30 de outubro de 2011
Este protocolo vídeo demonstra o isolamento e expansão de células-tronco como de mutliforme glioblastoma humano ressecado cirurgicamente (GBM) tecido tumoral utilizando o método de cultura neurosphere ensaio.
O objetivo deste protocolo é o isolamento e a expansão de células tumorais de glioblastoma multiforme humano utilizando o método de neuroesferas. Isso é alcançado inicialmente pela trituração do tecido tumoral colhido, seguida pela dissociação mecânica e, finalmente, pelo plaqueamento das células resultantes para crescerem em cultura de neuroesferas. Neste vídeo, vamos mostrar como isolar e expandir células semelhantes a células-tronco a partir de tecido tumoral de glioblastoma humano utilizando o método de cultura de neuroesferas.
Este método também pode ser utilizado para cultivar células de outros tumores cerebrais, bem como tumores sólidos, como os de mama, próstata, fígado e pulmão. Pronto, vamos começar. Após receber o tecido tumoral de GBM ressecado proveniente da cirurgia, o meio é removido.
O tumor é lavado duas ou três vezes usando PBS estéril para remover contaminantes como sangue e debris. Após a lavagem, coloque o tumor ressecado em uma placa de Petri estéril. Primeiro, corte o tumor em porções menores, depois transfira uma porção do tecido tumoral para uma placa de Petri separada e pique o tecido usando uma lâmina número 10 em pedaços minúsculos.
Isso aumentará a área superficial disponível para a dissociação enzimática. O picamento pode levar de um a três minutos, dependendo do tamanho do tumor. Agora, adicione de três a cinco ml de tripsina pré-aquecida ao tecido picado e transfira-o para um tubo falcon estéril de 15 ml.
Coloque o tubo de 15 mL em banho-maria a 37 graus por 10 a 15 minutos. Agite o tubo a cada cinco minutos. Para garantir uma melhor digestão do tecido, adicione um volume igual de inibidor de tripsina para interromper a reação.
A ativação da tripsina é garantida pipetando para cima e para baixo várias vezes. Centrifugue a suspensão a 800 RRP M ou 110 G durante cinco minutos. Remova o sobrenadante, depois re-suspenda o pellet em um mL de meio basal para células-tronco neurais, colocando a ponteira contra o fundo do tubo.
Pipete para cima e para baixo de três a sete vezes para desfazer grumos até obter uma suspensão leitosa, pois pipetar em excesso pode resultar em morte celular. Coloque um filtro de 40 micrômetros sobre um tubo de 50 ml. Agora, adicione 10 a 15 ml de meio basal à suspensão celular e misture suavemente, passando a suspensão celular através do filtro de 40 micrômetros para remover detritos e grumos não associados.
PT as células e remova o sobrenadante a vácuo. Re-suspenda as células em um a dois mL de meio completo. Em seguida, pipete suavemente para cima e para baixo para homogeneizar a suspensão.
Misture 10 microlitros da suspensão celular em 90 microlitros de azul de tripano. Homogeneíze bem a suspensão e transfira 10 microlitros para o hemocitômetro. Realize uma contagem celular conforme mostrado aqui.
É necessária uma suspensão de células únicas, sem agregados, para obter uma contagem celular precisa. Não inclua células positivas para azul de tripano. Ao contar para semear as células em um frasco T80.
Adicione 20 ml de meio completo para células-tronco neurais a um tubo de 50 ml. Adicione a quantidade apropriada de suspensão celular para atingir uma densidade de 200.000 células por ml. Agora, adicione EGF para obter uma concentração final de 20 nanogramas por ml.
Adicione heparina 0,2% na concentração de um microlitro por ml. Por fim, adicione BFGF para atingir uma concentração final de 10 nanogramas por ml. Misture as células em meio completo suplementado com fatores de crescimento.
Em seguida, transfira a suspensão para um frasco T 80. Coloque o frasco no incubador a 37 graus Celsius e 5% de CO2 por sete a dez dias. Após oito dias em cultura, as esferas estão completamente desenvolvidas e prontas para serem repassadas.
Colete o conteúdo do frasco e transfira para duas centrífugas de 50 ml. Centrifugue as células a 800 RPM por cinco minutos. Remova o sobrenadante a vácuo, depois re-suspenda o pellet em 1 ml de tripsina pré-aquecida.
Incube as células em banho-maria a 37 graus Celsius por dois minutos. Adicione uma quantidade igual de inibidor de tripsina e misture bem para garantir uma ativação. Em seguida, peloteie as células.
Remova o sobrenadante e ressuspenda as células em 1 ml de meio completo, pipetando suavemente para cima e para baixo para homogeneizar a suspensão celular. Realize uma contagem celular conforme descrito anteriormente, para semear as células em um frasco T80 com 20 ml de meio completo em um tubo de 50 ml. Adicione uma quantidade apropriada de suspensão celular para atingir uma densidade de 50.000 células por ml.
Agora adicione fatores de crescimento, incluindo E-G-F-B-F-G-F e heparina, na concentração descrita anteriormente. Misture suavemente a suspensão celular resultante e, em seguida, transfira a suspensão para um frasco T 80 e coloque no incubador por sete a dez dias. Este é um exemplo de cultura primária de GBM.
Após quatro dias nesta fase, é possível observar que as células estão se proliferando e começando a formar esferas. Você não deve observar grandes aglomerados esféricos de células nesta fase. Isso teria resultado de um preparo inadequado do tecido.
Após sete a 10 dias em cultura, esferas de tamanhos variados se formaram; quando as esferas atingem um diâmetro médio de 150 a 200 micrômetros, estão prontas para serem subcultivadas. Este é um exemplo de cultura de passagem de GBM após oito dias. Novamente, é possível observar esferas de tamanhos variados; esferas saudáveis exibem microespículas em sua periferia.
Preparar uma suspensão de células isoladas é uma questão muito importante em qualquer cultura de esferoides. Caso contrário, você poderá acabar observando agregados celulares mesmo no dia seguinte ao plaqueamento das células. Esses agregados podem ser considerados esferoides, mas deve-se notar que leva pelo menos uma semana para que as células perfurem e formem esferoides verdadeiros.
A quantidade de detritos em culturas de esferas de tumor primário varia conforme diversos fatores, como a origem do tecido, o quão preciso foi o seu isolamento e também a técnica de processamento do tecido. Esperamos que este vídeo seja útil e desejamos boa sorte em seus experimentos.
Este protocolo em vídeo demonstra o isolamento e a expansão de células semelhantes a células-tronco a partir de tecido tumoral de glioblastoma multiforme humano (GBM) ressecado cirurgicamente, utilizando o método de cultura por ensaio de neuroesferas. O protocolo descreve as etapas desde o preparo do tecido até o cultivo celular, fornecendo informações sobre as técnicas utilizadas para a expansão bem-sucedida das células.
O ensaio de neuroesferas permite o isolamento e a expansão de células semelhantes a células-tronco de glioblastoma, fornecendo um sistema relevante para a doença, útil na validação de alvos e na redução de riscos mecanicistas na descoberta de fármacos oncológicos. Essa abordagem aumenta a confiança preditiva ao modelar populações de células iniciadoras de tumores, essenciais para compreender a progressão do GBM e a resistência terapêutica. Facilita os fluxos de trabalho iniciais de descoberta ao gerar modelos celulares escalonáveis e reprodutíveis para o desenvolvimento de ensaios e identificação de compostos líderes.
O ensaio de neuroesferas insere-se na fase inicial da descoberta, apoiando a validação de alvos por meio de ensaios funcionais em modelos de células semelhantes a células-tronco antes da identificação de compostos líderes e dos testes de eficácia pré-clínicos.