Name: Protocolo de Coleta para Pâncreas Humano (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-23T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 49 s
Description: Aprenda a dissecar o pâncreas humano preservando a orientação anatômica usando tinta e técnicas de dissecção precisas. Este método permite analisar a composição regional dos ilhéus para pesquisa em diabetes.

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Os autores agradecem as famílias dos doadores e as Organizações de Procura de Órgãos envolvidos na pesquisa e Martino Maria e Irina Kusmartseva para a sua assistência especializada. Este trabalho foi financiado pela Juvenile Diabetes Research Foundation (MC-T., MA), em apoio da Rede de Doadores de Órgãos do pâncreas com Diabetes.

1. Set-up <ol><li> Cassetes de etiquetas para blocos de parafina manualmente com um lápis, ou automaticamente com uma impressora cassete. Incluir o identificador do doador (CaseID), tipo de amostra, o número de alíquota, e qualquer identificação adicional única (planilha Case, <a href="http://jove.com/files/ftp_upload/4039/4039appendix1.doc" target="_blank">Anexo 1</a> ). </li><li> Rotular moldes Oct como para cassetes com um marcador permanente. Corte retângulos de 5-10 cm de papel alumínio. </li><li> Imprima ou manualmente etiqueta com o marcador permanente todos os frascos e tubos. Incluir frascos suficientes para amostras de encaixe picados congelados e tubos com meios RPMI para remessas frescas. Para os frascos de encaixe congelados com RNAlater, adicionar 1 mL de cada RNAlater criotubo. </li><li> Placas de Set-up de dissecação em biossegurança capô e bancadas com instrumentos esterilizados dissecação (pinças, bisturis, lâminas, compressas de gaze (4x4)), bem como cassetes e moldes PTU dispostos em ordem de uso. </li><li> Preparar um banho de congelação, colocandogelo seco numa caixa de isopor de tamanho médio (10x10 cm) a uma profundidade de pelo menos 3 cm e adicionar isopentano até o gelo seco é completamente coberto. </li><li> Opcional: Encha um recipiente pequeno Dewar com nitrogênio líquido. </li><li> Se pâncreas é necessário para microscopia electrónica (ME), preparar fixador TAAB pela adição de 1,25 mL de paraformaldeído a 16%, 1,25 mL de glutaraldeído 8%, e 7,5 mL 0,1 M PBS. Preparar fixador Lowicryl por adição de 2,5 mL de 16% de paraformaldeído e 7,5 mL 0,1 M PBS. </li><li> Prepare soluções usadas para isolar as células. Para frasco de 500 ml de DMEF (com glutamina), siga técnicas assépticas, acrescentando o seguinte: <ol><li> Soro fetal de bovino (FBS): adicionar 50 mL, 10% final. </li><li> Penicilina / estreptomicina (Pen / Strep, 10.000 U / mL / 10.000 ug / mL de stock) - adicionar 5 ml de caldo de Pen / Strep para RPMI para a concentração final de 100 U / mL / 100ug/mL. Também adicionar 5 ml de uma garrafa de 500 ml de DPBS, quando utilizados para a realização de gânglios linfáticos ou de amostras de baço. </li></ol></li></ol> 2. Pessoal <ol&gt; <li> Procedimento é perfeitamente realizado com três funcionários no entanto, o procedimento pode ser realizado com um indivíduo bem treinado. Dois indivíduos podem geralmente completar o procedimento em 90 minutos. Duração real depende da quantidade de tecidos recebidos e facilidade de encontrar gânglios pancreáticos. As amostras para isolamentos de células são mantidas a 4 ° C até à conclusão da dissecção tecido, enquanto as amostras de soro são processadas em paralelo. </li><li> Patologista, assistente de patologia, ou equivalente, um membro do pessoal experiente leva a manipulação de tecidos e executa dissecações principais, incluindo divisão (s) de cabeça do pâncreas e colheita gânglios pancreáticos. Os esforços iniciais são direcionados para pâncreas, seguido de exame de peri-pancreático gordura para os gânglios linfáticos. </li><li> Técnico de laboratório ou equivalente pessoal-membro treinado em tecido de corte cuja principal responsabilidade é para pesar pâncreas e regiões e tecidos de acabamento para os blocos fixos ou congelada e pressão v congeladoIALS. Recebe duodeno e baço de assistente de patologia e processa esses órgãos, enquanto o assistente de patologia está processando o pâncreas. </li><li> Membro assistente de laboratório pessoal, que auxilia os outros, incluindo blocos e rotulagem do frasco, por exemplo picagem criotubos e processamento de soro. </li></ol> 3. Dissecação Pancreas <ol><li> Retire o duodeno eo baço e limpar o pâncreas de gordura estranhos, vasos e nervos com dissecção romba e aguda </li><li> Coloque o pâncreas limpos em um tabuleiro de dissecação coberta com toalhas de papel. Mergulhar um aplicador com ponta de algodão com tinta azul e propagação na superfície anterior do pâncreas. Seque o excesso. </li><li> Opcional: Mergulhar um novo aplicador de tinta preta e propagação na superfície posterior do pâncreas. Retornar pâncreas a orientação normal com a superfície anterior de frente para patologista. </li><li> Corte o pâncreas em 3 regiões: cabeça, corpo e cauda (Figura 1). Corte a junção entre head corpo e, em seguida, dividir o restante em partes iguais do ~ para o corpo e cauda. </li><li> Pesar cada região do pâncreas e registro pesos (folha Caso workup ( <a href="http://jove.com/files/ftp_upload/4039/4039appendix1.doc" target="_blank">Apêndice 1</a> )). </li><li> Seção (aprox. 0,5 cm) de cada região do pâncreas em um &quot;pão de forma&quot; transversal forma (Figura 1). </li><li> Use as seções de ambas as junções entre as regiões para as amostras moídas. Dependendo do tamanho do pâncreas, uma amostra a partir da região de junção do corpo da cauda-pode ser difícil de obter, caso em que o número de blocos de parafina pode ser reduzida para obter amostras de picadas ou apenas as amostras obtidas do pâncreas região cabeça-corpo pode ser obtida. Criotubos etiqueta de acordo com a cabeça ou o corpo para denotar região proximal na junção. <ol><li> Picar pedaços e dividir igualmente entre criotubos (≥ 1 grama por frasco). Rapidamente congelar os frascos sem RNALater em nitrogênio líquido ou gelo seco no - suspensão isopentano em seguida, transferir toa -80 ° C congelador. </li><li> Manter frascos com RNALater à temperatura ambiente durante 30 minutos para permitir o equilíbrio, remix e rapidamente congelar em azoto líquido ou na suspensão de gelo seco-isopentano, em seguida, transferidos para um congelador -80 ° C. </li></ol></li><li> Remover secções alternadas de parafina e blocos OCT começando com parafina (Figura 1). </li><li> Incline-se para todas as seções transversais para a direita. </li><li> Coloque ~ 1,5 x 1,5 x 0,5 cm em seções as cassetes. Se as secções transversais são muito grandes, cortado em meia (Figura 2b). Cassetes de etiquetas para metade anterior azul como &quot;A&quot; e metade posterior como &quot;B&quot;. </li><li> Se as peças são ainda muito grande, cortar cada secção perpendicular ao corte anterior (Figura 2c). Cassetes de etiquetas AD no sentido horário. Corte pedaços mais forem necessárias, para caber dentro de cassetes. </li><li> Blocos de números em seqüência dentro de região, começando com a parte mais medial. </li><li> Para blocos de parafina, a posição cassettes forma que o rótulo é para a esquerda e local do tecido na cassete, mantendo a sua orientação. Tampa da fita estreita e transferência para um recipiente com ~ 500 ml de 10% formalina tamponada neutra (NBF). Inicie a fixação de temporização, quando a cassete último é colocado em fixador. </li><li> Para blocos de PTU, despeje uma fina camada de outubro de mídia dentro do molde prelabeled em seguida, colocar o tecido no molde tendo a certeza de manter a orientação e cobrir o tecido com outubro Rapidamente mergulhe os moldes PTU em um gelo seco - suspensão isopentano de ~ 1 minuto. Remover a partir de pasta e local em gelo seco para o armazenamento temporário ou em -80 ° C congelador para armazenamento a longo prazo. </li><li> Obter ~ de 0,5 x 0,5 cm fatias a partir da junção cabeça-corpo para microscopia eletrônica (ME). Fatia único lugar do fixador TAAB e outra fatia no fixador Lowicryl. Armazenar os dois tipos de fixador com amostras a 4 ° C durante pelo menos 48 horas e / ou indefinidamente até processamento posterior para EM. </li></ol> 4. Baço, Linfonodo dissecçãoções e do mucosa duodenal dissecções <ol><li> Isolar nodos linfáticos pancreáticas (PLN) de gordura e aparar todo o tecido conjuntivo para a cápsula de nó. Coloque no prato estéril de cultura de células contendo DMEF. Dependendo números totais isoladas, dividir PLN em alíquotas para as transferências frescas, isolamentos de células criopreservadas, parafina e / ou blocos OCT e frascos. Picar em pedaços grandes nós não maiores que 0,5 cm. </li><li> Picar nós pancreáticas não-linfáticos e no baço em pequenos (aprox. 0,5 cm) cubos. Coloque em fixador, mídia outubro, e ou DMEM para remessas de amostras frescas ou isolamentos de células criopreservadas de acordo com os valores das matérias-primas. </li><li> Abra o duodeno e limpe cuidadosamente a mucosa duodenal de muco limpo com uma gaze umedecida. Cortar secções da mucosa para parafina e / ou blocos congelados OCT e amostras moídas para frascos, com e sem RNAlater. Congelar como para outras amostras. </li></ol> 5. Quebrar blocos OCT no pré-rotulados papel alumínio e colocar blocos de PTU e<html> frascos em caixas para armazenamento a longo prazo a -80 ° C. 6. Enviar amostras fixas de Processamento de parafina <ol><li> Fixar tecidos durante 16 horas (intervalo de 20 ± 4 horas), utilizando um processador automático de parafina ou usando temporização manual. Processo para blocos de parafina, usando um processador automático ( <a href="http://jove.com/files/ftp_upload/4039/4039appendix2.doc" target="_blank">Apêndice 2</a> ). </li><li> Incorporar secções na orientação exacta tal como é colocado pelo patologista com o rótulo da cassete para a esquerda. Incorporar a mucosa duodenal com a superfície de corte para baixo para permitir o exame da perpendicular mucosa para a submucosa. </li></ol> 7. Limpe as áreas de dissecação e desinfectar. Lave instrumentos de dissecção e re-esterilizar. Coloque tecidos remanescentes humanos em fixador de formalina para o armazenamento como resíduos biomédica. Descartar lixo biomédico de acordo com os regulamentos locais dentro de um mês. 8. Atualizar o sistema de inventário Amostra ve_title &quot;&gt; 9. resultados representativos Este procedimento irá processar um pâncreas humano intacto com uma amostragem representativa em todo o órgão, incluindo demarcação das três grandes regiões, a saber, cabeça, corpo e cauda dentro de 2 horas. A região uncinado, encontrado na região posterior da cabeça, é incluído na dissecção cabeça. O peso médio de pâncreas de doadores de órgãos sem diabetes foi de 82,4 gramas (52,7 - 139,0 gramas). Pesos pâncreas regionais foram aproximadamente iguais (Figura 3). Este procedimento também pode permitir a reconstrução do pâncreas inteiro usando lâminas coradas de parafina seqüencial e blocos PTU. Vários formatos são viáveis ​​permitindo a máxima utilização de tecnologias atuais e futuras. A planilha caso atual nPOD é fornecido ( <a href="http://jove.com/files/ftp_upload/4039/4039appendix1.doc" target="_blank">Anexo 1</a> ) que é utilizado para documentar as amostras recuperadas e proc subseqüenteessing por tipos de alíquotas e quantidades. <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/4039/4039fig1.jpg" /> Figura 1. Esquema geral do processo. O pâncreas inteiro é processado, mantendo orientações anatômicas. A região da cabeça é mais longo do eixo superior-inferior devido à presença do lobo pancreático ventral na região posterior, que inclui a região uncinado. Área hachurada nos cruzamentos denotar regiões usadas para amostras moídas em criotubos. P, parafina, O, outubro <img alt="A Figura 2" src="/files/ftp_upload/4039/4039fig2.jpg" /> Figura 2. Esquema de letras para as secções de pâncreas. Fatias transversais do pâncreas pode ser dividido em metades ou quartos e letras no sentido horário. <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/4039/4039fig3.jpg" /> Figura 3. Pesos de pâncreas de doadores de órgãos sem diabetes. Ospâncreas intacta de doadores adultos (&gt; 17 anos) foi pesado, em seguida, dividido em regiões e pesos regionais obtidos. Os dados são médias ± SEM (n = 15).

<ol><li>Brissova, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+human+pancreatic+islet+architecture+and+composition+by+laser+scanning+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Histochem.+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Assessment of human pancreatic islet architecture and composition by laser scanning confocal microscopy.</a> J. Histochem. Cytochem. 53, 1087-1097 (2005).</li>
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<li>Gianani, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initial+results+of+screening+of+nondiabetic+organ+donors+for+expression+of+islet+autoantibodies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Endocrinol.+Metab%22%5BJournal%5D)">Initial results of screening of nondiabetic organ donors for expression of islet autoantibodies.</a> J. Clin. Endocrinol. Metab. 91, 1855-1861 (2006).</li>
<li>Tauriainen, S., Salmela, K., Rantala, I., Knip, M., Hyöty, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collecting+high-quality+pancreatic+tissue+for+experimental+study+from+organ+donors+with+signs+of+%CE%B2-cell+autoimmunity%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Metab.+Res.+Rev%22%5BJournal%5D)">Collecting high-quality pancreatic tissue for experimental study from organ donors with signs of β-cell autoimmunity.</a> Diabetes Metab. Res. Rev. 26, 585-592 (2010).</li>
<li>In't Veld, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Screening+for+insulitis+in+adult+autoantibody-positive+organ+donors%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Screening for insulitis in adult autoantibody-positive organ donors.</a> Diabetes. 56, 2400-2404 (2007).</li>
<li>Töns, H. A., Terpstra, O. T., Bouwman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneity+of+human+pancreata+in+perspective+of+the+isolation+of+the+islets+of+langerhans%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Heterogeneity of human pancreata in perspective of the isolation of the islets of langerhans.</a> Transplant Proc. 40, 367-369 (2008).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O objectivo deste procedimento é definir um processamento pâncreas padrão que pode ser harmonizadas entre os locais de recolha múltiplas e, assim, permitir a comparação dos resultados obtidos por diferentes grupos. O método de dissecção é baseada no padrão cirúrgicos práticas patologia com passos adicionais para anotação das regiões mais importantes do pâncreas seguido por intra-regionais subdivisões. Padronização de métodos de processamento biospecimen é necessário para facilitar a recolha de amostras de alta qualidade...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> Instrumentos de dissecção incluindo bisturis com 22 lâminas </td><td> Vário </td><td> Vário </td><td></td></tr><tr><td> Tubos de centrífuga (15 e 50 ml) </td><td> Fisher Scientific </td><td> 05-539-5, 430828 </td><td> Estéril </td></tr><tr><td> Criotubos (1,8 ml) </td><td> VWR América do Norte </td><td> 89004-300 </td><td> Estéreis, códigos de barras opcionais </td></tr><tr><td> RNAlater </td><td> Ambion </td><td> AM7021 </td><td></td></tr><tr><td> Tinta Patologia Cirúrgica </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Cassetes </td><td> Mercedes Medical </td><td> CAS ECO109 </td><td></td></tr><tr><td> 10% formalina tamponada neutra </td><td> Fisher Scientific </td><td> 23-245-685 </td><td></td></tr><tr><td> Congelamento de mídia PTU </td><td> TissueTek </td><td> 4583 </td><td></td></tr><tr><td> Moldes </td><td> ThermoScientific </td><td> 58952 </td><td> Vários tamanhos </td></tr><tr><td> Isopentano </td><td> Fisher Scientific </td><td> O3551-4 </td><td> Outubro banho frio </td></tr><tr><td> O gelo seco </td><td></td><td></td><td> Outubro banho frio </td></tr><tr><td> Nitrogênio líquido em frasco de Dewar </td><td></td><td></td><td> Encaixe criotubos de congelamento </td></tr><tr><td> Prato de cultura de células (100 mm) </td><td> Corning </td><td> 430167 </td><td> Estéril </td></tr><tr><td> Hyclone DMEF </td><td> ThermoScientific </td><td> SH30023.01 </td><td> Loja, estéril refrigerado, glutamina incluído </td></tr><tr> &lt;td&gt; Soro Fetal Bovino </td><td> Cellgro </td><td> 35-010-CV </td><td> Estéreis, loja de alíquotas congeladas </td></tr><tr><td> Penicilina / estreptomicina / Antifungal </td><td> GIBCO </td><td> 15240-062 </td><td> Estéreis, loja de alíquotas congeladas </td></tr><tr><td> Digite 9 Parafina </td><td> Richard Allan-Científico </td><td> 8337 </td><td></td></tr><tr><td> D-PBS 1X </td><td> GIBCO </td><td> 14190-144 </td><td> Estéril </td></tr><tr><td> Paraformaldeído 16% </td><td> EM Sciences </td><td> 15710 </td><td> Faça loja fresco, refrigerado </td></tr><tr><td> Glutaraldeído 8% </td><td> EM Sciences </td><td> 16019 </td><td> Faça loja fresco, refrigerado </td></tr><tr><td> Nível de Biossegurança 2 capa </td><td> Vário </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ultra-baixo congelador </td><td> Vário </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Printer Cassete Sakura </td><td> Sakura </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Sakura VIP300 </td><td> Sakura </td><td></td><td> Processador automático de parafina </td></tr><tr><td> Estação de Inclusão em Parafina </td><td> ThermoFisher </td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabela 1. Reagentes específicos e equipamentos.

protocolo de coleta para pâncreas humano

Collection Protocol for Human Pancreas

Esta dissecção e procedimento de amostragem foi desenvolvido para a Rede de Doadores de Órgãos do pâncreas com Diabetes programa (nPOD) para padronizar a preparação do pâncreas recuperado de doadores de órgãos cadáveres. O pâncreas é dividido em 3 regiões principais (cabeça, corpo, cauda), seguido por seriados transversais ao longo do eixo medial para lateral. Secções alternadas são utilizados para parafina fixo e blocos congelados frescos e amostras remanescentes são picados para encaixe preparações amostra congelada, com ou sem inibidores de RNAse, por DNA, RNA, ou o isolamento de proteínas. O objetivo geral do procedimento de dissecção pâncreas é para provar o pâncreas inteiro, mantendo a orientação anatômica. Heterogeneidade endócrino célula em termos de composição ilhéu, tamanho e número é relatado para ilhotas humanos em comparação com ilhotas de roedores 1. A maioria dos ilhéus humanos a partir da cabeça do pâncreas, regiões do corpo e da cauda são compostos de insulina containin-g beta-células seguido por proporções inferiores de glucagon contendo ct-células e somatostatina-ô-contendo células. Células pancreáticas polipeptídeo contendo PP e células que contêm grelina epsilon também estão presentes, mas em pequenas quantidades. Em contraste, a região uncinado contém ilhotas que são principalmente compostas por células pancreáticas polipéptido contendo 2 pp. Essas variações regionais ilhotas surgem diferenças de desenvolvimento. O pâncreas desenvolve a partir das gemas pancreáticas ventral e dorsal no estômago e depois da rotação do estômago e do duodeno, os movimentos do lóbulo ventral e os fusíveis com o 3 dorsal. O lóbulo ventral forma a porção posterior da cabeça, incluindo o processo uncinado enquanto o lobo dorsal dá origem ao resto do órgão. Variação de pâncreas Regional também é relatado com a região da cauda com maior densidade de ilhota em comparação com outras regiões e os dorsais lobo derivados componentes submetidos a atrofia seletiva na diabetes tipo 1 <saté&gt; 4,5. Órgãos, tecidos e muitas vezes são recuperadas a partir dos doadores de órgãos e incluir nós pancreáticas linfáticos, baço e gânglios linfáticos não-pancreáticas. Estas amostras são recuperados com os formatos similares às utilizadas para o pâncreas com a adição de isolamento de células criopreservadas. Quando o duodeno proximal está incluído com o pâncreas, mucosa duodenal pode ser recolhida para parafina e congeladas blocos e preparações instantâneas picados congelados.

Este vídeo demonstra um processo para o processamento de dissecção pâncreas humano em formatos de armazenamento. Orientação anatómica é mantida ao longo das regiões pancreáticas para permitir a definição da composição de ilhotas regional e densidade.

Protocolo de Coleta para Pâncreas Humano

Este procedimento de dissecção e amostragem foi desenvolvido para o programa Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) para padronizar a preparação...

O objetivo geral deste procedimento é dissecar o pâncreas humano de maneira que mantenha a orientação anatômica. Isso é realizado removendo o duodeno e o baço do pâncreas e, em seguida, removendo o excesso de gordura e vasos do pâncreas. O segundo passo é pintar a superfície anterior com tinta azul e a superfície posterior com tinta preta.Em seguida, o pâncreas é dividido em três regiões. Cada região é então fatiada transversalmente em fatias uniformes e colocada em caixas de parafina, moldes de OCT ou picada mais finamente e transferida para tubos. Por fim, amostras são coletadas das três regiões do pâncreas, mantendo-se a orientação anatômica correta para análises futuras.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na pesquisa sobre diabetes tipo um, como os mecanismos subjacentes à perda da massa ou função das células beta e à natureza do ataque das células imunológicas. A demonstração visual do método de processamento do pâncreas é essencial, pois manter a orientação in vivo do pâncreas exige atenção aos detalhes. A demonstração do procedimento será realizada por Linda Snyder, histotecnóloga, e Emily Montgomery, cientista biológica, do meu laboratório.Inicie preparando todos os materiais necessários para o procedimento. Primeiro, rotule as caixas que conterão os blocos de parafina com um identificador do doador, tipo de amostra, número do alíquota e quaisquer informações adicionais. Em seguida, rotule as formas de OCT da mesma maneira.Corte pedaços suficientes de folha de alumínio para embrulhar cada bloco de OCT e reserve-os para uso posterior. Prepare todos os frascos necessários para armazenar as amostras frescas e congeladas. Adicione posteriormente RNA e meio RPMI, quando apropriado.Em seguida, prepare as áreas de trabalho, colocando placas de dissecação, instrumentos esterilizados e todos os outros materiais necessários para o procedimento tanto dentro de uma cabine de segurança biológica quanto sobre uma bancada. Organize todas as cápsulas e moldes de OCT em ordem de utilização, por perto. Prepare um banho de congelamento adicionando isopentano suficiente para cobrir o gelo seco no fundo de uma caixa de isopor.Para iniciar a dissecação, remova o duodeno e o baço. Comece a separar o duodeno e o pâncreas em uma extremidade e continue até que estejam completamente destacados. O baço está soltamente aderido e pode ser facilmente removido da gordura e do pâncreas.Em seguida, limpe o pâncreas de vasos adiposos e nervos residuais utilizando uma combinação de dissecação romba e afiada. Reserve a gordura e os linfonodos para serem processados posteriormente. Após a limpeza, coloque o pâncreas sobre uma tábua de dissecação coberta com toalhas de papel.Manter a orientação correta do pâncreas é o aspecto mais difícil deste procedimento. Para garantir o sucesso, as superfícies anterior e posterior são pintadas com tintas de cores diferentes. Mergulhe um aplicador de algodão na tinta azul, espalhe a tinta sobre a superfície anterior do pâncreas e remova o excesso.Em seguida, mergulhe um novo aplicador na tinta preta e espalhe-a sobre a superfície posterior do pâncreas. Retorne o pâncreas à sua orientação normal. Com a superfície anterior voltada para cima, o pâncreas está agora pronto para ser cortado em três secções.Primeiro, corte a junção entre a cabeça e o corpo. Em seguida, divida a porção restante em partes aproximadamente iguais para separar o corpo e a cauda e registre o peso de cada região do pâncreas, começando pela seção da cabeça.Divida cada região em seções de aproximadamente 0,5 centímetro cortando de maneira transversal, semelhante ao corte de uma barra de pão. Após o corte de cada região do pâncreas, remova a última seção da região da cabeça, que é a seção da junção cabeça-corpo, e coloque-a em uma placa de dissecação separada. Pique esta seção em pedaços pequenos e distribua os pedaços uniformemente entre tubos criogênicos rotulados com e sem RNA.Posteriormente, os frascos são então congelados. Seguindo procedimentos padrão. Repita este procedimento para a seção da junção do corpo com a cauda.Uma vez que as amostras picadas tenham sido coletadas, incline todos os cortes transversais para a direita. Cortes alternados de cada região serão removidos. Para blocos de parafina e OCT, remova o primeiro corte para o bloqueio em parafina.Se uma seção for muito grande, corte-a ao meio. Rotule as cápsulas como A e B. Se o pedaço ainda for muito grande, corte cada seção perpendicularmente ao corte anterior e, em seguida, rotule as cápsulas de A a D no sentido horário. Como visto aqui, posicione a cápsula de modo que o rótulo fique à esquerda.Em seguida, coloque o tecido na cassete e feche a tampa. Transfira a cassete para um recipiente contendo formalina tamponada neutra. Numere o bloco sequencialmente dentro de cada região, começando pela seção mais medial para blocos de OCT.Derrame uma fina camada de meio OCT em uma forma previamente rotulada. Antes de introduzir o tecido, cubra-o com meio OCT e congele rapidamente a amostra para uso posterior, retornando então ao tecido que foi reservado anteriormente. Isole os linfonodos pancreáticos removendo a gordura e o tecido conjuntivo ao redor da cápsula do linfonodo. Coloque os linfonodos em uma placa estéril contendo DMEM e pique os linfonodos maiores em pedaços não superiores a 0,5 centímetros.Uma vez isolados os linfonodos pancreáticos, divida o tecido entre os frascos e as caixas preparadas para processamento adicional. Após finalizar os linfonodos, pique o baço e armazene-o de maneira semelhante. Para processar o duodeno, use uma compressa umedecida para limpar a mucosa de muco, corte a mucosa e, em seguida, seccione-a.Divida as amostras de mucosa conforme mostrado anteriormente. Usando este procedimento, coletam-se amostras representativas de cada região do pâncreas, como visto aqui. Os pesos das regiões da cabeça, corpo e cauda foram aproximadamente iguais.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como processar um pâncreas humano em diferentes tipos de amostras, especificamente a capacidade de manter a orientação, bem como de como isolar linfonodos da gordura peripancreática.

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Alcançar alta qualidade e quantidade adequada de ilhotas humanas é um dos pré-requisitos importantes para o transplante de ilhotas bem sucedido. Neste vídeo, descrevemos passo a passo os procedimentos para o isolamento de ilhotas pancreáticas humanas (parte I: a digestão e coleta de tecido pancreático), utilizando um método modificado automatizado.

Isolamento Islet humana Pancreatic: Parte I: Digestão e Coleta de tecido pancreático

Alcançar alta qualidade e quantidade adequada de ilhotas humanas é um dos pré-requisitos importantes para o transplante de ilhotas bem sucedido. Neste vídeo, descrevemos passo a passo os procedimentos para o isolamento de ilhotas pancreáticas humanas (parte II: purificação e cultura de ilhotas humanas) utilizando um método modificado automatizado.

Isolamento Islet humana Pancreatic: Parte II: Purificação e Cultura de Ilhotas Humanos

O fornecimento de diabéticos tipo 2 ilhotas para pesquisa é insuficiente. Aqui nós compartilhamos nosso protocolo para isolar ilhotas de pacientes submetidos à pancreatectomia parcial. Esta abordagem representa um local único para a obtenção de ilhotas de diabéticos tipo 2 e clinicamente combinado não-diabéticos em número adequado para estudos básicos e clínicos.

Isolamento de Ilhotas Humanos de pacientes parcialmente pancreatectomizado

Este vídeo demonstra os procedimentos para caracterização de ilhotas pancreáticas humanas com hematoxilina e eosina (H &amp; E) e imuno-histoquímica (IHQ). Seções pancreáticas de cabeça, corpo e regiões da cauda estão manchadas por tanto H &amp; E e IHC para determinar a composição endócrino ilhéu (insulina, glucagon e polipeptídeo pancreático), a replicação celular (Ki67), e infiltrado inflamatório (H &amp; E, CD3). A região uncinado está localizado usando IHC para polipeptídeo pancreático.

Protocolos de coloração de ilhotas pancreáticas humanas

Um protocolo para isolar, os clusters da cultura e imagem de células ilhotas (CCI) derivadas de células pancreáticas fetais humanos é descrito. O método detalha os passos necessários para gerar CCIs de tecido, cultura como monocamadas em suspensão ou na forma de agregados, e imagem para os marcadores de proliferação e decisões destino celular do pâncreas.

Isolamento, cultura, e imagem de Fetal Humano pancreáticas grupos de células

desafios críticos para o campo de pesquisa do diabetes estão a compreender os mecanismos moleculares que regulam a replicação de células β dos ilhéus e desenvolver métodos para estimular a regeneração de células-β. Aqui um método de alto teor de rastreio para identificar e avaliar a actividade de promoção da replicação de células β de moléculas pequenas é apresentada.

A-alta conteúdo<em&gt; In Vitro</em&gt; Replicação plataforma de descoberta de células-β das ilhotas pancreáticas

Aqui, apresentamos um passivo de protocolo para seções de pâncreas humano imagem em três dimensões (3D) usando otimizado métodos de compensação. Este manuscrito demonstra estes procedimentos para compensação de óptica passiva seguido por imunofluorescência múltiplas coloração para identificar os elementos-chave das redes neurais sensoriais e autonômicas, que inervam ilhotas humanas.

Imagens 3D de alta resolução da rede Neuro-insular pâncreas humano

Este protocolo da isolação da ilhotas descreveu uma rota nova da injeção do colagenase para digerir o tecido exócrina e um procedimento simplificado do inclinação para purificar os ilhotas dos ratos. Envolve a digestão enzimática, separação de gradiente/purificação, e Islet mão-picking. O isolamento bem-sucedido pode produzir 250 – 350 de alta qualidade e ilhotas totalmente funcionais por mouse.

Um protocolo de alta eficiência simples para isolamento de Islet pancreático de camundongos

Aqui nós apresentamos um protocolo para isolar células de ilhotas pancreáticas do mouse para as induções ROS de triagem pelos xenobióticos para identificar os potenciais químicos xenobióticos de diabetogenic.

Um rastreio de baseada em célula de murino ilhotas pancreáticas para produtos químicos ambientais Diabetogenic

Este protocolo descreve um método para a aquisição sincrônica e o co-registro de eventos de sinalização intracelular e a secreção de insulina e glucagon por pseudoilhotas humanas primárias usando a entrega adenoviral de um biossensor cíclico de adenosina monofosfato (AMPc), um detector de diferença de AMPc in situ (cADDis) e um sistema de microperfusão.

Sistema de Pseudoilhotas Humanas para Avaliação Síncrona da Dinâmica de Biossensores Fluorescentes e Perfis Secretores de Hormônios

Este protocolo descreve um método padronizado para colheita cirúrgica, digestão enzimática e purificação por gradiente de densidade de ilhéus pancreáticos de rato Lewis, permitindo preparações de alto rendimento e alta pureza para uso direto em transplantes ou estudos in vitro .

Isolamento e purificação de ilhotas pancreáticas a partir de ratos Lewis usando digestão enzimática e separação por gradiente de densidade

Aprenda a dissecar o pâncreas humano preservando a orientação anatômica usando tinta e técnicas de dissecção precisas. Este método permite analisar a composição regional dos ilhéus para pesquisa em diabetes.

Protocolo de Coleta para Pâncreas Humano

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