Name: Em Assembléia in vitro de Semi-artificial máquina molecular e sua utilização para detecção de danos no DNA (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 56 s
Description: Aprenda a montar um sensor molecular semi-artificial para detectar danos no DNA em cortes de tecido usando topoisomerase de vaccínia. Este método permite visualizar quebras de DNA de forma específica por microscopia de fluorescência.

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Esta pesquisa foi suportada por subvenção R01NS062842 do Instituto Nacional de Distúrbios Neurológicos e Derrame, National Institutes of Health (VVD) e por doações R21 NS064403 do Instituto Nacional de Distúrbios Neurológicos e Derrame, National Institutes of Health através ARRA (VVD) e R21 EB006301 National Institute of Biomedical Imaging e Bioengenharia, National Institutes of Health (VVD).

As seções para a detecção baseada em máquina molecular deve ser preparado em primeiro lugar porque a sua preparação leva mais tempo do que a montagem do dispositivo molecular. A construção funciona bem com 5-6μm de espessura, corte de paraformaldeído fixo, blocos de parafina do tecido. Use marcas de slides que retêm seções bem, como ProbeOn Além disso slides carregada e precleaned (Fisher Scientific) ou similar. Recomendamos em primeiro lugar usando um tecido com um padrão conhecido de dano ao DNA, que contém tanto DNase I e tipo II DNase-breaks, como a dexametasona tratadas com ratos apoptóticas timo 13,14. 1. Preparação de seções <ol><li> Coloque as seções em um rack de slides e dewax em xilol por 15 min, transferir para um banho de xileno fresco por mais 5 minutos. </li><li> Reidratar passando por concentrações de etanol classificados: 96% de etanol 2x5min; Etanol 80% - 5min; água - 2x5 min. </li><li> Digest seção com Proteínase K. Use 100μL de uma solução de 50μg/mL por seção. Incubar 15 &#39;à temperatura ambiente (23 ° C) em câmara úmida. O tempo pode precisar de ajustes, dependendo do tipo de tecido. Tecidos duros pode exigir mais tempo de digestão. Vezes de 15-25 min são normalmente utilizados. Digestão insuficiente pode resultar no sinal mais fraco. Overdigestion na mão resulta no desaparecimento de sinais e interrupção seção. </li><li> Enxágüe em água destilada por min 2x10. </li><li> Adicionar 100 mL por seção da BSA 2% para preblocking. Incubar por 15 min à temperatura ambiente (23 ° C). Durante esse tempo, montar a máquina molecular. </li></ol> 2. Montagem máquinas moleculares Todos os reagentes são escalados para 25 mL de volume total, que é suficiente para uma detecção única em uma seção média dimensão do tecido (10x10mm). O volume pode ser ampliado conforme a necessidade. <ol><li> Combine em um pequeno tubo de plástico na seguinte ordem: </li></ol><table border="1"><tbody> &lt;tr&gt; <td><ol><li> Água bidestilada; </li><li> Glicol-8000 de polietileno de 15%; </li><li> Solução de 66 mM Tris-HCl, pH 7,5, 5 mM MgCl 2, 0,1 mM Ditioeritritol, 1 mM ATP, (ie tampão ligase regulares T4 DNA); </li><li> 70 pmoles de Oligonucleotídeos 1, </li><li> 215 pmoles (1,76-7,1 mg) VACC TOPO </li><li> 10 unidades de T4 DNA ligase (500 U / mL) </li></ol></td></tr></tbody></table><ol start="2"><li> Misture suavemente por pipetagem. A construção molecular quase instantaneamente auto-monta nesta solução e pode ser usado imediatamente em temperatura ambiente (23 ° C). Aumentando a temperatura para 37 ° C bloqueia a T4 DNA ligase componente baseado em matéria de rotulagem. </li></ol> 3. Utilização de máquinas moleculares em seções de tecido para 5&#39;OH etiqueta dupla e 5&#39;PO4 breaks DNA <ol><li> Aspirar a solução preblocking e aplicar 25μL da mistura de reacção completa contendo 70 pmoles de Oligonucleotídeos 1, 53-215 pmoles (1,76-7,1 mg) VACCTOPO e 10 unidades de T4 DNA ligase (500 U / mL) em solução de 66 mM Tris-HCl, pH 7,5, MgCl 5mM 2, 0,1 mM Ditioeritritol, 1 mM ATP, e polietileno glicol 15%-8000. O oligonucleotídeo mesma sequência carregando um único rótulo FITC, Oligonucleotide 2, pode ser usado para a detecção em vez de um único tipo de quebras de DNA. Em tal caso, omitir ligase a partir da reação rotulagem. Também nesta situação uma solução de 50 mM Tris-HCL, pH 7,4, 15% PEG-8000 pode ser usado em vez de tampão T4 DNA ligase. </li><li> Incubar por 1 hora em temperatura ambiente (23 ° C) em câmara úmida com uma lamela de plástico. Proteger da luz. Diminuição da temperatura para 16 ° C reduz o sinal ligase baseado, o aumento da temperatura a 37 ° C elimina completamente o sinal ligase-based. A inibição parcial da ligase às vezes ocorre na mistura de reação, possivelmente devido a contaminantes introduzidos com os preparativos topoisomerase. Portanto, mais de incubação (2-4 horas) pode ser necessária, especialmente quando snúmeros ignificant de ligase marcado breaks estão presentes. Embora ambos os ligase e sinais de topo pode ser observado nesta fase, em muitos casos o sinal ligase pode ser reforçada pela re-aplicação da mistura de reação sem VACC TOPO e Oligonucleotide dual-rotulados, mas contendo um oligonucleotídeo forma hairpin (Oligonucleotide 3) (35 mg / mL) e T4 DNA ligase (250 U / mL). Para melhorar sinal vá para a Etapa 3, para ver a reação, sem realce vá para o Passo 5. </li><li> Remove delicadamente lamínulas imergindo as lâminas verticalmente em uma jarra de Coplin contendo água à temperatura ambiente. Aspirar o excesso de água. </li><li> Melhorar sinal ligase através da aplicação de 25 mL de mistura de reação sem VACC TOPO e Oligonucleotide 1, mas contendo Oligonucleotide 3: 66 mM Tris-HCl, pH 7,5, 5 mM MgCl 2, 0,1 mM Ditioeritritol, 1 mM ATP, e polietileno glicol 15% 8000, 5 unidades de T4 DNA ligase, 35 de Oligonucleotídeos mg / mL 3 (blunt hairpin terminou). O volume total da solução de rotulagem can ser ampliados para acomodar as seções maiores. Incubar por 18 horas (overnight) em temperatura ambiente (23 ° C) em câmara úmida com uma lamela de plástico. </li><li> Remove delicadamente lamínulas imergindo as lâminas verticalmente em Coplin jar contendo água à temperatura ambiente. Em seguida, lave min seção 3x10 em água destilada. </li><li> Enxaguar com tampão bicarbonato de sódio. Solução alcalina lavar aumenta fluorescência FITC, que é sensível e pH é significativamente reduzido em pH abaixo de 7. </li><li> Cobrir seção com uma solução antifading (Vectashield com DAPI), lamela e analisar o sinal usando um microscópio de fluorescência. Quebra dupla vertente-DNA com 5&#39;OH ficam verde-fluorescentes, 5&#39;PO quatro breaks - vai fluorescência vermelha (Figura 2). </li></ol> 4. Resultados representante <img alt="Figura 2." src="/files/ftp_upload/3628/3628fig2.jpg" /> Figura 1. Semi-artificial máquina molecular detecta dois tipos deDanos ao DNA in situ. A máquina de auto-fluorescente quando monta VACC TOPO liga-se à dupla hairpin-32-mer. A máquina começa a operação, dividindo-se em duas unidades detector via topoisomerase-made corte na extremidade 3 &#39;da seqüência de reconhecimento. Isso resulta em um processo cíclico onde a unidade de FITC-rotulados de forma contínua separa e volta para o religates rodamina marcado unidade. Este persiste até uma pausa DNA detectável é encontrado. Quando um receptor de tal alternativa (quebra de DNA 5&#39;OH blunt end) está presente na seção de tecido, a parte FITC vai ligadura a ele. A parte restante rodamina serão anexados a 5 &#39;PO 4 DNA quebra extremidade sem corte com a ajuda do DNA ligase T4. Conseqüentemente, ambos os tipos de quebras de DNA são simultaneamente detectado. <img alt="Figura 1." src="/files/ftp_upload/3628/3628fig1.jpg" /> Figura 2. Molecular rótulos máquina dual dois tipos de quebras de DNAem uma seção de tecido de dexametasona tratadas com timo. Blunt quebra-ended DNA de DNase I-II-e DNase tipo são detectados nas áreas cortical do timo em apoptose. Fluorescência citoplasmática verde (5&#39;OH quebra de DNA) marca macrófagos cortical digerir material nuclear de timócitos apoptóticos. Este sinal é produzido por VACC TOPO, e localiza-se fagolisossomos com DNA contendo 5&#39;OH dupla vertente-breaks 11,12. Fluorescência vermelha (5&#39;PO 4 breaks) rótulos de núcleos de timócitos apoptóticos não engolida pelos macrófagos. Um enorme número de timócitos em apoptose simultaneamente acompanhada pela geração de 4 5&#39;PO fita dupla-breaks, visualizado por ligase baseado rotulagem. Estas pausas estão localizadas na periferia nuclear, formando padrões em forma de anel. Todos os núcleos celulares são visualizados através da contracoloração com DAPI (azul fluorescente).

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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Neste vídeo, demonstramos como montar e usar um dual-rotulagem sensor de danos ao DNA. O sensor é uma máquina molecular impulsionada por bio-molecular do motor, um vírus proteína codificada TOPO VACC ligados com componentes artificiais. O desenvolvimento apresentado exemplifica uma abordagem bio-enabled que defende a adaptação das estruturas biológicas, arquiteturas e peças e componentes reais de células para o projeto de não-tóxico dispositivos à escala molecular 12,15. Esta abordagem resolve duas questões i...

<ol><li> Xileno </li><li> 80 e Etanol a 96%. </li><li> Solução 2% de albumina bovina (BSA) em água destilada. </li><li> Oligonucleotídeo 1: um grampo duplo, dual marcado com fluoresceína e tetrametilrodamina: </li></ol> 5&#39;-GGA AAG CCT GC F GGT GCA CCC ATT ACG CAT R AT GCG TT-3 &#39;; F - FITC-dT; R - tetrametilrodamina-dT. Outros vermelho deslocado fluoróforos, tais como BODIPY TR, rodamina ou TAMRA pode ser usado em vez de R tetrametilrodamina como. Alternativamente, você pode usar 2 Oligonucleotide -. Hairpin uma única dupla marcada com fluoresceína (para a detecção de um único tipo de quebras de DNA (DNase II tipo apenas) A sonda single-fluoróforo de transporte é consideravelmente menos caro e é conveniente sempre que um único tipo de quebra de DNA deve ser rotulado: 5&#39;-GGA AAG CCT GC F GGT GCA CCC ATT ACG CAT ATG CGT T-3 &#39;; F - FITC-dT </p&gt; <ol start="5"><li> Oligonucleotídeo 3. Blunt-ended rodamina marcado hairpin para o realce do sinal de ligadura situ com DNA ligase T4: 5&#39;-GCG CTA GAC C G R GTC TAG CGC-3 &#39;; R - tetrametilrodamina-dT </li><li> Vaccinia DNA topoisomerase l (VACC TOPO) - 3000 U / mL (Vivid Technologies). Nos experimentos iniciais foram utilizados 215 pmoles (7,1 mg) do TOPO VACC por cada mL 25 da mistura de reacção. No entanto, a concentração topoisomerase pode ser significativamente reduzido sem perda de sensibilidade. Mais tarde, usou uma quantidade quatro vezes menor de VACC TOPO por seção (1,76 g em 25 mL da mistura de reação por seção) com resultados semelhantes. Reduzir a quantidade da enzima a 880 ng (em 25 mL da mistura de reação) resultou em um sinal mais fraco e 8,8 ng de VACC TOPO não produziu nenhum sinal detectável. </li><li> DNA ligase T4 5 U / mL (Roche). Esta preparação altamente concentrada ligase dá o melhor sinal em nossas condições experimentais. </li&gt; <li> 10 x tampão de reação para a T4 DNA ligase: 660 mM Tris-HCl, 50 mM MgCl 2, 10 Ditioeritritol mM, 10 mM ATP, pH 7,5 (20 ° C) (Roche). ATP em tampão de reação é facilmente destruído em ciclos repetitivos de descongelamento-congelamento. Alíquota do buffer em pequenas porções 15-20 mL e armazenar a - 20 ° C. Use uma vez. </li><li> 30% (w / v) solução de PEG-8000 (Sigma) em água bidestilada. 15% PEG-8000 na mistura de reacção fortemente estimula a detecção, aumentando as concentrações eficazes dos seus constituintes, por exclusão de volume. </li><li> Proteinase K (Roche) 20 solução estoque mg / mL em água destilada. Armazenar a - 20 ° C. Na solução use reação 50mg/ml em PBS, preparado a partir do estoque. Não reutilize. </li><li> Vectashield com DAPI (Vector Laboratories). </li><li> Tampão de bicarbonato de sódio: 50m M NaHCO 3, 15m M NaCl, pH 8,2. </li><li> Vidro 22x22mm ou 22x40mm ou lamelas de plástico. Lamínulas de plástico são preferíveis durante a reação, já que umre mais fácil de remover da seção. </li></ol>

em assembléia in vitro de semi-artificial máquina molecular e sua utilização para detecção de danos no dna

In vitro Assembly of Semi-artificial Molecular Machine and its Use for Detection of DNA Damage

Naturalmente bio-molecular máquinas de trabalho em cada célula viva e exibir uma variedade de modelos 06/01. No entanto, o desenvolvimento de centros artificial molecular máquinas em dispositivos capazes de movimento direcional, ou seja, motores moleculares, e sobre a sua escala reduzida partes mecânicas (rodas, eixos, etc pingentes) 7-9. Este imita as máquinas macro-, mesmo que as propriedades físicas essenciais para estes dispositivos, tais como a inércia ea conservação do momento, não são utilizáveis ​​em ambientes nanoworld 10. Projetos alternativos, que não seguem os esquemas mecânicos macromachines e usar mecanismos desenvolvidos na evolução de moléculas biológicas, pode aproveitar as condições específicas do mundo nano. Além disso, adaptando reais de moléculas biológicas para fins de nano-design reduz perigos em potencial dos produtos da nanotecnologia pode representar. Aqui demonstramos a montagem e aplicação de uma construção bio-enabled tais, comoemi-artificial dispositivo molecular que combina uma máquina molecular de ocorrência natural com componentes artificiais. Do ponto de vista enzimologia, a nossa construção é um designer complexo enzima-substrato fluorescente colocados juntos para executar uma função específica útil. Este conjunto é, por definição, uma máquina molecular, uma vez que contém um 12. No entanto, sua integração com a parte de engenharia - hairpin dupla fluorescentes - re-direciona para uma nova tarefa de rotulagem danos no DNA 12. Nossa construção reúne a partir de um DNA 32-mer e uma enzima topoisomerase I vaccinia (VACC TOPO). A máquina então usa seu próprio material para fabricar duas unidades detector fluorescente etiquetado (Figura 1). Uma das unidades (fluorescência verde) carrega VACC TOPO covalentemente ligado a seu 3&#39;end e outra unidade (fluorescência vermelha) é um hairpin livre com uma 3&#39;OH terminal. As unidades são de curta duração e rapidamente montar de volta para a construção original, que posteriormente recleaves.Na ausência de DNA quebra estas duas unidades separadas de forma contínua e religate de uma forma cíclica. Em cortes de tecidos com danos no DNA, a unidade de transporte de detector topoisomerase seletivamente atribui a quebra ponta e DNA com 5&#39;OH (DNase II tipo-breaks) 11,12, fluorescente rotulá-los. O segundo, hairpin enzima livre formado após clivagem oligonucleotídeo, vai a uma ligadura 5&#39;PO 4 quebrar blunt-ended (DNase I tipo-breaks) 11,12, se ligase T4 DNA está presente na solução 13,14. Quando ligase T4 DNA é adicionado a uma secção de tecido ou uma solução contendo DNA com 4 5&#39;PO ponta e breaks, a ligase reage com 5&#39;PO quatro extremidades do DNA, formando semi-estável da enzima DNA-complexos. Os grampos de cabelo sem corte terminou irá interagir com estes complexos liberando hairpins ligase e covalentemente ligados a DNA, assim rotulagem 5&#39;PO quatro breaks ponta e DNA. Este desenvolvimento exemplifica uma nova abordagem prática para podesign e de máquinas moleculares e fornece um sensor de útil para a detecção de apoptose e dano de DNA em células fixas e tecidos.

Nós demonstramos a montagem e aplicação de um dispositivo em escala molecular alimentado por uma proteína topoisomerase. A construção é um sensor de bio-molecular que rotula dois principais tipos de quebras de DNA em cortes de tecido, anexando dois fluoróforos diferentes para os seus fins.

Em Assembléia in vitro de Semi-artificial máquina molecular e sua utilização para detecção de danos no DNA

Máquinas biomoleculares naturais operam em cada célula viva e apresentam uma variedade de designs 1-6. No entanto, o desenvolvimento de molecular artificial...

O objetivo geral deste procedimento é demonstrar como montar e utilizar um sensor de dano ao DNA com marcação dupla que identifica dois tipos principais de quebras no DNA em cortes de tecido. O sensor é composto por um oligonucleotídeo de DNA com marcação dupla no extremo 30 tumor, marcado com ZI e Rumine, e uma enzima, a topo isomerase de vaccinia tipo um ou vac topo, que se auto monta. Quando a vac topo se liga ao extremo 30 tumor, a operação da máquina inicia-se quando a topo isomerase cliva o oligonucleotídeo na extremidade três prima da sequência de reconhecimento, resultando em uma unidade ativada de vac topo marcada com fitzy e um hairpin livre marcado com amina.Com uma hidroxila terminal no extremo três-primeira, as unidades têm vida curta e são rapidamente remontadas de volta à construção original, que posteriormente é clivada. Na ausência de quebras adicionais de DNA extramoleculares, essas duas unidades se separam e reorganizam continuamente de maneira cíclica. Quando o sensor molecular é aplicado em seções de tecido com dano ao DNA, a unidade detectora marcada com Fitz liga-se seletivamente às quebras de DNA com extremidades rombas que possuem hidroxila no extremo cinco-primeira.A unidade detectora marcada com o domínio R ligará a uma quebra romba com fosfato no extremo cinco-prime. Na presença da DNA ligase T4, são obtidos resultados que mostram a presença e distribuição dos tipos um e dois de quebras de DNA em células, com base na microscopia de fluorescência. A principal vantagem desta técnica em relação aos métodos existentes para detecção de HESIs, como o teste TUNEL, é que ela é mais específica e fornece informações adicionais ao marcar tanto as fases autossômicas quanto as fagocíticas da apoptose.Do ponto de vista da nanotecnologia, o sensor exemplifica uma abordagem baseada em bio que adapta estruturas e arquiteturas biológicas reais para a construção de dispositivos em escala molecular não tóxicos. Em geral, indivíduos novos neste método podem ter dificuldades, pois seu sucesso depende do uso de uma preparação altamente ativa de Toro SOM e do processamento correto das seções para evitar superdigestão pela proteinase K. As seções de tecido para este procedimento devem ser preparadas antes da montagem do dispositivo molecular. Seções com espessura de cinco a seis mícrons cortadas de paraldeído.Recomendam-se blocos de tecido emblocados em parafina fixada. Coloque a lâmina com a seção de tecido em uma rack para lâminas e desparafine em xilol durante 15 minutos. Após 15 minutos, transfira para um banho fresco de xilol por mais cinco minutos.Reidrate a seção passando a lâmina através dessas concentrações graduadas de etanol. Etanol 96% duas vezes por cinco minutos cada. Etanol 80% por cinco minutos, seguido por água.Duas vezes, cinco minutos cada vez. Após a reidratação, digerir a seção com proteinase K. Usando 100 microlitros de uma solução de 50 microgramas por mililitro por seção, incubar por 15 minutos à temperatura ambiente em uma câmara umidificada. Dependendo do tipo de tecido, o tempo de digestão pode precisar ser ajustado, mas é necessário ter cuidado para evitar superdigestão, pois ela causa desaparecimento do sinal e ruptura da seção quando a digestão estiver completa.Lave a lâmina em água destilada duas vezes, durante 10 minutos cada. Aplique BSA 2% para pré-bloqueio e incube por 15 minutos à temperatura ambiente em uma câmara umidificada. Durante esse tempo, monte a máquina molecular conforme mostrado a seguir neste vídeo.Todos os reagentes para a montagem da máquina molecular são dimensionados para um volume total de 25 microlitros, o que é suficiente para uma única detecção em uma seção de tecido de tamanho médio. O volume pode ser aumentado conforme necessário em um pequeno tubo de plástico. Combine os seguintes reagentes nesta ordem com água destilada.15% polietileno glicol 8.000 T four DNA Ligase buffer, oligonucleotídeo duplamente marcado vaccinia topoisomerase um e T four DNA Ligase misturados suavemente por pipetagem. A construção molecular se auto-montará quase instantaneamente nesta solução e pode ser usada imediatamente à temperatura ambiente. Para iniciar o procedimento de marcação de quebras de DNA, aspire a solução de pré-bloqueio da lâmina.Aplicar 25 microlitros da mistura de reação completa em cada seção. Colocar uma lamínula de plástico sobre a seção e posicionar a lâmina em uma câmara umidificada. Proteger da luz envolvendo a câmara com papel alumínio e incubá-la por uma hora à temperatura ambiente.Embora os sinais da ligase e da topo possam ser observados após a incubação de uma hora, em muitos casos, o sinal da ligase pode ser ainda mais aumentado. Para realçar o sinal, reaplique a mistura reacional sem vac topo e o oligonucleotídeo um, mas com o oligonucleotídeo três e a T four DNA Ligase, coloque uma lamínula de plástico sobre a seção e incube em uma câmara umidificada por 18 horas. No dia seguinte, à temperatura ambiente, mergulhe suavemente a lâmina verticalmente em um copo de precipitação contendo água à temperatura ambiente para remover a lamínula.Em seguida, lave a seção em água destilada três vezes, durante 10 minutos cada. Enxágue a seção com tampão de bicarbonato de sódio. Esse enxágue com solução alcalina potencializa a fluorescência fitza, que é sensível ao pH e é significativamente reduzida abaixo de um pH de sete.Finalmente, cubra o corte com uma solução antidesbotamento que também contenha DPI para contracoloração, marcando os núcleos, e aplique uma lamínula. Os cortes estão agora prontos para microscopia de fluorescência. Na figura apresentada, há um corte de tecido de timo tratado com dexametasona, no qual a máquina molecular detectou quebras de DNA do tipo um e do tipo dois com extremidades rombas, localizadas nas áreas corticais do timo que estão passando por apoptose, com fluorescência citoplasmática verde indicando quebras do tipo DNA dois, e macrófagos corticais de Marx digerindo o material nuclear de timócitos em apoptose.Esse sinal é produzido por vac topo e se localiza em lisossomos FGA com DNA contendo hidroxila em cinco primas. Quebras de fita dupla com fluorescência vermelha indicam rótulos de um tipo de quebra do DNA, núcleos de timócitos apoptóticos não englobados por macrófagos. Grandes quantidades de timócitos sofrem apoptose simultaneamente.Acompanhado pela geração de quebras de fita dupla com fosfato na extremidade cinco prima, visualizadas por marcação baseada em ligase. Essas quebras estão localizadas na periferia nuclear e formam padrões em forma de anel. Todos os núcleos celulares estão em azul, visualizados por contra-coloração com dpi.Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de nunca permitir que os cortes sequem entre as adições de diferentes soluções. Mantenha também todas as preparações enzimáticas em gelo antes de adicionar os cortes e proteja suas sondas fluorescentes da luz durante a reação de marcação após o seu desenvolvimento. A técnica permitiu a visualização de todas as fases da desmontagem de células heterólogas.Este sensor em si é um exemplo da abordagem verde de nanotecnologia no design de partículas, sondas e máquinas em escala nanométrica. Essa abordagem combina componentes artificiais com partes de máquinas moleculares naturalmente ocorrentes. O objetivo é eliminar a toxicidade e a reatividade biológica adversa desses materiais nanoestruturados altamente dispersos.

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Bioengineering

Bioengenharia

Nós descrevemos um método para observar a replicação em tempo real de moléculas de DNA individual mediada por proteínas do sistema de replicação bacteriófago.

A observação direta de Enzimas DNA Replicação Usando um DNA molécula única Alongamento Assay

A imagem espectroscópica eletrônica pode gerar imagens e distinguir ácido nucléico de proteína em resolução nanométrica. Ele pode ser combinado com o sistema miniSOG, que é capaz de rotular especificamente proteínas marcadas em amostras de microscopia eletrônica de transmissão. Ilustramos o uso dessas tecnologias usando focos de reparo de quebra de fio duplo como exemplo.

Visualização de miniSOG Proteínas Tagged reparo de DNA em combinação com Electron espectroscópica Imagem (ESI)

Aqui, é demonstrado como o Ensaio de Ligação à Proximidade in situ (PLA) pode ser usado para detectar e visualizar as interações proteínas-proteínas diretas entre ATM e p53 em culturas de células suspensas expostas ao estresse genotóxico.

Detecção e visualização de complexos de proteína induzidos por dano do DNA em culturas de células de suspensão usando o Ensaio de Ligação de Proximidade

Reparação de quebras de DNA dobro-costa é um processo dinâmico, que exige não só a formação de complexos de reparação em intervalos, mas também sua resolução após a lesão é dirigida. Aqui, usamos microscopia de imunofluorescência para quebras de dupla-hélice transitórias e duradouro como uma ferramenta para dissecar esse mecanismo de manutenção do genoma.

Caracterizando os processos de reparação do DNA no transitório e duradouro dobro-Costa quebras de DNA pela microscopia de imunofluorescência

Foi desenvolvido um método não-rotulados, não-rádio-isótopos para revisão de DNA polimerase e um ensaio de reparo de DNA usando espectrometria de massa MALDI-TOF de alta resolução e uma estratégia de extensão de nucleotídeo único. O ensaio provou ser muito específico, simples, rápida e fácil de executar para revisão e reparação patches menor que 9-nucleotídeos.

Revisão e ensaio de reparo de DNA usando extensão de nucleotídeo único e análise de espectrometria de massa MALDI-TOF

Este artigo introduz passos essenciais de imunoprecipitação de imunossuagem e cromatina. Esses protocolos são comumente usados para estudar processos celulares relacionados ao dano de DNA e para visualizar e quantificar o recrutamento de proteínas implicadas na reparação do DNA.

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Visualizando focos de DNA de fita simples na fase G1 do ciclo celular

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Conjunto híbrido e ensaio de molécula única para imagem do movimento de CMG totalmente reconstituído

Aprenda a montar um sensor molecular semi-artificial para detectar danos no DNA em cortes de tecido usando topoisomerase de vaccínia. Este método permite visualizar quebras de DNA de forma específica por microscopia de fluorescência.

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