Name: Em Expression in ovo de microRNA em Ventral Pintinho Midbrain (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-16T07:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 19 s
Description: Aprenda a técnica de eletroporação in ovo para expressão de microRNA em regiões específicas do mesencéfalo ventral de embriões de galinha. Este método permite estudar o desenvolvimento cerebral com precisão.

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Reconhecemos K. Mikic, que contribuiu para a fase inicial deste filme e M. Nicolescu para a imagem miR. C. Huber foi apoiado por uma bolsa da IZKF do Universtitätsklinikum Tübingen, A. Alwin Prem Anand pelo programa fortuna do Universtitätsklinikum Tübingen.

1. Requisitos para in ovo Eletroporação <ol><li> Preparação da construção de vector: miR sentido e anti-sentido foram concebidos iniciadores após as instruções de Ambion, recozidos e ligados em Apal / EcoRI digerido pSilencer U6.1 vector. Após a transformação bem sucedida de um dos clones resultantes foram cultivadas e pSilencer plasmídeo foi isolado pelo método de lise alcalina, utilizando um kit de preparação Qiagen Midi. </li><li> Eletrodos: Eletrodos podem ser comprados ou facilmente ser construído 13. Nós usamos eletrodos self-made de fio de platina (Φ = 0,2, 0,25, ou 0,5 mm de diâmetro) ou, em alguns casos, um eletrodo de fio de tungstênio ainda menor (Φ = 0,1 mm) 8 dependendo de qual área que queremos electroporate. Para evitar escaldante de tecido, usamos como regra o mais próximo do tecido mais fino os eletrodos. Por ampla eletroporação de mesencéfalo, usamos 0,5 milímetros fios de platina soldadas a um tubular de bronze / aço inoxidáveleixo e fixados a um suporte de eléctrodo, com uma distância de 3-5 mm (Figura 1). Para electroporate áreas específicas, usamos 0,25 milímetros ânodos de platina e 0,2 milímetros de fio de platina ou de 0,1 milímetros para o cátodo de tungsténio, com uma distância de aproximadamente 1 mm ou menos. </li><li> Soluções: Alguma as seguintes soluções de pronto: <ol><li> Campainha frango autoclavado, pH 7,5 (9,0 g de NaCl, 0,42 g de KCl, 0,24 g de CaCl2, dissolve-se em 1 L de água destilada). </li><li> PBS (8 g de NaCl, 0,2 g de KCl, 0,24 g de KH 2 PO 4, 1,44 g de Na 2 HPO 4, dissolve-se em 1 litro de H2O destilada). </li><li> Verde Rápido: solução de estoque de 10 mg / ml de H2O destilada </li><li> Tinta de secagem lenta (menos de goma-laca e, portanto, menos envenenamento por embrião). Nota: Um filtro dicróico azul ligado a uma lâmpada de fibra óptica, tal como descrito no Canto-Soler e Adler 14 melhora o contraste e pode eliminar a necessidade de injectar tinta. </li></ol></li></ol><img src="/files/ftp_upload/50024/50024fig1.jpg" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50024/50024fig1highres.jpg"/> Figura 1. Diagrama esquemático de eletrodos e suporte do eletrodo. (A, B, C) ​​de fio de platina foi soldada a um lado de um eixo tubular em aço inoxidável. Um furo foi perfurado no outro lado do eixo tubular, assim, que as tomadas de pinos pode caber dentro (A) vermelho e azul fios coloridos foram ligados às tomadas de pinos. No extremo oposto do fio foi montado para conectores bananas que trabalham com as tomadas elétricas do electroporador. (A, C) O fio de platina foi dobrado em um anjo de 90 °. Uma camada de verniz de unhas isolado no eixo acima da curva. 2. Preparativos Diretamente antes em ovo Eletroporação <ol><li> Prepare o seguinte material: <ol><li> Diluir tinta com frango Ringer 1:6, adicionar solução antibiótica-antimicótica (100x de GIBCo) 1:100. </li><li> Preparar a solução de vector: 1-2 mg / mL por ADN específica em H2O suplementada com Verde Rápido (1:20). </li><li> Esterilizar fórceps, tesoura, agulha de tungstênio e eletrodos com etanol 70%. </li><li> Puxe micropipetas para injeção de ácido nucleico de capilares de vidro de borosilicato (comprimento e diâmetro externo: 100 mm x 0.9 mm). Usamos um puxador simples PUL-1 (WPI, Berlin) com as configurações mostradas na Tabela 1. </li><li> Definir os parâmetros do electroporador como mostrado na Tabela 2. </li></ol></li></ol><table border="1" ><tbody><tr><td fo:width="1in"> Parâmetros </td><td fo:width="1in"> Valores </td></tr><tr><td> Calor </td><td> 350 </td></tr><tr><td> Puxe </td><td> 100 </td></tr><tr><td> Velocidade </td&gt; <td> 50 </td></tr><tr><td> Atraso </td><td> 200 </td></tr></tbody></table> Tabela 1. Configurações para PUL-1 <table border="1"><tbody><tr><td fo:width="1.5in"> Parâmetros </td><td fo:width="1.5in"> Valores </td></tr><tr><td> Freqüência </td><td> 50 Hz. </td></tr><tr><td> Atraso </td><td> 20 - 50 ms * </td></tr><tr><td> Largura </td><td> 20 mseg </td></tr><tr><td> Tensão </td><td> 8-25 V * </td></tr><tr><td> Pulso </td><td> 3 - 5 vezes </td></tr><tr><td colspan="2"> * Dependendo do diâmetro do eletrodo e distância. Por favorlevar isso em conta quando se muda um dos parâmetros. </td></tr></tbody></table> Tabela 2. Configurações para o estimulador de pulso <ol start="2"><li> Prepare embriões de galinha para eletroporação: <ol><li> Incubar ovos de galinha fertilizados em seu lado mais longo, a 37 ° C com 65% de umidade por 39 horas para adquirir embriões entre Hamburger &amp; Hamilton (HH) encena 15 9-11. O embrião se instala na parte superior do ovo, por isso você deve marcá-lo com uma linha de lápis. </li><li> Desinfetar os ovos com etanol 70%. </li><li> Perfurar o ovo no seu lado mais largo, onde a cavidade de ar deve ser. </li><li> Remover 1-2 ml de clara de ovo. Isto irá separar o embrião da casca de ovo. </li><li> Cello-tape a casca do ovo para evitar lascas de casca caindo sobre o embrião. Utilizar um par de tesouras para cortar uma pequena janela para a casca de ovo em torno da linha de lápis. </li><li> Injetar um pouco de tintadebaixo da área opaca para visualizar o embrião. </li><li> Faça um corte na membrana vitelina com uma agulha de tungstênio afiadas para alcançar uma melhor acessibilidade do embrião para a injeção de ácido nucleico e eletroporação. </li></ol></li></ol> 3. Eletroporação e Incubação <ol><li> Adicionam-se algumas gotas de solução de Ringer quente sobre os embriões. Isto irá reduzir os embriões, evitar o sobreaquecimento, a aderência dos eléctrodos ao tecido e proporcionar um meio para a corrente entre os dois eléctrodos. </li><li> Injectar a solução vetor dentro do lúmen do tubo neural em nível mesencéfalo. Se a expressão de DNA vector não contém qualquer gene repórter (por exemplo EGFP), adicionar um vector do gene repórter ligeiramente concentrada inferior (1 ug / ul miR vector de expressão para 0,9 ug / uL vector de gene repórter) para a solução de ADN. Isso irá garantir que você reconhece as células transfectadas depois 8. Nós usamos o chamado vetor pCAX, um presente amável from C. Krull 13. </li><li> Para uma ampla transfecção do mesencéfalo, coloque os eletrodos esquerdo e direito do embrião à altura do mesencéfalo. A distância entre os eletrodos deve ser cerca de 3-5 mm. As outras configurações são 15V, 20 pulsos ms e 50 ms de atraso para HH 10. A alteração da posição dos dois eléctrodos ligeiramente ao longo da (DV) do eixo dorso-ventral do mesencéfalo assegura um mais amplo a transfecção de células a transfecção eixo DV. </li><li> Para transfecção ventral, adicione um pouco de Ringer para elevar a cabeça a partir da membrana da gema e coloque o ânodo sob mesencéfalo ventral. Se a cabeça não subir empurre o eletrodo sob a membrana que separa a gema e embrião para evitar escaldante do tubo neural. O cátodo deve ser colocado por cima do mesencéfalo dorso-lateral oposto ao ânodo. Não toque no tubo neural. Nós transfecção a metade ventral esquerdo do mesencéfalo para evitar problemas com o desenvolvimento do coração. A distância entre os eléctrodosé de cerca de 1-0,5 mm, o resto das configurações são 10V, 20 de largura e 50 milissegundos de atraso ms. </li><li> Aplique uma gota de solução salina em cima dos embriões para esfriá-la e retirar as bolhas de ar. </li><li> Selar os ovos com a fita e incubar durante pelo menos 4 horas, o tempo mínimo necessário para a expressão do vetor. </li></ol> 4. Fixação de frango Embriões <ol><li> Remover os embriões dos seus ovos. </li><li> Embriões limpa sob um microscópio estereoscópico e avaliar a extensão da transfecção com um microscópio estéreo fluorescente. </li><li> Corrigir os embriões durante a noite em PFA 4% a 4 ° C. Prossiga com o corte e / ou coloração (hibridização in situ, imuno-histoquímica) para analisar as mudanças na área transfectadas. </li></ol>

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<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo.+1951%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951.</a> Dev Dyn. 195, 231-272 (1992).</li>
<li>Muramatsu, T., Nakamura, A., Park, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+electroporation%3A+a+powerful+and+convenient+means+of+nonviral+gene+transfer+to+tissues+of+living+animals+%28Review%29%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">In vivo electroporation: a powerful and convenient means of nonviral gene transfer to tissues of living animals (Review).</a> Int J Mol Med. 1, 55-62 (1998).</li>
<li>Agoston, Z., Li, N., Haslinger, A., Wizenmann, A., Schulte, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+physical+interaction+of+Meis2%2C+Pax3+and+Pax7+during+dorsal+midbrain+development%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic and physical interaction of Meis2, Pax3 and Pax7 during dorsal midbrain development.</a> BMC Dev Biol. 12, 10(2012).</li>
<li>De Pietri Tonelli, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+detection+of+microRNAs+in+developing+vertebrate+embryos+after+acute+administration+of+a+dual-fluorescence+reporter%2Fsensor+plasmid%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Single-cell detection of microRNAs in developing vertebrate embryos after acute administration of a dual-fluorescence reporter/sensor plasmid.</a> Biotechniques. 41, 727-732 (2006).</li>
</ol>

Não temos nada a divulgar.

Este vídeo demonstra um método eficaz para transfectar plasmídeo nas células neuroepiteliais de áreas específicas do cérebro médio do pintainho. Pulsos elétricos retangulares de baixa tensão pode introduzir DNA em células do tubo neural garota em ovo 6,16. No entanto, a precisão da segmentação DNA é muitas vezes dificultada pela grande campo elétrico, que sobe através das relativamente grandes eletrodos (Φ = 0,5 mm). Nós tentamos resolver esse problema usando eletrodos menores em diâmetro seguindo as...

O reconhecimento de pequenos RNAs não-codificantes como jogadores adicionais para a expressão do gene de lançar uma nova complexidade à regulamentação de programação / gene do genoma. Diferentes espécies de RNAs não-codificantes tem importância funcional em células neurais, incluindo pequeno RNAs não-codificantes 1-4. MicroRNAs (MIR ou miRNA), por exemplo, mostram perfis de expressão distintas e mutáveis ​​em cérebros em desenvolvimento 5. Alvejado em eletroporação in ovo de embriões de galinha oferece uma oportunidade única para o controle temporal e espacial da expressão gênica e silenciamento durante o desenvolvimento. Este vídeo demonstra as diferentes etapas da realização de expressão ectópica da RIM em áreas específicas do mesencéfalo garota usando eletroporação in ovo 6-10. Para assegurar um efeito de longa duração destes pequenos RNAs não-codificantes nas células, a sequência de ADN de RIM, foram clonados em vectores de mono-ou bi-cistronic. Pois em eletroporação in ovo, miR contendo vector é injectado no tubo neural mesencéfalo expondo o embrião depois de fazer uma pequena janela na casca do ovo. Para transfectar as áreas específicas do cérebro médio mais pequeno (ânodo) e negativo (cátodo) eléctrodos de platina são colocados em posições específicas. Para a transfecção do mesencéfalo ventral, o ânodo é colocado por baixo do mesencéfalo ventral esquerdo e o cátodo acima da metade direita do cérebro médio, antes de aplicar uma corrente. A abertura na casca do ovo é fechado com fita adesiva e os embriões foram incubados durante o tempo necessário para qualquer análise. Este método foi originalmente descrito por Muramatsu et al. 6 e melhorado por Momose et al. 8 para transfecção área específica. <img src="/files/ftp_upload/50024/50024schematic1.jpg" fo:content-width-="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50024/50024schematic1highres.jpg"/> Visão esquemática. <ol><li> O embrião no ovo é exposta pelo corte de uma pequena janela em the casca de ovo. </li><li> O vector dissolvido (s) é injectado no mesencéfalo usando um tubo capilar de micro. </li><li> Dois eletrodos colocados - paralelo ou por baixo e por cima do embrião - gerar um campo elétrico pulsado. </li><li> O campo eléctrico temporalmente cria poros na membrana da célula, que facilitam a entrada na célula de ADN carregadas negativamente (ou RNA) atraídos para o ânodo 11,12. </li></ol>

<table><tbody><tr><td>Capilares de vidro borosílico </td><td>Hartenstein</td><td></td><td>Modelo: 0,9 mm</td></tr><tr><td>Extrator microcapilar</td><td>WPI, Berlim</td><td></td><td>Modelo: Pul1-E</td></tr><tr><td>Electroporator</td><td>Intracel</td><td></td><td>Modelo: TSSIC</td></tr><tr><td>Estereomicroscópio - fluorescência </td><td>LEICA</td><td></td><td>Modelo: Estereomicroscópio MZFLIII</td></tr><tr><td></td><td>Zeiss</td><td></td><td>Modelo: Stemi</td></tr><tr><td>Câmera e software</td><td>Zeiss</td><td></td><td>Modelo: Axiocam MRc/ Axiovision Re. 4.8</td></tr></tbody></table>

em expression in ovo de microrna em ventral pintinho midbrain

In ovo Expression of MicroRNA in Ventral Chick Midbrain

RNAs não-codificantes são jogadores adicionais na regulação da expressão gênica. Alvejado em eletroporação in ovo de áreas específicas fornece uma ferramenta única para o controle espacial e temporal da expressão do microRNA ectópica. No entanto, as estruturas cerebrais ventral como mesencéfalo ventral são bastante difíceis de alcançar por quaisquer manipulações. Aqui, nós demonstramos uma forma eficiente de electroporate miRNA em mesencéfalo ventral utilizando eletrodos de platina finas. Este método oferece uma maneira confiável de transfecção de áreas específicas do cérebro médio e uma ferramenta útil para estudos in vivo.

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