Name: Um modelo de tumor de bexiga ortotópico e Avaliação de Tratamento de sarna intravesical (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 43 s
Description: Aprenda a estabelecer um modelo ortotópico de tumor de bexiga em camundongos imunocomprometidos e avaliar tratamentos com saRNA por via intravesical, utilizando ultrassonografia e imagem de bioluminescência para monitoramento.

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Esta pesquisa é financiada pelo Henry AACR Bexiga Shepard Cancer Research Grant (09-60-30-LI).

Procedimentos que envolvem seres animais foram aprovados pelo Institutional Animal Care e do Comitê de Uso (IACUC) da Universidade da Califórnia, em San Francisco. 1. Preparação de células <ol><li> A bexiga humana linha de células de cancro KU-7-luc2-GFP (Caliper Life Sciences, Hopkinton, MA) é crescido em meio RPMI-1640 suplementado com 10% de soro fetal de bovino e 50 gentamicina ug / ml. </li><li> As culturas são mantidas a 37 ° C, 5% de CO 2 com os meios de muda a cada dois a três dias. </li><li> As células foram colhidas por digestão com tripsina e contadas utilizando um hemocitómetro. Uma única suspensão celular de 2 x 10 6 células em 50 ul foi preparada em solução salina tamponada com fosfato e mantido em gelo. </li></ol> 2. Modelo de tumor ortotópico de bexiga <ol><li> Fêmeas nu (nu / nu) ratinhos 8-10 semanas de idade (Simonsen Laboratory, Gilory, CA) foram usadas. </li><li> Coloque um pano estéril sobre uma almofada de aquecimento para servir a umsa plataforma cirúrgica. Estéril lubrificante geleia, 24-Guage cateteres com agulhas estilete, solução de nitrato de prata, e água estéril, que são preparados. </li><li> Anestésico geral é induzida nos ratinhos com isoflurano inalado (3% para a indução, 1-2% para manutenção) e mantida através nosecone. Pomada oftálmica estéril é aplicada para os olhos do animal, e uma almofada de calor é utilizado para manter o calor do corpo. </li><li> Posicione o mouse na posição supina. </li><li> Suavemente agarrar vulva do animal com uma pinça, para estabilização. </li><li> Utilizando um cateter 24-guage intravenosa com o estilete agulha removido, a uretra do rato é cateterizada. Lubrificação amplo deve ser usado. Com o supino do mouse, a uretra está localizado imediatamente posterior às pregas vulvares e anterior à vagina. Um ângulo de 45 graus é inicialmente tomadas a fim de canular a uretra e passar por baixo do osso púbico. Um ângulo de mais superficial é então levado a passar através da uretra para a bexiga. Suaves pres pélvicosCertifique-se de endireitar a uretra muitas vezes podem ajudar. Cuidados devem ser tomados para evitar empurrar demasiado duro contra a resistência, pois isso pode levar à perfuração da uretra ou bexiga. Urina visto dentro do cateter confirma a sua localização no interior do lúmen da bexiga. </li><li> Aspirar a urina a partir do lúmen do cateter e da bexiga usando a agulha estilete. A agulha estilete é usado para todas as aspirações subsequentes e injecções, deixando o cateter no lugar. Isto permite a injecção de volumes precisos, eliminando o espaço morto dentro do cateter, e faz cateterismos repetidas desnecessária. </li><li> Para prejudicar a camada de glicosaminoglicano do urotélio da bexiga, 10 ul de 0,5 M de nitrato de prata é injectado e deixou-se habitar durante 10 segundos. Isto pode formar um precipitado branco com urina restante. </li><li> Aspirar e descartar o conteúdo precipitar e bexiga usando uma agulha de estilete. </li><li> Lave a bexiga através da injeção de água 100 uL estéril. Aspirar e descarte a água. Repeem lavagem com água estéril 3 vezes para um total de 4 lavagens. </li><li> Coloque uma gravata de seda 4-0 ao redor do meato uretral para ocluir a uretra na preparação para a remoção do cateter. </li><li> Injectar previamente preparado 2 x 10 6 KU-7-GFP-luc2 células em 50 uL utilizando a agulha de estilete. </li><li> Simultaneamente remover o cateter ea agulha estilete, deixando a uretra ocluída pelo laço de seda. </li><li> O rato será mantida sob anestesia geral, durante 2 horas antes do laço de seda é removido eo animal é acordado. </li></ol> 3. Ultra-som <ol><li> Anestesia geral foi induzida com isoflurano vaporizado e mantida através de cone do nariz. </li><li> A VisualSonics Vevo 770 In Vivo de Alta Resolução Micro-Imaging System (VisualSonics Inc, Toronto, Ontário, Canadá) com a RMV-704 sonda de 40 MHz foi utilizado. </li><li> Posicione o mouse na posição supina na plataforma ultra-som. </li><li> Proteger as patas traseiras do animalcom fita para evitar o movimento excesso durante a manipulação da sonda de ultra-som. </li><li> Aplique o gel de ultra-som à pelve mouse. </li><li> Baixa um RMV-704 sonda de ultra-som (40 MHz) para a bacia do mouse para obter imagens transversais ou longitudinais. </li><li> Se o tumor for encontrado, as imagens podem ser salvas para a medição das dimensões do tumor. </li></ol> 4. Bioluminescent imagem <ol><li> Executar a injecção intraperitoneal de 200 uL (150 mg / kg) substrato luciferina. </li><li> Induzir anestesia geral com isoflurano vaporizado e manter através de cone do nariz. </li><li> Coloque ratos em decúbito dorsal no imager bioluminescência. </li><li> Cinco minutos após a injecção luciferina, medir a bioluminescência a partir do animal em fotões por segundo. </li></ol> 5. Preparação sarna <ol><li> Sintetizar RNA oligonucleotídeos em uma escala de 50-100 mmol. </li><li> Recozer complementares de um único oligonucleótidos de cadeia isaRNAs nto duplex. </li><li> Lipid nanopartícula-(LNP)-sarna são preparados com o lípido ionizável 1,2-dilinoleyl-4-(2 - dimetilaminoetil) - [1,3]-dioxolano (DLinKC2-DMA), disteroylphosphatidyl colina, colesterol, e PEG-DMG usando uma espontânea de vesículas procedimento de formulação de formação, como descrito anteriormente. 1 </li></ol> 6. Administração intravesical de sarna Formulado <ol><li> Depois de estabelecer o modelo de tumor ortotópico bexiga, os ratos são tratados com intravesical pequena activador RNA (sarna) formulada em nanopartículas de lípidos (LNPs) (Tabela 1). </li><li> Anestésico geral é estabelecido e mantido com vaporizado isoflurano, e lubrificante oftálmica estéril é aplicado. </li><li> Coloque o animal em decúbito dorsal. </li><li> Realizar cateterismo uretral como descrito anteriormente. </li><li> Coloque uma gravata de seda 4-0 ao redor da uretra e do cateter. </li><li> Aspirar toda a urina a partir do cateter ebexiga usando uma seringa e agulha vazio estilete. </li><li> Injectar LNP-sarna intravesical para uma dose total de 50 uL (3 mg / kg). Simultaneamente remover o cateter ea agulha estilete, deixando a uretra ocluída pelo laço de seda. </li><li> O rato permanecerá anestesiados com a uretra ocluída durante 2 horas. </li><li> O tratamento com intravesical LNP-sarna foi iniciado no dia 4 após a implantação do tumor. Os ratinhos foram tratados em série, cada 3 dias, para um total de 14 tratamentos. </li></ol> 7. Os resultados representativos Tumores da bexiga decorrentes KU-7-luc2-GFP células pode ser monitorizada por luciferase bioluminescente de imagem (Figura 1A e C) e de ultra-som da bexiga (Figura 1B e D). Os tumores são frequentemente detectável dentro de 3-5 dias após a inoculação das células. Encontramos a implantação do tumor de bexiga com sucesso em mais de 90% dos ratos. Como o tratamento com ARNdc intravesical se segue, a progressão do tumor pode ser monitorizada wiº destas modalidades. Depois de o animal é sacrificado, o crescimento do tumor pode também ser confirmada utilizando GFP de fluorescência. Em geral, a média de bioluminescência correlacionada com dimensões de ultra-som médios para os tumores da bexiga, como visto visualmente nas Figuras 1C e 1D. No entanto, depois de os animais foram sacrificados e tumor foi confirmada por GFP, verificou-se que a bioluminescência correlacionada mais estreitamente com a presença de tumor viáveis ​​do que as medições de ultra-som. Isto foi especialmente aparente entre ratinhos tratados com sarna (em oposição aos controlos), porque o tecido da cicatriz residual em ratinhos tratados era muitas vezes visualizadas por ultra-sons, mas não podia ser diferenciado do tumor ao vivo. <img src="/files/ftp_upload/4207/4207fig1.jpg" alt="A Figura 1" /> Figura 1. Cinética de crescimento de tumor de tumores da bexiga. (A) de imagem bioluminescência mede a actividade da luciferase em tumores da bexiga para confirmar a sua localização e crescimento. (B) In vivo ultrasoun bexigad usando uma sonda de 40MHz produz imagens tumorais, cujas dimensões podem ser medidos com precisão. (C) Os gráficos ilustrando aumento progressivo do tumor em dimensões de bioluminescência e ultra-som. Os valores representam a média (+ / - desvio padrão) medições a partir de 6 animais. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4207/4207fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver maior figura</a> .

<ol><li>Semple, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rational+design+of+cationic+lipids+for+siRNA+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Rational design of cationic lipids for siRNA delivery.</a> Nature. 28, 172-176 (2010).</li>
<li>Li, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+dsRNAs+induce+transcriptional+activation+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Small dsRNAs induce transcriptional activation in human cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 17337-17342 (2006).</li>
<li>Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antitumor+effect+of+dsRNA-induced+p21%28WAF1%2FCIP1%29+gene+activation+in+human+bladder+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+cancer+therapeutics%22%5BJournal%5D)">Antitumor effect of dsRNA-induced p21(WAF1/CIP1) gene activation in human bladder cancer cells.</a> Molecular cancer therapeutics. 7, 698-703 (2008).</li>
<li>Chancellor, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preliminary+results+of+myoblast+injection+into+the+urethra+and+bladder+wall%3A+a+possible+method+for+the+treatment+of+stress+urinary+incontinence+and+impaired+detrusor+contractility%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourology+and+urodynamics%22%5BJournal%5D)">Preliminary results of myoblast injection into the urethra and bladder wall: a possible method for the treatment of stress urinary incontinence and impaired detrusor contractility.</a> Neurourology and urodynamics. 19, 279-287 (2000).</li>
<li>Hadaschik, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+validated+mouse+model+for+orthotopic+bladder+cancer+using+transurethral+tumour+inoculation+and+bioluminescence+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+international%22%5BJournal%5D)">A validated mouse model for orthotopic bladder cancer using transurethral tumour inoculation and bioluminescence imaging.</a> BJU international. 100, 1377-1384 (2007).</li>
<li>Fu, C., Apelo, C. A., Torres, B., Thai, K. H., Hsieh, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+Bladder+Wall+Injection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Mouse Bladder Wall Injection.</a> J. Vis. Exp. (53), e2523(2011).</li>
<li>Dobek, G. L., Godbey, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Orthotopic+Model+of+Murine+Bladder%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer.+J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">An Orthotopic Model of Murine Bladder.</a> Cancer. J. Vis. Exp. (48), 2535(2011).</li>
<li>Dinney, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+metastatic+variants+from+human+transitional+cell+carcinoma+passaged+by+orthotopic+implantation+in+athymic+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+urology%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of metastatic variants from human transitional cell carcinoma passaged by orthotopic implantation in athymic nude mice.</a> The Journal of urology. 154, 1532-1538 (1995).</li>
</ol>

LCL é um inventor chamado em pedidos de patentes pendentes relacionadas com a sarna que foram arquivados pela Universidade da Califórnia em San Francisco e licenciada para Alnylam Pharmaceuticals.

Apresenta um protocolo para o estabelecimento de um modelo ortotópico xenoenxerto rato tumor da bexiga, seguido de tratamento intravesical dos tumores com LNP sarna formulado que tem como alvo o promotor de p21 CIP1/WAF1 (p21) para a activação transcricional. 2, 3 Os tumores resultantes podem ser confirmada e monitorados com exames de imagem de bioluminescência e ultra-som da bexiga. Modelos ortotópicos pode ser superior à intraperitoneal, subcutânea ou intravenosa os modelos, fornecendo um meio de...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> KU-7-luc-GFP células </td><td> Caliper </td><td> 128091 </td><td></td></tr><tr><td> tímicas ratinhos nus (nu / nu) </td><td> Simonsen Laboratories </td><td> 6-7 semanas de idade </td><td> Sim: (NCR) nu / nu fisol </td></tr><tr><td> Unidade de ultra-som </td><td> Visualsonics </td><td> Vevo 770 </td><td> RMV-704 sonda </td></tr><tr><td> Unidade de bioluminescência </td><td> Caliper </td><td> IVIS Spectrum </td><td></td></tr><tr><td> Exel cateter safelet </td><td> Pescador </td><td> 14-841-21 </td><td> 24G x ¾ &quot; </td></tr><tr><td> O nitrato de prata </td><td> Sigma </td><td> S8157 </td><td></td></tr><tr><td> Hamilton seringa </td><td> Hamilton company </td><td> 80301 </td><td></td></tr><tr><td> LNP-sarna </td><td> Alnylam Pharmaceuticals </td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabela 1. Reagentes específicos e equipamentos.

um modelo de tumor de bexiga ortotópico e avaliação de tratamento de sarna intravesical

An Orthotopic Bladder Tumor Model and the Evaluation of Intravesical saRNA Treatment

Apresentamos um novo método para o tratamento de cancro da bexiga com intravesical entregue pequena activador RNA (sarna) em um xenoenxerto modelo de rato ortotópico tumor da bexiga. O modelo do rato é estabelecido por cateterismo uretral sob anestesia geral inalatória. Queimadura química é então introduzido para a mucosa da bexiga usando solução de nitrato de prata intravesical para romper a camada de glicosaminoglicano bexiga e permite que as células para anexar. Após várias lavagens com água estéril, cancro da bexiga humana KU-7-luc2-GFP células são instilado através do cateter no interior da bexiga para habitar durante 2 horas. Subsequente crescimento de tumores de bexiga é confirmada e monitorado por ultra-som na bexiga vivo e de imagem de bioluminescência. Os tumores são então tratados com intravesical sarna formulados em nanopartículas de lípidos (LNPs). O crescimento do tumor é monitorizado com ultra-sons e bioluminescência. Todos os passos do presente processo são demonstradas no vídeo que o acompanha.

Estabelecer um modelo de tumor de bexiga ortotópico para avaliar os efeitos antitumorais de sarna intravesical entregue e acompanhamento do crescimento tumoral por ultra-som e de imagem de bioluminescência.

Um modelo de tumor de bexiga ortotópico e Avaliação de Tratamento de sarna intravesical

Apresentamos um novo método para o tratamento do câncer de bexiga com RNA pequeno ativador (saRNA) administrado por via intravesical em um modelo de xenotransplante ortotópico de bexiga de camundongo...

Apresentamos um método para estabelecer um modelo de tumor ortotópico de bexiga em camundongos imunocomprometidos. Tratamos esses tumores com RNA de dupla fita pequeno administrado por via intravascular e monitoramos os tumores por meio de ultrassonografia da bexiga e imagem de bioluminescência. A anestesia geral é induzida com isof, flúor vaporizado, e pomada oftálmica estéril é aplicada.O camundongo é então colocado em posição supina, e a anestesia é mantida com isoflurano por meio de cone nasal. Em seguida, o camundongo deve ser cateterizado. Utilizamos um cateter intravenoso de 24 gauge com o estilo retirado.A cateterização é frequentemente a etapa mais difícil e imprevisível do protocolo. A lubrificação abundante com gel KY e a técnica correta são fundamentais para uma cateterização bem-sucedida. É mostrada aqui a região da vulva do camundongo.A uretra situa-se logo abaixo dos lábios vulvares. Após a lubrificação, utiliza-se a pinça para cateter introduzir e estabilizar suavemente a vulva e a uretra. Inicialmente, utilizava-se um ângulo mais acentuado de 45 graus para canular a uretra, mas, uma vez dentro da uretra, adota-se um ângulo mais suave para avançar suavemente até a bexiga.Vamos demonstrar este processo aqui. Mais uma vez, a pressão pélvica suave para endireitar a uretra pode frequentemente ajudar, e deve-se ter cuidado para evitar empurrar com muita força contra resistência, pois isso pode levar à perfuração da uretra ou da bexiga. A urina observada aqui dentro do cateter confirma essa localização dentro da luz da bexiga.A urina dentro do cateter é então removida com a agulha estiloide, e o cateter permanece agora no lugar. Aproximadamente cinco milímetros do cateter devem permanecer visíveis fora da uretra, de modo que a ponta do cateter permaneça na luz da bexiga e não encostada na parede da bexiga. Se o cateter for colocado muito para dentro, a ponta pode se alojar na parede da bexiga e impedir as injeções.Para todas as injeções subsequentes. Uma seringa carregada na agulha guia é inserida através do cateter. Isso permite a injeção de volumes precisos, eliminando o espaço morto dentro do cateter, e torna desnecessárias cateterizações repetidas para criar uma lesão térmica na parede da bexiga.10 microlitros de nitrato de prata 0,5 molar são injetados e mantidos em repouso por 10 segundos. O nitrato de prata pode formar um precipitado branco com urina residual dentro da bexiga. Esse precipitado e qualquer solução remanescente são removidos do cateter.Em seguida, procedemos a lavar a bexiga com 100 microlitros de água estéril, quatro vezes, removendo o fluido do lúmen do cateter a cada vez. Após esta primeira lavagem, o precipitado branco ainda é visível dentro do cateter, mas com cada lavagem, o fluido torna-se mais claro. Um fio de seda 4-0 é usado para ocluir a uretra, e agora estamos prontos para injetar as células cancerígenas.As células são carregadas em uma seringa acoplada a uma agulha estiloide, e as células são injetadas na bexiga. O cateter é removido e a uretra permanecerá ligada com o camundongo sob anestesia por duas horas. Em intervalos predeterminados, a progressão do tumor é monitorada.Utilizando imagem de bioluminescência in vivo, os camundongos são primeiramente injetados com Lucifer e substrato por meio de injeção intraperitoneal. Após a anestesia geral ser estabelecida com isoflurano vaporizado, os camundongos são posicionados em decúbito dorsal dentro da máquina de ivus. A bioluminescência é medida em unidades de fótons por segundo.A presença de sete células KU nas bexigas de camundongos é facilmente evidente, e a intensidade da bioluminescência pode ser acompanhada ao longo do tempo. A presença e a progressão de tumores na bexiga também podem ser monitoradas por meio de imagem ultrassonográfica. Após a indução da anestesia geral com isoflurano vaporizado, aplica-se pomada oftálmica estéril.O camundongo é colocado em posição supina sobre a mesa de ultrassonografia. A anestesia de manutenção é obtida com isoflurano por meio de cone nasal. As patas traseiras do camundongo podem ser fixadas à mesa para evitar movimentos excessivos do corpo durante a manipulação da sonda de ultrassom.Uma vez concluído isso, o gel de ultrassom é aplicado na região mediana da pelve do animal. Após a aplicação do gel, uma sonda de 40 megahertz é fixada ao dispositivo de sustentação e lentamente posicionada sobre o corpo do animal. A bexiga é facilmente visível como uma estrutura hipoequica arredondada na linha mediana.Se o animal não tiver sofrido irritação significativa antes da anestesia, a bexiga geralmente já está distendida, e verificamos ser desnecessário cateterizar o camundongo para obter distensão da bexiga. Aqui podem ser obtidas imagens transversais e longitudinais. Um tumor é facilmente visualizado no lúmen da bexiga.Se um tumor for encontrado, as imagens podem ser salvas para a medição das dimensões tumorais. Após o estabelecimento do tumor da bexiga, os camundongos são tratados intravesicalmente com RNA de dupla fita pequeno formulado em nanopartículas lipídicas. A anestesia geral é estabelecida e o ungüento oftálmico é novamente aplicado.O camundongo é então colocado em posição supina e realiza-se a cateterização uretral. Conforme descrito anteriormente, utiliza-se um fio de seda 4-0 para ocluir a uretra ao redor do cateter. Normalmente, são feitos dois nós, conforme mostrado aqui.Uma seringa vazia montada em uma agulha com estilo é usada para esvaziar completamente a bexiga. Cinquenta microlitros de RNA de fita dupla pequeno são administrados por via intravesical, numa dose total de três miligramas por quilograma. Em seguida, a agulha e o cateter são removidos.O camundongo permanecerá anestesiado com a uretra ocluída por um total de duas horas. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de um método para criar um modelo ortotópico de tumor de bexiga em camundongos, monitorar o tumor por imagem de bioluminescência e ultrassonografia, e tratar o tumor com RNA de pequeno porte administrado por via intravesical. Existem algumas particularidades na técnica, que exigem alguma prática, especialmente na cateterização, mas, no geral, trata-se de um protocolo que deverá ser facilmente replicável.Tivemos bom sucesso ao implantar tumores de bexiga em camundongos, e os efeitos do tratamento com o RNA de pequeno porte são muito promissores. No entanto, o que é mais empolgante neste protocolo é que, embora tenhamos tratado os camundongos com RNA de pequeno porte, a mesma técnica pode ser utilizada para testar qualquer terapia intravesical para câncer de bexiga.I.

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Research

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Medicina

Tumores de bexiga são estabelecidos em camundongos fêmeas, de uma forma minimamente invasiva através de cateterismo, cauterização local, ea adesão posterior de células de carcinoma aos locais queimar.

Um modelo ortotópico de câncer de bexiga murino

Neste vídeo, descrevemos o transplante ortotópico de organoides tumorais de bexiga cultivados para a bexiga murina para estudar o papel do ambiente do órgão no desenvolvimento de tumores.

Modelo de Organoide de Tumor de Bexiga: Um Método para Transplante Ortotópico de Organoides de Bexiga para Bexiga Murina Receptora

Neste vídeo, descrevemos o procedimento intravesical de entrega de células cancerígenas na bexiga de um modelo de camundongo. Esse procedimento ajuda a gerar um modelo de tumor ortotópico de bexiga que pode ser usado para desenvolver estratégias terapêuticas.

Modelagem de tumor ortotópico de bexiga em modelo de camundongo: um procedimento para administração intravesical de células cancerígenas na bexiga murina

Implantação de células cancerosas para o órgão de origem pode servir como um modelo pré-clínico útil para avaliar novas terapias. Células de carcinoma da bexiga MB49 pode ser cultivada no interior da bexiga, após a instilação intravesical. Este protocolo demonstra a cateterização da bexiga do rato com a finalidade de implantação do tumor e entrega adenoviral.

Um modelo de cancro da bexiga para Ortotópico Gene Estudos de entrega

A técnica criada para inocular xenografts ortotópico de câncer de bexiga invasivo primário requer laparotomia e mobilização da bexiga. Este procedimento inflige morbidade significativa nos ratinhos, é tecnicamente difícil e demorado. Por isso, desenvolvemos um de alta precisão, a abordagem percutânea utilizando a orientação do ultra-som.

Minimamente Invasiva Estabelecimento de murino ortotópico bexiga Xenoenxertos

Aqui é descrito o método para estabelecer um modelo singênico de tumor ortotópico de bexiga em camundongos para avaliar a eficácia antitumoral da proteína bacteriana HP-NAP.

Avaliação da Eficácia da<em&gt; H. pylori</em&gt; Protein HP-NAP como uma ferramenta terapêutica para o tratamento de cancro da bexiga em um Modelo murino Orthotopic

Este protocolo descreve a geração de tumores da bexiga ortotópico de murídeo em Ratinhos C57BL / 6J e a monitorização do crescimento do tumor.

Um modelo de tumor de murino de bexiga ortotópico e Tumor Detection System

Tumores de bexiga murino são induzidas com carcinógeno nitrosamina N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) (BBN). Geração de tumor de bexiga é heterogênea; Portanto, uma avaliação correcta da carga do tumor é necessária antes de randomização para tratamento experimental. Aqui nós apresentamos um protocolo de MRI, rápido e confiável para avaliar o estágio e o tamanho do tumor.

Ressonância magnética avaliação dos tumores de bexiga murino induzida por substância cancerígena

Este protocolo descreve a geração de modelos transplantação orthotopic do paciente-derivados do xenograft por intra-vesically incutir pilhas urotelial de primeira qualidade da carcinoma da pilha ou de injetar intra-rectal pilhas de cancro colorretal em não-obeso diabético/severo combinado ratos da imunodeficiência (NOD/SCID) para o crescimento preliminar do tumor e metástases espontâneas a influência de pilhas stromal do nó de linfa, que imita a progressão de doenças metastáticas humanas.

Modelos de xenoenxertos Ortotópicos derivados do paciente para Carcinoma de células urotelial humana e crescimento do tumor do câncer colorretal e metástase espontânea

Uma visão abrangente das técnicas envolvidas na geração de um modelo do rato de câncer oral e monitorização quantitativa de invasão tumoral dentro da língua por meio de microscopia multi-fotão de células marcadas é apresentado. Este sistema pode servir como uma plataforma útil para a avaliação molecular e eficácia de drogas anti-invasivos compostos.

Multi-fotão imagem de invasão das células tumorais em um modelo de camundongo ortotópico de carcinoma epidermóide oral

Aprenda a estabelecer um modelo ortotópico de tumor de bexiga em camundongos imunocomprometidos e avaliar tratamentos com saRNA por via intravesical, utilizando ultrassonografia e imagem de bioluminescência para monitoramento.

Um modelo de tumor de bexiga ortotópico e Avaliação de Tratamento de sarna intravesical

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