Name: Enucleação Rato Olho para fenotipagem de alta capacidade remota (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: Aprenda a técnica de enucleação ocular em camundongos para fixação de tecidos em triagens fenotípicas de alta capacidade. Este método demonstra os marcos anatômicos essenciais para procedimentos cirúrgicos precisos em pesquisa.

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Pesquisa para prevenir a cegueira; Bartly J. Mondino MD, Diretor do Jules Stein Eye Institute, UCLA, e Ramiro Ramirez-Solis, Jacqui Branco, e Jeanne Estabel no Instituto Sanger, Wellcome Trust Genome Campus. Esta pesquisa está em conformidade com a Declaração de ARVO para o Uso de Animais em Oftalmologia e Pesquisa Visual.

1. Dissecção Blunt: Enucleação do olho do rato em amostras não corrigidos <ol><li> Separar as pálpebras para melhorar a exposição e o acesso ao mundo posterior (globo ocular) de superfície. </li><li> Coloque uma pinça de vestir curva por trás (abaixo) o globo na órbita (órbita). O Mahajan Sharptip vestir fórceps é um instrumento personalizado com pontas para facilitar essa etapa (ver materiais e reagentes de mesa). </li><li> Feche a pinça e captar o tecido conjuntivo orbital e nervo óptico atrás do globo, tendo o cuidado para evitar apertar o globo. </li><li> Com cuidado, puxe a pinça para cima e arrancar o globo ocular da órbita. O tecido do tipo fio branco é o nervo óptico. </li><li> Colocar o olho em PBS. Utilizando uma agulha de calibre 30, fazer uma punção única ferida imediatamente posterior ao limbo, inserindo a agulha de 1-2 mm dentro do globo ocular. Isso permite que os fixadores, tais como glutaraldeído, que são de outro modo incapazes de penetrar no tecido do olho, para directamente enter o olho. Criação desse ferimento pode não ser necessário se um fixador, tal como paraformaldeído ou álcool, é capaz de difundir-se tecidos oculares de interesse. </li><li> Coloque todo o olho imediatamente em fixador para fixação de imersão. </li></ol> 2. Dissecção aguda: Enucleação do mouse fixação perfusão olho seguinte <ol><li> Use uma curva colibri forcep para segurar a pálpebra para longe do globo. </li><li> Tesoura Westcott Orient curvas dissecação paralelas ao mundo, com o objectivo para a parte traseira da órbita. </li><li> Corte o tecido fixo conjuntivo que envolve o mundo dos inferiores, mediais, laterais superiores e lateral. </li><li> Coloque a pinça curva atrás do globo, segure o tecido conjuntivo, sem pressionar no globo, e puxe para a frente a enuclear o olho. Uma vez que o tecido conjuntivo orbital é rígida de fixação da perfusão, o corte de tecidos orbitais adicional pode ser necessária para libertar completamente o globe. </li></ol> 3. Fixação e Embalagem Envio de tecidos fixas devem seguir os seus requisitos de serviços institucionais e correios, incluindo etiquetas e embalagens apropriadas. O protocolo seguinte é um exemplo de envio de uma amostra biológica não infecciosa, à temperatura ambiente. Isto requer três camadas de embalagem, mas não de classe A substância / B biológica ou rótulos de azoto líquido. <ol><li> Colocar o olho para um frasco de cintilação de 5 ml de vidro com, pelo menos, fixador de 3 ml, ou pós-fixador tampão, se a fixação for curto. Escreva o número de rastreamento na tampa do frasco e feche-o com Parafilm. </li><li> Frascos de cintilação lugar em uma amostra biológica aprovado contêiner de transporte. No nosso instituto, por exemplo, contentores aprovados requerem três camadas: um recipiente vedado no qual a amostra é colocada, uma camada intermédia absorvente, e uma camada protectora exterior. </li><li> Colocar o recipiente num pacote de plástico-bolha e, em seguida, para uma aplicaçãocontêiner percorreram laboratório junto com a documentação adequada. </li></ol> 4. Resultados representativos O exame histológico dos olhos pode ser efectuada por uma variedade de métodos incluindo hematoxilina-eosina, a detecção de expressão enzimática, a microscopia electrónica de transmissão, e imuno-histoquímica. Após fixação imersão em paraformaldeído a 4%, o tecido foi embebido em parafina e seccionados em micrótomo. No alto rendimento fenotipagem, analisamos seções aluno nervo óptico que todos os tipos de amostras de tecido do olho (Figura 1). Secções de tecido foram também examinados para expressão de lacZ (Figura 2), microscopia electrónica de transmissão de organelos celulares (Figura 3), e a expressão de moléculas específicas com anticorpos (Figura 4). No nosso método de rastreio fenótipo, não foi importante para manter a orientação do olho em relação à nasal (canto medial) e temporal (Lateral) canto lados. Existem pelo menos duas opções, se a orientação do olho é necessário. Após enucleação, temos aplicado cautério luz na córnea temporais na posição das três horas com um cautério handheld. A lesão é óbvio na histologia e não ficar perdido durante o processamento, como tintas histológicas. A desvantagem é que os danos cautério a córnea, o que pode ser um tecido crucial para exame. A outra opção requer um anatomista qualificados que possam identificar as inserções dos músculos extraoculares. Sob um microscópio estereoscópico, a identificação da inserção do músculo oblíquo superior e inferior marca o aspecto inferior e superior e do mundo. 3 Com qualquer método de orientação, é importante acompanhar a amostra como um olho direito ou esquerdo. Juntos, isso vai permitir que a orientação exata mundo antes do corte. <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig1.jpg" alt="Micrografia de anatomia ocular; seções de histologia; cristalino, retina, córnea; detalhes da camada celular." data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Imagens do mouse olho histológicas afte r aquisição remota. olhos de camundongos foram enucleados por dissecção aguda após a fixação de perfusão com paraformaldeído 4%. A. Aluno-secção do nervo óptico corados com Hematoxilina e Eosina mostra preservação de todas as subestruturas de tecido. ON, nervo óptico. (Barra de escala verde = 500 microns) B. Uma visão maior ampliação da retina normal mostra sua estrutura laminar: RGC, as células ganglionares da retina; IPL, camada plexiforme interna; INL, camada interna nuclear; OPL, camada plexiforme externa; ONL, exterior camada nuclear (células fotorreceptoras) (seta); IS, segmentos fotorreceptoras internas (cabeça de seta); OS, fotorreceptoras segmentos exteriores; RPE, epitélio pigmentar da retina, c, coróide. (Verde barra de escala = 50 microns) C. Em comparação com a retina normal, este espécime é mais fina devido à degeneração dos fotorreceptores. O ONL, É e OS estão completamente ausentes (seta). (Verde barra de escala = 50 microns) "Alt =" Figura 2 "/&gt; Figura 2. Expressão de lacZ em murganhos transgénicos. Os olhos foram enucleados por dissecção romba e imersos em 1 mg / ml de solução de X-gal (5 mM K3Fe (CN) 6, 5 mM de K4Fe (CN) 6, 2 mM de MgCl2, 0,02% de NP40 , e desoxicolato de sódio a 0,1%) durante a noite a 37 ° C. Os olhos foram fixados em glutaraldeído a 2% formaldehyde/0.2% durante 30 minutos e seccionados em micrótomo. X-gal do produto (azul) etiquetas: A. epitélio ciliar, B. epitélio da córnea, e C. a camada de células ganglionares da retina (RGC) na retina. INL, camada nuclear interna; ONL, camada nuclear externa. <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig3.jpg" alt="Estrutura da retina; micrografia eletrônica mostrando segmentos externos de bastonetes, células RPE, membrana de Bruch." data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Microscopia eletrônica de transmissão do epitélio pigmentar da retina (EPR). Após dissecção romba e criação de um ferimento, os olhos estavam fixos imersão em paraformaldeído 2,5% / 2,5% glutaraldeído em 0,1 M de tampão fosfato de sódio. Olhos eram secondarily fixado em textroxide de ósmio a 1%, gradualmente desidratados e embebidos em resina Spurr a. Tecido foi seccionado em 90 nm e colocados em grades de cobre cobertas de caça-níqueis e Formvar fotografada usando um microscópio eletrônico de transmissão. A micrografia mostra, os segmentos exteriores fotorreceptoras da retina neurosensorial, melanossomas (M) no interior do epitélio pigmentado da retina e membrana de Bruch. <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig4.jpg" alt="Imagem de microscopia fluorescente da estrutura do biofilme bacteriano; ampliação em escala de 20 mícrons." data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Imunohistoquímica de superóxido dismutase-3 (verde) no vítreo do rato. Olhos foram enucleados por dissecção romba e foi submetido a fixação de imersão em paraformaldeído a 4%. Eles foram incluídos em parafina e seccionados usando um micrótomo. As secções de tecido foram incubadas com anti-soro policlonal de coelho diluído 1:50 SOD3. SOD3 expressão foi detectada utilizando um anticorpo de cabra anti-coelho IgG (H + L)-Alexa Fluor 488 anticorpo secundário conjugado. Rotulagem de SOD3 é mostrado na green.

<ol><li>Song, B. J., Tsang, S. H., Lin, C. -S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+models+of+retinal+degeneration+and+targets+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic models of retinal degeneration and targets for gene therapy.</a> Gene Ther. Mol. Biol. 11, 229-262 (2007).</li>
<li>Mahajan, V. B., Mondino, B. J., Tsang, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+Mouse+Eye+Phenomics+System%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Laboratories%2C+Mouse+Genetics+Meeting%22%5BJournal%5D)">A high-throughput Mouse Eye Phenomics System.</a> Cold Spring Harbor Laboratories, Mouse Genetics Meeting. , (2010).</li>
<li>Smith, R. S., John, S. W. M., Nishina, P. M., Sundberg, J. P. In Research Methods For Mutant Mice. , CRC Press. Boca Raton, FL. (2002).</li>
<li>Chang, B., Hawes, N. L., Hurd, R. E., Davisson, M. T., Nusinowitz, S., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+degeneration+mutants+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Vision+Res%22%5BJournal%5D)">Retinal degeneration mutants in the mouse.</a> Vision Res. 42, 517-525 (2002).</li>
<li>Anderson, M. G., Smith, R. S., Hawes, N. L., Zabaleta, A., Chang, B., Wiggs, J. L., John, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+genes+encoding+melanosomal+proteins+cause+pigmentary+glaucoma+in+DBA%2F2J+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Mutations in genes encoding melanosomal proteins cause pigmentary glaucoma in DBA/2J mice.</a> Nat. Genet. 30, 81-85 (2002).</li>
<li>Hawes, N. L., Smith, R. S., Chang, B., Davisson, M., Heckenlively, J. R., John, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+fundus+photography+and+angiography%3A+a+catalogue+of+normal+and+mutant+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Vis%22%5BJournal%5D)">Mouse fundus photography and angiography: a catalogue of normal and mutant phenotypes.</a> Mol. Vis. 5, 22-22 (1999).</li>
<li>Won, J., Shi, L. Y., Hicks, W., Wang, J., Hurd, R., Naggert, J. K., Chang, B., Nishina, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+resources+for+vision+research%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Mouse model resources for vision research.</a> J. Ophthalmol. 2011, 391384-391384 (2011).</li>
<li>Pinto, L. H., Vitaterna, M. H., Siepka, S. M., Shimomura, K., Lumayag, S., Baker, M., Fenner, D., Mullins, R. F., Sheffield, V. C., Stone, E. M., Heffron, E., Takahashi, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Results+from+screening+over+9000+mutation-bearing+mice+for+defects+in+the+electroretinogram+and+appearance+of+the+fundus%5BTitle%5D)+AND+%22Vision.+Res%22%5BJournal%5D)">Results from screening over 9000 mutation-bearing mice for defects in the electroretinogram and appearance of the fundus.</a> Vision. Res. 44, 3335-3345 (2004).</li>
<li>Heckenlively, J. R., Winston, J. V., Roderick, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Screening+for+mouse+retinal+degenerations.+I.+Correlation+of+indirect+ophthalmoscopy%2C+electroretinograms%2C+and+histology%5BTitle%5D)+AND+%22Doc.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Screening for mouse retinal degenerations. I. Correlation of indirect ophthalmoscopy, electroretinograms, and histology.</a> Doc. Ophthalmol. 71, 229-239 (1989).</li>
<li>Tsang, S. H., Gouras, P., Yamashita, C. K., Kjeldbye, H., Fisher, J., Farber, D. B., Goff, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+degeneration+in+mice+lacking+the+gamma+subunit+of+the+rod+cGMP+phosphodiesterase%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Retinal degeneration in mice lacking the gamma subunit of the rod cGMP phosphodiesterase.</a> Science. 272, 1026-1029 (1996).</li>
<li>Tsang, S. H., Woodruff, M. L., Jun, L., Mahajan, V., Yamashita, C. K., Pedersen, R., Lin, C. S., Goff, S. P., Rosenberg, T., Larsen, M., Farber, D. B., Nusinowitz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+mice+carrying+the+H258N+mutation+in+the+gene+encoding+the+beta-subunit+of+phosphodiesterase-6+%28PDE6B%29+provide+a+model+for+human+congenital+stationary+night+blindness%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mutat%22%5BJournal%5D)">Transgenic mice carrying the H258N mutation in the gene encoding the beta-subunit of phosphodiesterase-6 (PDE6B) provide a model for human congenital stationary night blindness.</a> Hum. Mutat. 28, 243-254 (2007).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Camundongos transgênicos mais existem em laboratórios que não examinam os olhos. Nossa técnica vídeo mostra um método simples e padronizada para a transferência remota de habilidade cirúrgica para otimizar a aquisição de tecidos a partir de laboratórios com pouca experiência com os olhos. Esta técnica de vídeo ajuda a superar um grande armadilha em alto rendimento fenotipagem, que é a utilização de um número limitado de locais especializados devido a métodos não normalizados de recolha de tecidos e que impedem a fixação...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome </th><th> Companhia </th><th> Número de catálogo </th><th> Comentários </th></tr><tr><td> Pinça curva Vestir </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E1408 </td><td></td></tr><tr><td> Mahajan Sharptip vestir fórceps </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E1406 (REF SP7-64520) </td><td></td></tr><tr><td> Curvas Tesoura Westcott </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E3321 WH </td><td></td></tr><tr><td> 15 ° BD Beaver Microsurgical Lâmina </td><td> Becton-Dickinson </td><td> 374881 </td><td></td></tr><tr><td> 0,22 Fine-Castroviejo Fórceps suturando </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E1805 </td><td></td></tr><tr><td> 0,12 Colibri fórceps </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> 2/132 </td><td></td></tr><tr><td> Calibre 30 agulha </td><td> Becton-Dickinson </td><td> 305128 </td><td></td></tr><tr><td> Biohazard Mailer </td><td> Pescador </td><td> 03-523-4 </td><td></td></tr><tr><td> Parafilm </td><td> Pescador </td><td> 13-374-10 </td><td></td></tr><tr><td> Vidro de cintilação frascos </td><td> Wheaton </td><td> 4500413033 </td><td></td></tr><tr><td> PBS, pH 7,4 </td><td> Invitrogen </td><td> 70011-044 </td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldeído 16% </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> 15700 </td><td></td></tr><tr><td> 2,5% paraformaldeído Glutaraldeído / 2,5% em 0,1 M de tampão fosfato de sódio </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> 15700 e 16300 </td><td> Misturados em laboratório </td></tr><tr><td> O glutaraldeído a 50% </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> 16300 </td><td></td></tr><tr><td> 0,25% Formvar </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> 15810 </td><td></td></tr><tr><td> PolicialGrade por slot </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> M2010-CR </td><td></td></tr><tr><td> Tetróxido de ósmio a 4% </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> 19140 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-anticorpo SOD3 </td><td> Abcam </td><td> Ab21974 </td><td></td></tr><tr><td> Cabra anti-coelho Alexa Fluor 488 </td><td> Invitrogen </td><td> A11070 </td><td></td></tr><tr><td> Resina Spurr incorporação de </td><td> Electron Microscopy Sciences </td><td> 14300 </td><td></td></tr></tbody></table>

enucleação rato olho para fenotipagem de alta capacidade remota

Mouse Eye Enucleation for Remote High-throughput Phenotyping

O olho do rato é um modelo genético importante para o estudo da doença de translação oftálmica humana. Doenças que causam cegueira em humanos, tais como a degeneração macular, a degeneração de fotorreceptores, cataratas, glaucoma, retinoblastoma, e retinopatia diabética foram recapitulado em ratinhos transgénicos. 1-5 ratinhos transgénicos e knockout maioria foram gerados por laboratórios para estudar doenças não oftálmicas, mas conservação genética entre os sistemas de órgãos sugere que muitos dos mesmos genes podem também desempenhar um papel no desenvolvimento ocular e doenças. Assim, estes ratos representam um recurso importante para a descoberta de novas correlações genótipo-fenótipo no olho. Porque esses ratos estão espalhados por todo o mundo, é difícil de adquirir, manter e fenótipo-los de forma eficiente, boa relação custo-benefício. Assim, a maioria de alto rendimento telas fenotipagem oftálmicas são restritos a alguns locais que necessitam no local, a perícia oftalmológica para examinar os olhos em camundongos vivos. 6-9 Uma abordagem alternativa desenvolvida pelo nosso laboratório é um método para o controle remoto de aquisição tecido que pode ser utilizado em estudos de grandes dimensões ou de pequena escala de olhos de ratinhos transgénicos. Procedimentos padronizados para vídeo baseado em transferência de habilidade cirúrgica, fixação do tecido, e transporte permitem que qualquer laboratório para coletar olhos inteiros de animais mutantes e enviá-las para fenotipagem molecular e morfológica. Neste artigo de vídeo, nós apresentamos técnicas para enuclear e transferir ambos não corrigidos e perfusão olhos de rato fixos para análises fenotípicas remotos.

A técnica de dissecção ilustra enucleação do olho do rato para fixação do tecido para realizar fenotipagem em alto rendimento telas.

Enucleação Rato Olho para fenotipagem de alta capacidade remota

O olho do camundongo é um modelo genético importante para o estudo translacional de doenças oftálmicas humanas. Doenças que causam cegueira em humanos, tais como a macular...

Este vídeo irá ilustrar o olho do camundongo e a enucleação, ou remoção do globo ocular da órbita. O globo ocular é delimitado pela margem da pálpebra inferior. Aqui está o canto medial ou nasal.Atrás está o canto temporal ou lateral. Acima está a margem da pálpebra superior. Aqui está um espécime cirúrgico.A agulha está apontando para a córnea transparente. Podemos ver um pouco da lente projetando-se além da íris. A íris está aqui em marrom, cobrindo a lente.O marco cirúrgico mais importante é esta linha branca, ou seja, o limbo, onde será feita uma incisão logo atrás dele. A metade posterior do globo ocular situa-se atrás do limbo, e estamos apontando para uma inserção muscular. Pode-se observar o músculo aderido ao globo aqui, e também o tecido conjuntivo que preenche a órbita e inclui a glândula de Arian.E finalmente, esta é a faixa longa e branca do nervo óptico obtida por dissecação romba. Usando uma pinça curva para curativos, modificada com uma ponta afiada, comece separando as pálpebras. Isso tende a projetar o olho para fora e para longe.Use cuidadosamente sua pin&ccedil;a para entrar na &oacute;rbita e por tr&aacute;s do globo ocular, comprimindo-a suavemente por tr&aacute;s do globo sem apert&aacute;-lo e puxe para frente. Voc&ecirc; deveria ter conseguido segurar o tecido conjuntivo e n&atilde;o o globo ocular. Se voc&ecirc; virar o globo ocular para o lado, poder&aacute; ver o tecido orbital juntamente com o nervo &o&oacute;ptico branco.Esta é uma segunda dissecação apenas para mostrar novamente que você entra no canto, empurra a pinça por trás do globo ocular, agarra o tecido conjuntivo e o puxa para frente sem pressionar o próprio globo ocular. Novamente, é possível observar o tecido conjuntivo na faixa alongada do nervo óptico branco. Para fazer uma ferida perfurante, segure o globo ocular por uma inserção muscular e insira uma agulha atrás da córnea, bem ao lado do ponto onde você está segurando o olho para estabilizá-lo.Isso permitirá que o fixador entre no olho. Se você fizer a punção longe do local onde está segurando o olho, o globo ocular será muito instável, e será difícil fazer esse corte tão longo sem comprimir o olho ou aplicar pressão indevida. Você também pode segurar todo o tecido conjuntivo logo atrás do próprio globo ocular.Alguns fixadores não exigem uma ferida perfurante. Em geral, colocamos o olho em um frasco de cintilação de cinco cm³ com pelo menos três cm³ de fixador para garantir que o olho fique submerso. Para animais fixados por perfusão, é necessária uma dissecação precisa.Utilizamos uma pinça curva calibri e tesoura curva wescott. Segure a pálpebra inferior com a pinça calibri. Insira a tesoura contra o osso orbital e comece a cortar o tecido conjuntivo.Utilizamos a curva afastando-se do globo ocular e evitamos o corte. Qualquer parte do olho funcionará ao longo de toda a margem da pálpebra inferior, de um canto ao outro. Em determinado ponto, a maior parte do tecido conjuntivo será removida, e você poderá deslizar a tesoura por trás do globo e puxá-lo para fora.Aqui está outro exemplo novamente, inserindo a tesoura na órbita, mas contra o osso orbital em vez do globo ocular, cortando os tecidos conjuntivos. Isso começará a soltar o globo ocular, que é como uma bola de basquete dentro de um cesto. Use a pinça para retrair as pálpebras para longe e faça cortes suaves e curtos ao redor do globo ocular.Aqui, agarramos o tecido conjuntivo ou uma inserção muscular com o Collibra e terminamos de cortar o globo ocular do tecido conjuntivo orbitário. Após os globos oculares serem adequadamente fixados, e se precisarem ser transportados, colocamos um filme parafilm ao redor do frasco de armazenamento.A embalagem deve estar em conformidade com as regulamentações da sua universidade e do governo. Normalmente, colocamos estes em um recipiente com um pouco de algodão para reter qualquer fluido; esse recipiente deve ser fechado muito bem. Esse recipiente de envio é então colocado em um saco de plástico bolha.Isso é colocado em um recipiente de transporte laboratorial para líquidos, juntamente com qualquer documentação.

mouse-eye-enucleation-for-remote-high-throughput-phenotyping

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este protocolo descreve uma maneira simples e barata para quantificar a atividade de cis-regulatórias elementos (ie, enhancer / promotores) na vida retinas do mouse via eletroporação explante. Preparação de DNA, a dissecção da retina, eletroporação, a cultura de explantes de retina, e pós-fixação análise e quantificação são descritos.

Quantificar a atividade de Cis Elements-Regulação na retina do rato por Eletroporação Remoção

Source: &lt;a style='text-decoration:none;' href='https://app.jove.com/v/55865/ coerência-óptica-tomografia-imagem-de-camundongo-células-ganglionares-de-retina-em-vivo'&gt;Jagodzinska, J., et. al., Tomografia de Coerência Óptica: Imagem de células ganglionares da retina de camundongos In Vivo. J. Vis. exp. (2017)  Neste vídeo, demonstramos o uso da tomografia de coerência óptica de domínio espectral (SD-OCT) para obter imagens das camadas da retina e avaliar as mudanças estruturais em um modelo...

Imagem in vivo da retina de camundongo usando tomografia de coerência óptica

A remoção de olhos, também chamada de enucleação, fornece uma estratégia útil para estudar aspectos do visual, cross-modal, e plasticidade do desenvolvimento ao longo do sistema visual de mamíferos, uma vez que induz irreversível parcial (monocular) ou completo (binocular) a perda da visão. Aqui nós descrevemos um método altamente reprodutível e fácil de realizar in vivo enucleação.

Um método altamente reprodutível e fácil de executar In Vivo Ocular Enucleação no Rato após a abertura dos olhos

Neste artigo, descrevemos os princípios para projetar e realizar um experimento de rastreamento de linhagem multicolorido usando camundongos R26R-Confetti. Fornecemos um protocolo específico para rastreamento de células epiteliais da córnea que podem ser modificadas para outros tecidos de interesse.

Um método para Lineage Tracing de células da córnea Usando Multi-cor repórter fluorescente Mice

Aqui vamos demonstrar uma nova abordagem para usando a tomografia de coerência óptica espectral-domínio de alta resolução (HR-SD-OCT) para auxiliar entrega de agentes de terapia do gene para o espaço subretinal, avaliar sua cobertura areal e caracterizar vitalidade fotoreceptor.

Tomografia de coerência óptica Mouse ultra alta resolução para auxiliar a injeção intra-ocular em pesquisa de terapia de genes da retina

Apresentada aqui é uma plataforma microscópica multifotípica para imagens de superfície ocular de rato vivo. O camundongo transgênico fluorescente permite a visualização de núcleos celulares, membranas celulares, fibras nervosas e capilares dentro da superfície ocular. Sinais de segunda geração harmônica não lineares derivados de estruturas colágenas fornecem imagens sem rótulos para arquiteturas estromais.

Uma plataforma personalizada de microscopia multifotn para imagens ao vivo de córnea de rato e conjuntiva

A imagem in vivo é uma ferramenta poderosa para o estudo da biologia na saúde e na doença. Este protocolo descreve imagens transpupilares da retina de camundongos com um microscópio padrão de dois fótons. Também demonstra diferentes métodos de imagem in vivo para marcar fluorescentemente múltiplas coortes celulares da retina.

Imagem transpupilar de dois fótons in vivo da retina do rato

Este protocolo, que foi originalmente relatado por Fernandez-Godino et al. em 20161,descreve um método para isolar eficientemente e cultivar células RPE do mouse, que formam uma monocamada RPE funcional e polarizada dentro de uma semana em placas Transwell. O procedimento leva aproximadamente 3 horas.

Dissecção eficiente e cultura de células epiteliais de pigmento de retina do rato primário

Este trabalho apresenta um protocolo para microdissecção ocular em roedores. O processo envolve a enucleação do globo ocular junto com a membrana nictitante (ou seja, a terceira pálpebra). Isto é seguido pela separação dos copos oculares posterior e anterior.

Microdissecção do olho de roedores

A retina exibe uma organização espacial complexa em toda a sua estrutura laminar. As técnicas modernas de transcriptômica espacial e sequenciamento requerem seções de tecido &lt; 20 μm de espessura, limitando sua aplicabilidade na pesquisa da retina. Este método de crioseccionamento recém-congelado produz seções finas na face da retina do camundongo, preservando as relações espaciais planares, permitindo um mapeamento molecular abrangente entre as lâminas.

En face Crioseccionamento de retina de camundongo para análise molecular espacial de alta dimensão

Este artigo demonstra um método para visualizar e quantificar a motilidade e o contato da microglia com pontos pós-sinápticos na retina usando microscopia confocal de disco giratório.

Imagem ao vivo e caracterização da dinâmica da microglia e interações com sinapses na retina murina doente

Aprenda a técnica de enucleação ocular em camundongos para fixação de tecidos em triagens fenotípicas de alta capacidade. Este método demonstra os marcos anatômicos essenciais para procedimentos cirúrgicos precisos em pesquisa.

Enucleação Rato Olho para fenotipagem de alta capacidade remota

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