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Coloque uma retina de camundongo de montagem plana em uma solução fisiológica dentro de uma câmara de gravação.
Usando um microscópio, posicione uma pipeta de registro acima da retina. A pipeta contém um eletrodo e é preenchida com uma solução interna.
Aplique pressão positiva para evitar o entupimento da pipeta, insira-a na retina e reduza a pressão para evitar danos aos tecidos.
Avance a pipeta em direção às células amácrinas starburst, ou SACs, que estão sinapticamente ligadas a outros neurônios.
Aproxime-se de uma célula até que uma covinha se forme em sua membrana. Libere a pressão, permitindo que a membrana adira à ponta.
Use uma corrente negativa para puxar um adesivo de membrana para dentro da pipeta.
Aplique sucção para romper a membrana, estabelecendo continuidade entre o eletrodo e o citoplasma da célula, uma técnica chamada patch-clamp de célula inteira.
Para registrar as correntes sinápticas, aplique uma tensão para manter o potencial de membrana do SAC constante.
Os neurotransmissores liberados por neurônios ligados sinapticamente desencadeiam o fluxo de íons através dos receptores sinápticos SAC, medidos pelo eletrodo.
Neste procedimento, filtre a solução interna através de um filtro de seringa no filamento de preenchimento personalizado. Em seguida, insira o filamento em uma micropipeta recém-puxada e dispense a solução interna perto da ponta até que a solução cubra o fio do eletrodo de prata por mais de 5 milímetros. Em seguida, prenda a micropipeta em um porta-eletrodo com uma haste de sucção, através da qual a pressão dentro do eletrodo pode ser ajustada empurrando ou puxando o êmbolo de uma seringa de plástico de 10 mililitros conectada a um tubo.
Em seguida, localize a pipeta sob a objetiva e abaixe-a a cerca de 100 micrômetros acima da retina. No modo seguidor de corrente, use o deslocamento CC para zerar o sinal de tensão CC permanente. Meça a resistência da pipeta no modo de pinça de corrente injetando correntes de onda quadrada de amplitude fixa através da pipeta enquanto ela está no banho. Neutralize a diferença girando o botão de acesso R e use a leitura nele para calcular a resistência da pipeta.
Depois disso, leve lentamente o eletrodo a cerca de 10 micrômetros acima da retina. Aplique pressão positiva ao eletrodo. Em seguida, observe a mudança de reflexão para a ponta da pipeta à medida que se aproxima da retina.
Forçar rápida mas suavemente a pipeta para dentro do GCL e reduzir imediatamente a pressão positiva. Mova a pipeta em direção a um neurônio marcado e evite entrar em contato com outros neurônios, vasos sanguíneos e pés finais das células de Muller. Aplique mais pressão positiva, se necessário, para evitar o entupimento do eletrodo.
Em seguida, posicione a ponta da pipeta perto do neurônio marcado até que uma covinha seja visível. Em seguida, libere a pressão positiva e deixe a membrana plasmática saltar de volta para a ponta da pipeta. Aplique correntes negativas de 20 a 120 amperes pico à pipeta para ajudar na formação de uma vedação de giga-ohm.
Permitir que a membrana celular se recupere após liberar a pressão positiva é importante porque uma excelente vedação formada naturalmente entre a membrana e a abertura da pipeta é importante para preservar a morfologia celular após o registro.
Se necessário, aplique uma sucção suave para puxar a membrana plasmática para dentro da pipeta. Aguarde cinco minutos após a formação do selo para romper a membrana celular para permitir a depuração da solução interna derramada por superfusão. Depois que a membrana for rompida, e enquanto estiver no atual clamp modo, ligue o equilíbrio da ponte e ajuste-o usando o botão do eixo R. Registre as correntes pós-sinápticas excitatórias e inibitórias no modo de pinça de tensão, mantendo a célula em potenciais de reversão.