28 de setembro de 2011
Um método confiável para o isolamento do RNA Pseudomonas aeruginosa Recuperou de cecums murino é descrito. O RNA recuperado é de quantidade e qualidade suficientes para qPCR subseqüentes, perfis de transcrição, RNA e experimentos Seq. Esta técnica pode ser adaptada para o isolamento de RNA outros micróbios intestinais.
O objetivo geral deste procedimento é isolar o RNA total de Pseudomonas aerogen recuperado de ECMs murinos. Isso é realizado primeiramente colhendo o conteúdo luminal sequencial. Em seguida, o RNA bacteriano é isolado.
Em seguida, realiza-se o tratamento com D'S e a purificação do RNA. Por fim, o RNA é quantificado e a pureza do isolado é verificada por análise em bioanalisador e por espectrofotometria. Assim, pode-se obter RNA bacteriano de qualidade e quantidade suficientes para avaliações experimentais subsequentes, como QPCR, análise de perfil de transcrição ou experimentos de sequenciamento de RNA.
A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como a extração com triol, é que este método incorpora múltiplas etapas de lise em ácido extremamente rigoroso e etapas de extração com clorofórmio feminino para garantir RNA de alta qualidade. Uma demonstração visual deste método é fundamental, pois as etapas de lise e extração são difíceis de aprender, já que protocolos escritos omitem pequenos detalhes críticos para o sucesso. O procedimento será demonstrado por Eduardo Lopez Medina, pesquisador pós-doutorando, e Megan Neubauer, gerente do laboratório, ambos do meu laboratório. Antes de iniciar a coleta, IMSA limpa o almofariz de aço inoxidável em um banho de nitrogênio líquido.
Em seguida, após eutanasiar um camundongo C3 HHEN colonizado com Pseudomonas aerogen de seis a oito semanas de idade, posicione o animal em posição supina sobre uma placa de isopor e higienize o abdômen com etanol 95%. A seguir, faça uma incisão longitudinal mediana através da pele, desde o esterno até o períneo. Então, retraiam-se a pele e o peritônio e expõe-se a cavidade abdominal.
Agora resseque todo o ceco usando pinças. Segure o ceco sobre o almofariz de aço inoxidável e, em seguida, corte ambas as extremidades do ceco com tesoura de dissecação. Encha a ponteira de uma pipeta P 1000 com um mililitro de tampão Flush 8, e depois insira a ponteira na extremidade proximal do ceco.
Lave o tampão Flush Oito e o conteúdo luminal do Sequel para dentro do almofariz de aço inoxidável. Agora triture o Sequel. Lave o conteúdo do Oito com uma pisão estéril.
Em seguida, despeje etanol em um recipiente com gelo seco e coloque um tubo cônico de polipropileno de 50 mililitros no banho de etanol com gelo seco. Transfira o conteúdo moído do lume congelado para o tubo cônico e armazene o tubo a menos 80 graus Celsius. Esta próxima série de etapas é a mais difícil do procedimento.
Dada a natureza complexa dos materiais obtidos do ceco MI, as repetidas extrações com filóforma fria são absolutamente necessárias para alcançar uma separação aceitável; podem ser exigidas entre três e cinco extrações até que a interface ampla entre as fases aquosa e orgânica seja eliminada. Transfira um volume de fenol ácido com clorofórmio para um tubo de centrífuga Oak Ridge de 50 mililitros. Fixe a tampa com parafina e aqueça o tubo em banho-maria a 65 graus Celsius.
Coloque metade do volume do tampão de lise em um tubo cônico de polipropileno de 50 mililitros e, em seguida, ferva o tampão por cinco minutos. Após retirar o conteúdo luminal do sequenciador do armazenamento a menos 80 graus Celsius, aqueça brevemente o tubo com uma fricção rápida entre as mãos e, então, adicione o tampão de lise fervente ao tubo. Agite a mistura para homogeneizar a solução do conteúdo luminal SQL com o tampão de lise.
Ferva o tampão de lise e o conteúdo luminal de SQL por cinco minutos. Com vortexação periódica, desvende o tubo de centrífuga Oak Ridge contendo a solução de fenol-clorofórmio e transfira a amostra de lise do conteúdo de SQL para o tubo. Em seguida, refeche a tampa com perfil e coloque o tubo novamente no banho-maria a 65 graus Celsius por 10 minutos, agitando o tubo a cada dois minutos.
Centrifugue a amostra a 2.500 ×g durante 15 minutos a quatro graus Celsius. Em seguida, transfira cuidadosamente a fase aquosa para um novo tubo cônico de centrífuga Oak Ridge de 50 mililitros, evitando qualquer parte da interface branca. Então, adicione um volume igual de fenol clorofórmico ácido ao novo tubo.
Selar a tampa com perfil e misturar bem o conteúdo por vortexamento do tubo em alta velocidade. Continuar centrifugando a amostra e transferir a fase aquosa para o tubo de centrífuga. Se o volume da fase aquosa superior ficar muito pequeno, pode-se transferi-lo para um tubo de diâmetro menor.
Continue este processo até que não haja mais interface branca visível entre as fases aquosa e orgânica. Quando a interface branca desaparecer, transfira cuidadosamente a fase aquosa para um novo tubo cônico. Em seguida, adicione ao tubo um volume igual de clorofórmio e álcool isoamílico, feche a tampa e misture bem o conteúdo por vortexagem.
Em seguida, após centrifugar a amostra novamente, transfira a fase aquosa para um tubo cônico de polipropileno de 15 mililitros e adicione um volume igual de isopropanol. Incube então a solução a menos 20 graus Celsius por pelo menos duas horas ou durante a noite. Após a incubação da amostra, centrifugue o tubo por 45 minutos.
Após identificar o pellet com aspecto gelatinoso no fundo do tubo, remova o sobrenadante. Agora, lave o pellet com um mililitro de etanol a 70% gelado, agitando o tubo em vórtex, e em seguida centrifugue a amostra a 10.000 × g durante cinco minutos a quatro graus Celsius. Por fim, remova o sobrenadante e inverta o tubo para deixar o pellet secar ao ar à temperatura ambiente por 10 minutos.
Em seguida, re-suspenda o pellet de RNA em 200 microlitros de água livre de RNAses. Primeiro, adicione 20 microlitros de tampão 10 x turbo DNA e dois microlitros de turbo DNAse ao tubo de microcentrífuga e misture a solução suavemente. Incube então o tubo a 37 graus Celsius por 20 minutos e, em seguida, adicione 20 microlitros do reagente de inativação de DNA re-suspendido ao tubo e misture bem.
Agora, incube o tubo por mais cinco minutos à temperatura ambiente, com mistura ocasional. Em seguida, centrifugue o pellet em uma microcentrífuga a 10.000 ×g por 1,5 minuto e, então, transfira o sobrenadante para um novo tubo microfuge. Adicione um volume de fenol ácido clorofórmico frio ao pellet e, em seguida, misture completamente a solução por vortexagem durante um minuto.
Após centrifugar a solução por dois minutos a 12.500 ×g, transfira a fase aquosa para um novo tubo e adicione um volume de clorofórmio-álcool isoamílico. Em seguida, homogeneíze a solução por vortex e, depois, centrifugue novamente sob as mesmas condições. Transfira a fase aquosa para um novo tubo microfuga.
Em seguida, adicione 0,1 volume de acetato de sódio 3 M e 2,5 volumes de etanol a 100%, gelado. Agite o tubo em vórtex para homogeneizar. Incube a amostra a menos 80 graus Celsius por 30 minutos.
Em seguida, após centrifugar a 12.000 × g durante 30 minutos a quatro graus Celsius, remova o sobrenadante. Por fim, lave o pellet com um mililitro de etanol a 70% gelado. Remova o sobrenadante e seque o pellet ao ar por 10 minutos.
Em seguida, ressuspenda o pellet em 100 microlitros de água livre de RNAses. O Agilent Bioanalyzer é uma plataforma baseada em microfluídica para dimensionamento, quantificação e controle de qualidade de DNA, RNA, proteínas e células, e utiliza uma métrica de integridade de RNA conhecida como número de integridade de RNA ou RIN-RNA. O RNA extraído com este protocolo produz razões A260/A280 variando de 1,7 a 2,0 e valores de RIN maiores ou iguais a 7,0.
Um exemplo de eletroferograma de RNA bacteriano obtido no bioanalisador Agilent é mostrado aqui à esquerda, e uma imagem semelhante a um gel de *Pseudomonas arosa* recuperada de conteúdos intestinais de camundongos é mostrada aqui à direita. Após este procedimento, outros métodos como PCR quantitativa ou sequenciamento de RNA podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como perfis refinados de expressão gênica.
Este artigo descreve um método confiável para o isolamento de RNA de Pseudomonas aeruginosa recuperada de cecos de camundongos. A técnica fornece RNA de qualidade suficiente para qPCR, perfilamento de transcrição e sequenciamento de RNA.
O isolamento de RNA de alta qualidade de patógenos colonizadores do trato gastrointestinal permite a desmistificação mecanicista de alvos de virulência em modelos pré-clínicos. Este método apoia a validação de alvos ao associar a expressão gênica bacteriana às alterações no status imunológico do hospedeiro. Ele fornece confiança preditiva para a priorização de candidatos anti-infecciosos antes da identificação de compostos líderes.
O método insere-se no continuum de descoberta, desde a verificação de hipóteses na fase inicial de descoberta até a validação mecanicista em estudos pré-clínicos, permitindo leituras baseadas em RNA para confirmação de alvos.