Uma técnica para gerar organoides cerebrais a partir de células-tronco embrionárias humanas

0 vistas4:25 min • July 8th, 2025

Pegue colônias de células-tronco embrionárias humanas, ou hESCs, cultivadas em uma matriz de suporte.

Aspire o meio e adicione enzimas que degradam a matriz.

Lave para remover as enzimas. Em seguida, adicione um meio e uma pipeta para desalojar as colônias soltas, quebrando-as em cachos menores.

Transfira os cachos para um meio fresco e incuba, permitindo que os cachos formem agregados esféricos.

Deixe as esferas assentarem e remova todas as células mortas.

Incubar com um meio contendo fator de crescimento básico de fibroblastos, ou bFGF, para proliferação celular.

Reabasteça com meios contendo concentrações gradualmente decrescentes de bFGF para facilitar a diferenciação celular.

Introduzir um meio de indução neural, promovendo a diferenciação de hESC em células-tronco neurais ou NSCs, transformando as esferas em organoides exibindo uma estrutura neural semelhante a uma roseta.

Adicione antibióticos para evitar o crescimento de micróbios contaminantes durante a cultura prolongada.

As NSCs se diferenciam em neurônios e glia, desenvolvendo progressivamente os organoides em uma estrutura complexa semelhante a um córtex cerebral.

Dilua a solução estoque de protease até uma concentração de trabalho adicionando 1 mililitro da solução estoque a 5 mililitros de meio DMEM ou F12 para cada placa de 6 poços de hESCs. Aspirar e remover os meios de cultura de células e, em seguida, cobrir as hESCs com a solução de protease. Coloque as placas na incubadora por 10 a 15 minutos ou até que as bordas das colônias se arredondem e comecem a se separar da matriz, mas antes que elas se arredondem completamente.

Incline a placa, aspire a solução de protease e lave suavemente as células com 2 mililitros de DMEM ou F12 para cada poço três vezes. Certifique-se de que as colônias permaneçam presas à matriz.

Portanto, é fundamental que as peças do SL tenham o tamanho apropriado. Portanto, certifique-se de que eles estejam em exibição pelo tempo apropriado. Se eles estiverem lá por muito pouco tempo, pode ser muito difícil eliminá-los e separá-los. E se eles ficarem lá por muito tempo, eles podem simplesmente sair durante as etapas de lavagem.

Adicione de volta cerca de 1 a 1,5 mililitros de meio mTESR fresco a cada poço e lave as células da placa em um tubo cônico de 50 mililitros usando pipetagem suave, aspire e dispense hESCs dentro da placa até que atinjam aproximadamente 1/30 de seu tamanho original. Agora, os aglomerados de colônias se assemelham a pedaços de 250 a 350 micrômetros.

Transfira as células para um único frasco T75 de fixação ultrabaixa, contendo mililitros de meio mTESR sem bFGF. No dia seguinte, incline o frasco, de modo que as células vivas se acumulem no canto. Se houver um grande número de células aderidas ao fundo do frasco, use uma pipeta de 10 mililitros para transferir as células para um novo frasco.

Espere ter uma alta população de células mortas nos primeiros dias. Assim que as células se assentarem, aspire o meio e as células mortas, deixando cerca de 10 mililitros de meio contendo as células vivas, e adicione 20 mililitros de meio de baixo bFGF, suplementado com 30 nanogramas por mililitro de bFGF. Após dois dias, verifique as células. A maioria das células deve parecer saudável e brilhante.

No entanto, se mais de um terço das células parecerem escuras, incline o frasco e substitua 20 mililitros de meio por 20 mililitros de meio de baixo bFGF suplementado com 20 nanogramas por mililitro de bFGF. No dia 3, remova metade do meio e substitua por 15 mililitros de meio HSC, suplementado com 10 nanogramas por mililitro de bFGF.

No dia 5, substitua metade do meio por 50 mililitros de meio de indução neural. Depois disso, a cada dois dias, substitua metade do meio por meios de indução neural. Após três semanas em cultura, adicione 100x penicilina-estreptomicina ao meio em uma concentração final de 1x, se desejar. Atualize metade da mídia a cada dois dias.

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Última atualização: 29 agosto 2026