JoVE Encyclopedia of Experiments
Imunologia
0 vistas • 5:00 min • July 8th, 2025
Comece com células cancerígenas privadas de sulfato expressando uma proteína de superfície marcada com GFP.
Adicione sulfato radiomarcado e nanocorpos anti-GFP modificados - um anticorpo de cadeia única carregando um motivo de tirosina-sulfatação e incuba.
As células privadas de sulfato internalizam sulfatos radiomarcados, incorporando-os aos componentes celulares.
O nanocorpo anti-GFP se liga à proteína de superfície marcada com GFP e é endocitado em uma vesícula. Esta vesícula transporta o complexo proteico nanobody-surface ao longo de vias intracelulares específicas, incluindo a rede trans-Golgi, ou TGN.
Dentro do TGN, a sulfotransferase na presença de um substrato transfere um sulfato radioativo para resíduos específicos de tirosina no nanocorpo, marcando-o radiomarcando.
Lave as células. Em seguida, lise as células.
Centrifugue o lisado para remover grandes detritos celulares. Isole os nanocorpos usando um método de purificação baseado em esferas de níquel.
Carregue a fração isolada em um gel SDS-PAGE para separar o nanocorpo radiomarcado em bandas distintas.
Submeter o gel a autorradiografia.
A autorradiografia resultante revela regiões escurecidas, indicando a presença do nanocorpo radiomarcado.
Em uma capa de cultura de células, semeie entre 400.000 e 500.000 células HeLa que expressam de forma estável uma proteína repórter marcada com GFP em placas de 35 mm ou aglomerados de 6 poços, com meio completo contendo antibióticos. Incube as células a 37 graus Celsius com 7,5% de dióxido de carbono durante a noite. No dia seguinte, remova o meio completo e lave as células duas vezes com 1X PBS em temperatura ambiente. Deixe as células morrerem de fome com meio livre de sulfato por 1 hora a 37 graus Celsius com 7,5% de dióxido de carbono.
Enquanto isso, em um exaustor ventilado ou bancada designada para trabalhos de radioatividade, prepare um meio de rotulagem de sulfato contendo 0,5 milicuries por mililitro de sulfato de sódio S35 em meio livre de sulfato. Em seguida, misture o VHH de dupla camada de sulfe em 1X PBS com meio de marcação de sulfato até uma concentração final de 2 microgramas por mililitro. Quando a incubação estiver completa, substitua o meio sem sulfato por 0,7 mililitros da mistura de meio preparada, contendo sulfato de sódio S35 e VHH de dupla camada Incube as células por 1 hora a 37 graus Celsius em uma incubadora de dióxido de carbono a 7,5%, projetada para trabalhar com radioatividade.
Depois disso, remova o meio de rotulagem e lave as células duas a três vezes com 1X PBS gelado em uma placa de resfriamento ou no gelo. Adicione 1 mililitro de tampão de lise, suplementado com dois PMSF milimolares e coquetel inibidor de protease 1X. Incube as células por 10 a 15 minutos em uma plataforma de balanço a 4 graus Celsius. Em seguida, raspe e transfira o lisado para um novo tubo de 1,5 mililitro, vortex o lisado e coloque-o em um rotador de ponta a ponta a 4 graus Celsius por 10 a 15 minutos. Centrifugue a 10.000 g e a 4 graus Celsius por 10 minutos para preparar um lisado pós-nuclear. Transfira o lisado pós-nuclear para um tubo de 1,5 mililitro contendo esferas de níquel preparadas e incube em um agitador de ponta a ponta a 4 graus Celsius por 1 hora para isolar os nanocorpos.
Depois disso, lave as esferas três vezes com 1X PBS ou tampão de lise com peletização suave a 1000 g por 1 minuto. Remova cuidadosamente todo o tampão de lavagem das contas e adicione 50 microlitros de tampão de amostra 2X. Ferva a 95 graus Celsius por 5 minutos. Em seguida, carregue as esferas fervidas em um gel midi 12,5% SDS-PAGE e execute de acordo com o protocolo PAGE padrão até que o corante de referência atinja o final do gel separador. Fixe o gel de separação em aproximadamente 30 mililitros de tampão de fixação por 1 hora em temperatura ambiente. Lave o gel três vezes com aproximadamente 50 mililitros de água deionizada e, em seguida, seque o gel, conforme descrito no protocolo de texto. Quando a secagem estiver concluída, use um gerador de imagens de tela de fósforo para auto-radiografar a imagem do gel.
Este estudo investiga a internalização e marcação radiativa de uma proteína de superfície marcada com GFP em células cancerígenas privadas de sulfato. A metodologia envolve o uso de nanocorpos anti-GFP modificados para rastrear as vias intracelulares e modificações da proteína.
Este método permite o rastreamento preciso de modificações pós-traducionais e do tráfego intracelular de proteínas de superfície, apoiando a validação de alvos na descoberta de fármacos em oncologia e neurociência. Ao quantificar a incorporação de sulfato radiomarcado em complexos de nanocorpos e proteínas, fornece subsídios mecanicistas sobre vias de transporte retrógrado essenciais para avaliar o engajamento do alvo e reduzir os riscos no desenvolvimento de biológicos. A abordagem aumenta a confiança preditiva na fase inicial de descoberta ao associar eventos de modificação proteica a desfechos funcionais de tráfego.
Posiciona o método na fase inicial de descoberta até a identificação de compostos líderes, apoiando a verificação de hipóteses sobre o tráfego de proteínas de superfície e modificações pós-traducionais em cascatas de validação de alvos.
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Última atualização: 29 agosto 2026