacterianas em células de mamíferos por eletroporação

0 vistas4:41 min • July 8th, 2025

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Certos patógenos bacterianos gram-negativos entram em contato com as células hospedeiras e empregam sistemas de secreção para injetar proteínas efetoras, facilitando a invasão celular.

Para entregar proteínas efetoras em células de mamíferos in vitro, pipete células de mamíferos em uma cubeta resfriada. Adicione proteínas efetoras bacterianas marcadas com peptídeo de ligação à estreptavidina e misture.

Realize a eletroporação. Durante a corrida, pulsos elétricos curtos interrompem a bicamada lipídica da membrana da célula hospedeira para formar poros transitórios, facilitando a entrada celular de proteínas efetoras. Coloque as células em uma placa de vidro contendo mídia, permitindo que as células se recuperem e adiram à placa. Os poros se fecham novamente, prendendo as proteínas dentro.

Após a recuperação celular, fixe e permeabilize as células para acesso de anticorpos aos alvos intracelulares. Incube com uma solução de bloqueio contendo proteínas para evitar a ligação de anticorpos não específicos. Adicione anticorpos primários que se ligam especificamente à marca do peptídeo de ligação à estreptavidina nas proteínas efetoras intracelulares.

Introduza anticorpos secundários marcados com fluoróforo que se ligam a anticorpos primários ligados a proteínas efetoras para visualização. Adicione aglutinina de gérmen de trigo conjugada com fluoróforo e DAPI para corar glicoproteínas e DNA da membrana celular, respectivamente.

Usando um microscópio confocal, visualize sinais de fluorescência de proteínas efetoras, membranas celulares e DNA.

Células eletroporosadas com sucesso exibem sinais fluorescentes intracelulares significativos de proteínas efetoras, sugerindo sua localização intracelular.

Para iniciar este procedimento, transfira 400 microlitros de suspensão celular para uma cubeta pré-resfriada e, em seguida, adicione 20 microgramas de proteína selecionada para atingir uma concentração final de 50 microgramas por mililitro. Agite a cubeta suavemente, cerca de 10 vezes para misturar e evitar danificar as células. Depois disso, seque a parte externa da cubeta com uma toalha de papel para evitar arco elétrico no eletroporador.

Coloque a amostra no eletroporador e ajuste-a para 0,3 quilovolts por 1,5 a 1,7 milissegundos. Imediatamente após a eletroporação, agite a cubeta suavemente, cerca de 10 vezes, para misturar bem a amostra antes de prosseguir para a fixação e coloração por imunofluorescência ou purificação por afinidade.

Após quatro horas de recuperação da eletroporação, lave as células com PBS estéril. Em seguida, fixe as células em metanol 100% por dois minutos em temperatura ambiente. Em seguida, lave as células com PBS estéril mais três vezes. Permeabilize as células com 0,4% de Triton X-100 em PBS por 15 minutos. Ajuste o comprimento de permeabilização e a força do Triton X-100 de acordo com o epítopo e a localização da proteína alvo. Em seguida, bloqueie as células com 5% de BSA em PBS por uma hora em temperatura ambiente.

Depois, lave-os três vezes com PBS. Em seguida, incube-os com o anticorpo primário na solução de ligação ao anticorpo durante a noite, a 4 graus Celsius com um balanço suave.

No dia seguinte, lave as células mais quatro vezes com PBS. Em seguida, incube-os com o anticorpo secundário conjugado com fluorescência apropriado na solução de ligação ao anticorpo. Adicione outras manchas conforme necessário, como 5 aglutininas micromolares de gérmen de trigo, ou WGA, conjugadas a Alexa 647 ou DAPI por uma hora em temperatura ambiente e protegidas da luz. Em seguida, lave as células com PBS cinco vezes e armazene a 4 graus Celsius, protegidas da luz até que estejam prontas para serem fotografadas.

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Última atualização: 22 agosto 2026