Name: Profiling glicana de Polímeros da planta da parede celular usando Microarrays (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 30 s
Description: Aprenda a técnica CoMPP para perfilar glicanos da parede celular em plantas usando microarrays e anticorpos monoclonais. Este método permite analisar centenas de amostras simultaneamente e quantificar a abundância relativa de epítopos glicânicos em diferentes tecidos.

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IEM gostaria de reconhecer o dinamarquês Research Council (FTP e FNU) para financiamento. ERL reconhece o apoio de uma DP ARC subvenção. AB agradece o apoio do Centro de Excelência em ARC Usina concessão paredes celulares.

1. Coleção de tecidos e Preparação <ol><li> Recolher 100 mg de peso fresco de tecidos de planta (um mínimo de 10 mg de peso seco) em pelo menos em triplicado para cada tecido de interesse. Os passos que se seguem descrevem a preparação de material de parede celular a partir de tecidos vegetativos. No caso de tecidos de armazenamento, não-desejado amido é enzimaticamente removida antes de se proceder à extracção de polímeros da parede celular, como descrito anteriormente 13. </li><li> Homogeneizar a amostra até um pó fino com azoto líquido utilizando um Qiagen TissueLyser II, com 24 conjuntos de tubos de adaptador e 3 mm grânulos de carboneto de tungsténio (30 Hz, 2 x 30 s). Em alternativa, se apenas alguns exemplos estão a ser tratados, de um almofariz e pilão é usado. </li><li> Transfira os homogeneizados em 10 ml de plástico tubos cónicos. </li><li> Preparar o material da parede celular, por lavagem dos homogeneizados em 10 ml de etanol a 80% v / v à temperatura ambiente e agitação em vórtex vigorosamente durante 2 min. </li><li> Centrifugue as amostras a 3500 xg e elimine o sobrenadante. Repita o etanol a 70%, pelo menos, lava três vezes ou até que o sobrenadante é claro, em particular para os tecidos que contêm clorofila. </li><li> Realizar uma lavagem final com acetona a 100% e deixar os grânulos contendo os resíduos de álcool insolúvel (AIR) secar ao ar durante a noite. </li><li> Sieve as amostras de ar com uma malha de 0,4 mm 2 para conseguir um pó fino, homogéneo e para remover maior, mal partículas do solo, que por vezes ficam no homogenato. </li><li> Pesar 10 mg de amostra de ar em microtubos contendo, cada um, de 3 mm de contas de vidro para auxiliar a homogeneização das amostras. </li></ol> 2. Extracção de Glicanos parede celular <ol><li> Pectinas, e polímeros relacionados com as pectinas são extraídas as amostras pela adição de 500 ul de 50 mM CDTA (pH 7,5) para cada amostra. </li><li> Brevemente os tubos de vórtice para garantir o solvente está em contacto com o material da amostra e, em seguida misturar com o TissueLyser durante 3 horas a 8 Hz. </li><li> Centrifugue as amostras a 12.000 xg, cuidadosamente remover-se os sobrenadantes e armazenar a 4 ° C. </li><li> Lavar peletes em 1 ml de água desionizada para diluir e remover qualquer remanescente de vórtice, solvente e centrifuga-se a 13.000 x g. Repetir esta etapa, sem perturbar o sedimento e remover todo o líquido a partir dos tubos, antes de prosseguir para o passo seguinte. </li><li> Reticulantes glicanos são sequencialmente extraída da parede celular de pellet restante com 500 ul de NaOH 4M com 0,1% w / v NaBH4, usando o mesmo processo descrito nos passos 2,1-2,4 para a extracção CDTA. NaBH4 é adicionada para reduzir o aldeído (ou cetona) grupo na extremidade redutora dos polissacáridos para uma base de álcool impedindo descamação de polissacarídeos. </li><li> Após centrifugação, os sobrenadantes são novamente removidos, armazenados a 4 ° C, e as pelotas lavadas duas vezes em água desionizada antes de se proceder à extracção seguinte. </li><li> Como passo opcional, os polímeros residuais, tais como a celulose são extraídos com 500 uL cadoxen (31% v / v 1,2-diaminoethane com 0,78 M CdO), utilizando o mesmo procedimento tal como descrito nos passos 2,1-2,4. Alternativamente, o teor de celulose total em peletes restantes podem ser determinadas usando ensaios acético / nítrico (ver discussão). </li></ol> 3. Microarrays impressão <ol><li> Sobrenadantes de centrífuga contendo polímeros extraída da parede celular a 13000 xg para remover qualquer matéria particulada. </li><li> Carregar 50 ul de cada amostra para um polipropileno de 384 poços de placas de microtitulação utilizando uma disposição de pré-concebido costume em que as amostras são organizados de acordo com o tipo de tecido e do tipo de extracção. </li><li> Dilui-se a parede celular da amostra de polímero em um 0, 5 e 25 da série de diluição em série × com água desionizada. </li><li> Parâmetros como altura do pino, coleta e tempo de espera, e de lavagem são definidas no software que controla a microarrayer. </li><li> A humidade da câmara de impressão é controlada em 60% para evitar a evaporação da amostra. </li><li> O trabalho de impressão é iniciado usando LabNEXT software e de um programa, que corresponde ao esquema de microarray. </li><li> O robô utiliza pinos do canal capilar para imprimir as soluções da amostra sobre a placa de 20 x 20 centímetros membrana de nitrocelulose, que é anexada a uma placa plana na máquina. Cada ponto na matriz contém 15 nl de uma solução e é impressa em triplicado. </li><li> Microarrays idênticos são impressas lado a lado sobre a membrana e corte em matrizes individuais, após o trabalho de impressão está completa. </li><li> Em cada experimento, as matrizes podem ser modificados de modo a acomodar mais ou menos amostras, diluições ou repetições. </li></ol> 4. Sondagem de Microarrays glicano <ol><li> Após a impressão, bloquear os microarrays individuais em 5% w / v de leite em pó desnatado dissolvido em solução salina tamponada com fosfato (MPBS) à temperatura ambiente durante 2 horas para reduzir a ligação não específica. </li><li> Microarrays de sonda com anticorpos monoclonais específicos para a célula-parede glicano epítopos durante 2 h em MPBS. A maioria dos Antib monoclonalodies glicanos contra paredes celulares estão comercialmente disponíveis a partir de três empresas; Biosupplies ( <a href="http://www.biosupplies.com.au" target="_blank">www.biosupplies.com.au</a> ), Carbosource Serviços ( <a href="http://www.carbosource.net" target="_blank">www.carbosource.net</a> ) e (PlantProbes <a href="http://www.plantprobes.net" target="_blank">www.plantprobes.net</a> ). </li><li> Incluir um controlo negativo, um microarray incubadas com MPBS e não apenas o anticorpo primário. </li><li> Lavar os microarrays 3 vezes em tampão fosfato salino (PBS) durante 5 minutos para remover ligação não específica. </li><li> Sondar os microarrays com anticorpo secundário conjugado com peroxidase de rábano (HRP) em MPBS durante 2 horas. A maioria dos anticorpos monoclonais contra glicanos da parede celular exigem anti-rato ou anti-ratazana de anticorpos secundários. </li><li> Repita os passos de lavagem 3 vezes com tampão PBS, durante 5 minutos para remover ligação não específica. </li><li> Desenvolver os microarrays utilizando cromogênico (3,3-diaminobenzidina) ou chemiluminecent (luminol) substratos. </li></ol> 5. Quantificação <ol><li> Após o desenvolvimento, digitalizar os microarrays individuais usando uma alta resolução (1200 dpi) scanner de desktop e salvar as imagens negativas, como arquivos TIFF de 16 bits (Figura 3). </li><li> Calcular a intensidade integral de cada mancha usando Xplore Software Image Processing (LabNEXT) equipado com uma ferramenta automatizada de grade. A intensidade local integrante é derivado a partir da soma de pixels na área da grelha em torno de cada ponto. </li><li> Os dados de grade para cada microarray é exportado como um arquivo txt e pode ser importado manualmente em uma planilha do Excel para análise. Uma ferramenta online ( <a href="http://arraytemplates.charliehart.com.au/" target="_blank">http://microarray.plantcell.unimelb.edu.au/</a> ) foi desenvolvido para traduzir automaticamente e processar dados de arquivos txt individuais. </li><li> A intensidade de manchas integral é na média entre impressão repetições e diluições para obter um ponto &quot;médiavalor de intensidade &quot;para cada amostra (Figura 2). Alternativamente, os sinais de ponto correspondente a um único valor de diluição em série são utilizados para quantificar a abundância relativa de epítopo de glicano para cada amostra. </li><li> As intensidades relativas local médias entre diferentes amostras são apresentados como um mapa de calor (Figura 4), ​​utilizando ferramentas de formatação condicional no excel ou online heatmapper ( <a href="http://bar.utoronto.ca/welcome.htm" target="_blank">http://bar.utoronto.ca/welcome.htm</a> ). Os dados para cada tipo de anticorpo é corrigida para 100 e um valor de corte de 5% é aplicada para remover o sinal de fundo e falsos positivos. </li></ol>

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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

CoMPP é um método rápido e sensível para perfilar a composição de glicano de centenas de plantas derivadas de amostras em uma questão de dias. Este método complementa os já disponíveis bacterianas ou de mamíferos plataformas de matriz de glicano para rastreio de alto rendimento de interacções de hidratos de carbono com glicano de proteínas de ligação, tais como lectinas, receptores e anticorpos 16. Com uma grande diversidade de testes disponíveis para a detecção de glicanos da parede celular, é possível obter...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> 3 milímetros de tungstênio contas Carbide </td><td> Qiagen </td><td> 69997 </td><td></td></tr><tr><td> Microtubos de coleta (1,2 mm) </td><td> Qiagen </td><td> 19560 </td><td> 1,5 ml tubos de microcentrífuga também pode ser usado </td></tr><tr><td> Qiagen TissueLyser II </td><td> Qiagen </td><td> 85300 </td><td></td></tr><tr><td> 3 milímetros pérolas de vidro </td><td> Sigma Aldrich </td><td> Z143928 </td><td></td></tr><tr><td> CDTA </td><td> Sigma Aldrich </td><td> 34588 </td><td></td></tr><tr><td> Óxido de cádmio </td><td> Sigma Aldrich </td><td> 202894 </td><td></td></tr><tr><td> 1,2-diaminoetano </td><td> Sigma Aldrich </td><td> 03550 </td><td></td></<html> tr&gt; <tr><td> Membrana de nitrocelulose (tamanho de poro 0,22 um) </td><td> GE Water &amp; Process Technologies- </td><td> EP2HY00010 </td><td> diferentes dos poros das membranas de tamanho são adequados para diferentes tipos de pinos </td></tr><tr><td> Xact II microarrayer robô </td><td> Labnext </td><td> 001A </td><td> o robot Xact II foi equipado com uma placa de 20 x 20 cm personalizado cerâmica à qual a membrana de nitrocelulose é anexado </td></tr><tr><td> Xtend pinos microarray RM </td><td> Labnext </td><td> 0037-350 </td><td> pinos devem ser adequados para detectar a membranas </td></tr><tr><td> 384 poços de microtitulação (polipropileno) </td><td> Greiner </td><td> 781207 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-glicano anticorpos monoclonais </td><td> Sondas de plantas / CarboSource / Biosupplies </td><td></td><td> Sites; PlantProbes ( <a href="http://www.plantprobes.net" target="_blank">www.plantprobes.net</a> ), Carbosource (ww.carbosource.net &quot;target =&quot; _blank &quot;&gt; www.carbosource.net) e Biosupplies ( <a href="http://www.biosupplies.com.au" target="_blank">www.biosupplies.com.au</a> ). </td></tr><tr><td> Anti-IgG de rato (molécula inteira) - Peroxidase anticorpo produzido em cabra. </td><td> Sigma </td><td> A9037 </td><td> o tipo de anticorpos secundários depende do anticorpo primário utilizado (por exemplo, criados em etc rato, de cabra, mouse). </td></tr><tr><td> SIGMA RÁPIDO 3,3 &#39;-diaminobenzidina-comprimidos </td><td> Sigma </td><td> D4293 </td><td> o tipo de desenvolvimento de reagente depende dos anticorpos secundários utilizados e o método de detecção (colourmetric ou chemiluminecent). </td></tr><tr><td> SuperSignal Substrato West Pico quimioluminescente </td><td> Thermoscientific </td><td> 34080 </td><td> veja acima </td></tr><tr><td> Xplore Software Processamento de Imagem </td><td> LabNext </td><td> 008 </td><td> tipos de software com muitas ferramentas automáticas gridagem estão disponíveispara medir o valor de pixel de pontos de microarrays. </td></tr><tr><td> Polissacarídeos de plantas </td><td> Sigma / Megazyme </td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

profiling glicana de polímeros da planta da parede celular usando microarrays

Glycan Profiling of Plant Cell Wall Polymers using Microarrays 

Paredes das células de planta são matrizes complexas de glicanos heterogéneos, que desempenham um papel importante na fisiologia e desenvolvimento de plantas e fornecer as matérias-primas para as sociedades humanas (por exemplo, as indústrias de madeira, papel, têxteis, e biocombustíveis) 1,2. No entanto, compreender a biossíntese e função destes componentes permanece um desafio. Glicanos de parede celular são quimicamente e conformacionalmente diversificada, devido à complexidade dos blocos de construção, os resíduos glicosilo. Estas ligações formam em posições múltiplas e diferem na estrutura do anel, a configuração isomérica ou anomérico, e, além disso, são substituídas por uma matriz de não-açúcar resíduos. Composição varia de glicano na célula diferente e / ou tipos de tecidos, ou mesmo sub-domínios de uma única célula de parede 3. Além disso, a sua composição é também modificado durante o desenvolvimento 1, ou em resposta a estímulos ambientais 4. Em excesso de 2.000 genes têm paredes celulares de plantas são matrizes complexas de glicanos heterogéneas foram previstos para ser envolvido na biossíntese de glicanos parede celular e modificação em 5 Arabidopsis. No entanto, relativamente poucos dos genes biossintéticos foram funcionalmente caracterizados 4,5. Genética reversa são difíceis porque os genes expressos diferencialmente são muitas vezes, muitas vezes em níveis baixos, entre os tipos de células 6. Além disso, estudos mutantes são muitas vezes dificultada pela redundância gene ou mecanismos compensatórios para garantir o funcionamento adequado parede celular é mantida 7. Assim, novas abordagens são necessárias para rapidamente caracterizar a diversidade de estruturas de glicano e facilitar abordagens genômica funcional para a compreensão a síntese da parede celular e modificação. Os anticorpos monoclonais (mAb) 8,9 surgiram como uma ferramenta importante para a determinação da estrutura de glicano e distribuição nas plantas. Estes reconhecem distepítopos INCT presentes dentro das principais classes de glicanos da parede celular vegetal, incluindo pectinas, xiloglucanos, xilanos, mananos, glucanos e Arabinogalactanos. Recentemente o seu uso tem sido estendido para experiências em grande escala de triagem para determinar a abundância relativa de glicanos em uma ampla gama de tipos de tecido da planta e, simultaneamente, 9,10,11. Apresentamos aqui um microarray-based método de rastreio de glicano chamado Comprehensive Polymer Microarray Profiling (CoMPP) (Figuras 1 &amp; 2) 10,11, que permite múltiplas amostras (100 s) a ser rastreada utilizando uma plataforma de microarray miniaturizado com o reagente reduzida e os volumes de amostra. Os sinais no local de microarray pode ser formalmente quantificadas para dar semi-quantitativas de dados sobre a ocorrência de glicano epítopo. Esta abordagem é bem adequado para o rastreamento de alterações glicano em sistemas biológicos complexos 12 e proporcionando uma visão global da composição da parede celular particularmente quando o conhecimento préviof este não está disponível.

A abundância relativa de glicanos em seis tipos de tecidos (filamentos das anteras, pólen, ovários, pétalas, sépalas e estigma) de flores Nicotiana alata foi determinada utilizando CoMPP. A Figura 3A mostra um microarray representativa que foi sondado com mAb específico para JIM5 parcialmente (baixo) homogalaturonano methylesterified (HG), um epitopo que ocorre em polissacarídeos pécticos 14. O epitopo JIM5 é detectada em extractos de CDTA de todos os tecidos florais no entanto é mais alta e mais bai...

Uma técnica chamada<strong&gt; C</strong&gt; Omprehensive<strong&gt; M</strong&gt; Icroarray<strong&gt; P</strong&gt; Profiling olymer (CoMPP) para a caracterização de glicanos da parede celular vegetal é descrito. Este método combina a especificidade dos anticorpos monoclonais dirigidos para epitopos definidos glicano-com uma plataforma de microarray em miniatura analítico permitindo rastreio de ocorrência de glicano em uma ampla variedade de contextos biológicos.

Profiling glicana de Polímeros da planta da parede celular usando Microarrays

As paredes celulares vegetais são matrizes complexas de glicanos heterogêneos que desempenham um papel importante na fisiologia e no desenvolvimento das plantas e proporcionam a...

O objetivo geral deste procedimento é comparar a composição de polímeros da parede celular em uma ampla variedade de plantas ou tipos de tecidos utilizando microarranjos de glicanos. Primeiro, colete os tecidos vegetais de interesse. Após a homogeneização, prepare os resíduos insolúveis em álcool.Em seguida, extraia sequencialmente os glicanos da parede celular usando CDTA e hidróxido de sódio. Depois imprima os extratos de glicanos da parede celular em um microarranjo utilizando um robô. Processe os microarranjos com anticorpos monoclonais direcionados aos glicanos da parede celular e quantifique os sinais dos pontos nos microarranjos.No final, os resultados podem ser utilizados para determinar a abundância relativa de epítopos de glicanos em um conjunto de amostras de interesse. Desenvolvemos este método de microarranjo quando reconhecemos a necessidade de obter uma visão global da ocorrência de glicanos da parede celular em diversos tipos de tecidos vegetais simultaneamente e detectar diferenças composicionais. Assim, a principal vantagem desta técnica em relação aos métodos tradicionais, como a análise de monossacarídeos, é que se trata de uma plataforma baseada em microarranjo na qual centenas de amostras podem ser analisadas simultaneamente. Este é um método rápido e abrangente para o perfilamento da composição da parede celular. Para cada tecido de interesse, inicie com amostras em triplicata de 100 miligramas de peso fresco dos tecidos vegetais, utilizando nitrogênio líquido.Homogeneíze as amostras até obter um pó fino, depois transfira o homogenato para tubos cónicos plásticos de 10 mililitros para preparar o material da parede celular. Ressuspenda o homogenato em 10 mililitros de etanol a 80% à temperatura ambiente e vortexe vigorosamente durante dois minutos. Centrifugue as amostras a 3.500 × g e descarte o sobrenadante.Repita as lavagens com etanol 70% pelo menos três vezes ou até que o sobrenadante fique claro. Em seguida, realize uma lavagem final com acetona 100%. Colete os resíduos insolúveis em álcool e seque ao ar durante a noite para obter um pó fino e homogêneo. Peneire as amostras de resíduo insolúvel em álcool com uma malha de 0,4 milímetros quadrados.Em seguida, pese 10 miligramas das amostras de resíduo insolúvel em álcool em tubos microcentrífugos que contenham uma esfera de vidro de três milímetros para homogeneização. Para a extração de pectinas e polímeros associados às pectinas, adicione 500 microlitros de CDTA 50 milimolar a cada amostra, vortexe brevemente os tubos e, em seguida, homogeneíze-os utilizando o tissue izer durante três horas a oito hertz. Centrifugue as amostras a 12.000 × g.Remova cuidadosamente os sobrenadantes e armazene a quatro graus Celsius. Lave os pellets duas vezes com um mililitro de água deionizada. Remova todo o líquido dos tubos do pellet restante de parede celular.Prossiga com a extração de glicanas de ligação cruzada usando 500 microlitros de hidróxido de sódio quatro molar com 0,1% de hidreto de sódio. Utilizando o processo de extração descrito anteriormente, armazene os sobrenadantes contendo glicanas de ligação cruzada a quatro graus Celsius. Lave os pelétulos duas vezes com água desionizada.Em seguida, utilizando 500 microlitros de Cain. Extraia polímeros residuais, como celulose, por centrifugação, e recolha os sobrenadantes contendo os polímeros da parede celular extraídos para remover qualquer material particulado. Em seguida, carregue 50 microlitros de cada amostra em uma placa de microtitulação de 384 poços em polipropileno, usando um layout personalizado previamente projetado no qual as amostras são organizadas de acordo com o tipo de tecido e o tipo de extração.Em seguida, dilua as amostras de polímeros da parede celular com água desionizada para preparar diluições seriadas de cinco e 25 vezes. Defina parâmetros como altura do pino, coleta e tempo de permanência e etapas de lavagem para o microarranjo. Controle a umidade da câmara de impressão em 60% para prevenir a evaporação da amostra.Agora inicie a impressão. O robô utiliza pinos de canal capilar para imprimir soluções da placa de amostra sobre uma membrana de celulose nitrosa fixada a uma placa plana na máquina. Cada ponto na matriz contém 15 nanolitros de solução e é impresso em triplicata.Imprima microarranjos idênticos lado a lado na membrana e corte-os em arranjos individuais. Para reduzir a ligação não específica, bloquee cada microarranjo em solução de 5% de leite em pó desnatado, por duas horas, à temperatura ambiente.Adicione os anticorpos monoclonais específicos para glicanos da parede celular, epítopos, e incube por duas horas. Agora, para remover a ligação inespecífica, lave as micromatrizes três vezes em PBS por cinco minutos. Em seguida, sonda as micromatrizes com anticorpo secundário conjugado à peroxidase de rábano silvestre por duas horas após três lavagens em PBS de cinco minutos.Desenvolva as micromatrizes utilizando substratos cromogênicos ou quimioluminescentes. Digitalize as micromatrizes individuais usando um scanner de mesa de alta resolução. Salve as imagens como arquivos TIFF negativos de 16 bits.Calcule a intensidade integral de cada ponto utilizando um software de processamento de imagens equipado com uma ferramenta de grade automatizada. Em seguida, exporte os dados da grade de cada micromatriz como um arquivo de texto. Importe manualmente o arquivo de dados para uma planilha do Excel para análise.Calcule a média da intensidade integral do ponto entre as réplicas de impressão e diluições para obter um valor de intensidade média do ponto para cada amostra. Represente graficamente as intensidades médias relativas entre diferentes amostras como um mapa térmico utilizando formatação condicional no Excel ou um gerador de mapas térmicos online. Ferramentas para remover o sinal de fundo e falsos positivos para cada tipo de anticorpo, corrigir os dados para 100 e aplicar um valor de corte de 5%.Utilizou-se a análise abrangente por microarranjo de polímeros para medir a abundância relativa de glicanos em seis tipos de tecidos: filamentos estaminais, grãos de pólen, ovários, pétalas, estiletes e estigmas de nicotiana. Em grande parte das flores analisadas, o microarranjo foi sondado com o anticorpo monoclonal JIM cinco, específico para um epítopo em polissacarídeos pécticos. Observe que o epítopo JIM cinco é detectado em extratos CDTA de todos os tecidos florais.No entanto, é mais alta no pólen e mais baixa no tecido estigmático. Curiosamente, o epítopo JIM cinco também é detectado nos extratos de hidróxido de sódio do pólen, mas não nos de outros tecidos. Informações quantitativas são obtidas pela geração de curvas padrão dos diferentes polissacarídeos purificados que foram processados como padrões internos na microplaca em tecido de ovário.Presente em cada amostra, aproximadamente 157 microgramas de hoog contendo o epítopo JIM cinco correspondiam a cerca de 1,5% dos resíduos totais da parede celular, enquanto 625 microgramas de hoog Ronin contendo o epítopo JIM cinco estavam presentes no tecido do pólen, correspondendo a aproximadamente 6,25% do resíduo total da parede celular. A abundância relativa de 15 epítopos de glicanos em todos os tipos de tecidos é resumida em um mapa de calor. A intensidade das barras de cor é proporcional à intensidade média ajustada do sinal para cada amostra.Uma representação pictórica desses dados permite uma interpretação rápida das diferenças na ocorrência de epítopos de glicanos entre os diferentes tecidos florais. Esses resultados indicam que epítopos de glicanos individuais estão distribuídos de maneira única entre diversos tipos de flores. Por exemplo, o epítopo LM 13 é mais abundante nos filamentos anteriores e nos tecidos SE L em comparação com outros tecidos. Esse padrão é fortemente contrastante com o dos epítopos de cadeia mais curta, preferencialmente detectados pelo MAB LM seis. Glicanos de ligação cruzada também apresentam padrões distintos de ocorrência em diversos tipos de flores. Por exemplo, o epítopo LM 10 é abundante no tecido do estigma em comparação com outros tecidos, mas está ausente no tecido do ovário.Os epitopos de glicanos LM 15 xog são mais altos em pétalas e filamentos de antera em comparação com outros tecidos, enquanto os heteromananos são mais abundantes nos filamentos de antera. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como extrair e determinar a abundância relativa de glicanos da parede celular em uma ampla gama de plantas e tipos de tecidos. Usando microarranjos, uma vez dominada a técnica, ela pode ser concluída em três dias.É importante lembrar de tratar as amostras e réplicas de maneira consistente em cada etapa após este procedimento. Outros métodos, como ensaios com ácido acético-nítrico, podem ser realizados para investigar questões adicionais. Por exemplo, qual é o teor absoluto de celulose remanescente após a extração sequencial de pectinas e hemiceluloses usando CDTA e hidróxido de sódio?Esta técnica possui ampla aplicabilidade na área da biologia celular vegetal para comparar rapidamente a ocorrência de glicanos em plantas modelo, como Arabidopsis e Fisca, Nutella, bem como em outras, como algodão, trigo, eucalipto e tabaco.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Biomassa vegetal é um recurso de carbono neutro principais renováveis, que poderiam ser usados ​​para a produção de biocombustíveis. Biomassa vegetal consiste principalmente das paredes das células, um material estruturalmente complexo composto chamado lignocelulose. Aqui nós descrevemos um protocolo para uma análise abrangente do conteúdo e composição dos carboidratos da parede derivadas.

Análise da composição completa de paredes celulares das plantas (biomassa lignocelulósica) Parte II: Os hidratos de carbono

Uma maneira rápida é descrito para obter insights sobre a estrutura de polissacarídeos em uma matriz extracelular. O método aproveita a especificidade do glycosylhydrolases ea sensibilidade da espectrometria de massa permitindo que pequenas quantidades de materiais a serem analisados. Esta técnica é adaptável para ser usada diretamente sobre o tecido em si.

Oligo Profiling Massa (OLIMP) de polissacarídeos extracelulares

A celulose cristalina é um constituinte importante da parede celular da planta. No entanto, sua quantificação em uma resolução celular é tecnicamente desafiadora.  Aqui, relatamos o uso de tecnologia de luz polarizada e seções de choque radicular para obter informações da composição da parede celular em uma resolução espaço-temporal.

Quantificação de alta resolução Celulose cristalina Acumulação em<em&gt; Arabidopsis</em&gt; Raízes para monitorar celular específico do tecido da parede Modificações

Este protocolo descreve as técnicas específicas usadas para a caracterização estrutural da(s) sequência(s) glicosila(s) final(is) e da região interna redutora(s) de heteroxilanas, marcando o ER com 2 aminobenzamida antes da hidrólise enzimática (endoxilanase) e, em seguida, análise dos oligossacarídeos resultantes usando espectrometria de massa (MS) e ressonância magnética nuclear (RMN).

Sequenciamento de parede planta heteroxilanos Usando enzimática, química (metilação) e físico (espectrometria de massa, ressonância magnética nuclear) Técnicas

Um protocolo para a análise estrutural de polissacarídeos por eletroforese em gel (PACE), usando Medeiros como um exemplo, é descrito.

Caracterização estrutural de polissacarídeos de parede celular Medeiros em plantas usando a ritmo

Nós descrevemos um método simples e rápido para a preparação e análise de N- os glicanos de diferentes cultivares de rabanete (Raphanus sativus).

Análise dos N- glicanos de Raphanus sativus cultivares usando PNGase H+

Um protocolo para a preparação de 13C,15amostras de fungos e plantas N-etiquetados para investigações de polarização nuclear dinâmica (DNP) e espectroscopia NMR Solid-State multidimensional é apresentado.

Preparação de fungos e materiais vegetais para a elucidação estrutural usando polarização Nuclear dinâmica NMR Solid-State

Este protocolo descreve em detalhes como o material vegetal para imunolocalização de proteínas e pectinas arabinogalactanas é fixado, embutido em uma resina acrílica hidrofílica, seccionada e montada em lâminas de vidro. Mostramos que epítopos relacionados à parede celular serão detectados com anticorpos específicos.

Imunolocalização fluorescente de proteínas árabes e pectinas na parede celular de tecidos vegetais

Microarray polymer profiling (MAPP) é uma técnica de alto rendimento para análise composicional de glicanos em amostras biológicas.

Perfil de polímero de microarray (MAPP) para análise de glicanos de alto rendimento

Análise de Expressão Gênica Utilizando bacteriana Microarrays

Aprenda a técnica CoMPP para perfilar glicanos da parede celular em plantas usando microarrays e anticorpos monoclonais. Este método permite analisar centenas de amostras simultaneamente e quantificar a abundância relativa de epítopos glicânicos em diferentes tecidos.

Profiling glicana de Polímeros da planta da parede celular usando Microarrays

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