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Neurociência
0 vistas • 3:33 min • July 8th, 2025
Comece com uma cultura de neuroesferas, aglomerados flutuantes de células progenitoras neuroepiteliais.
Transfira essas neuroesferas para uma folha de incorporação.
Remova a mídia. Adicione uma gota de matriz de membrana extracelular contendo proteínas e fatores de crescimento a cada neuroesfera.
Incubar para que a matriz se solidifique, incorporando as neuroesferas dentro dela.
Agora, transfira as neuroesferas incorporadas à matriz usando meios de neuroesferas para uma placa de cultura contendo meios de neuroesferas.
incubar. A matriz da membrana extracelular e seus constituintes facilitam a diferenciação das células progenitoras neuroepiteliais em células neuroepiteliais que proliferam e formam lúmens cheios de líquido.
Após a incubação, transfira as neuroesferas para um frasco giratório contendo meios organoides cerebrais pré-aquecidos. Incube com agitação para aumentar a difusão de oxigênio e nutrientes, promovendo o crescimento celular.
Fatores de crescimento e inibidores de pequenas moléculas em meios promovem a diferenciação neural e se desenvolvem em células de regiões cerebrais específicas, formando organoides cerebrais maduros.
Para iniciar este procedimento, colete as neuroesferas com uma micropipeta de 200 microlitros, usando uma ponta de 2 milímetros previamente cortada com tesoura estéril. Em seguida, coloque as neuroesferas a aproximadamente 5 milímetros de distância uma da outra em um filme de parafina em um prato de 100 milímetros e remova cuidadosamente o máximo possível do meio restante. Em seguida, adicione uma gota de matriz EHS em cada neuroesfera.
Incube as gotas da matriz EHS com as neuroesferas por 15 minutos a 37 graus Celsius. Depois disso, lave cuidadosamente as neuroesferas do filme de parafina, lavando-as com meio neuroesfera. Posteriormente, incube as neuroesferas pelos próximos quatro dias e adicione 2 mililitros de meio neurosfera fresco no segundo dia.
Neste procedimento, adicione 100 mililitros de meio organoide cerebral a cada frasco giratório através de seus braços laterais e pré-aqueça o meio na incubadora a 37 graus Celsius por pelo menos 20 minutos. Em seguida, certifique-se de que as neuroesferas estejam todas separadas. Se dois ou mais estiverem conectados por meio de matriz EHS, separe-os cortando a matriz de conexão com um bisturi.
Configure um programa de agitação a 25 RPM. Transfira cuidadosamente as neuroesferas embutidas na matriz EHS para os frascos giratórios contendo 100 mililitros de meio organoide. Em seguida, coloque os frascos giratórios em uma plataforma de agitação magnética na incubadora por 14 dias a 37 graus Celsius. Este é o dia zero da cultura organoide. Troque o meio uma vez por semana, removendo metade do meio e adicionando a mesma quantidade de meio fresco.
Este artigo descreve um método para diferenciar células progenitoras neuroepiteliais em organoides cerebrais maduros utilizando neuroesferas e uma matriz extracelular. O processo envolve a incorporação de neuroesferas em uma matriz, sua incubação e posterior transferência para um frasco agitado para promover um crescimento aprimorado.
Organoides cerebrais humanos derivados de iPSCs fornecem um sistema fisiologicamente relevante para modelar o neurodesenvolvimento inicial e mecanismos de doenças. Este método in vitro permite a validação de alvos e triagem fenotípica em um contexto celular humano relevante para a doença, apoiando a redução de riscos mecanicistas em pipelines de descoberta. A abordagem aumenta a confiança preditiva para candidatos terapêuticos direcionados ao SNC ao recapitular a diferenciação específica de regiões e a organização semelhante à de tecidos.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos líderes e a avaliação pré-clínica, fornecendo uma ponte relevante para humanos entre ensaios redutivistas e modelos in vivo.
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Última atualização: 22 agosto 2026