Name: Todo o Monte RNA Fluorescente In situ A hibridação de Drosophila Embriões (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 57 s
Description: Aprenda hibridização in situ fluorescente em embriões de Drosophila melanogaster para visualizar a expressão e localização de RNA durante a embriogênese. Este método otimizado permite análises detalhadas de padrões de expressão gênica.

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Trabalho realizado no laboratório Lecuyer é suportado por financiamento do Conselho Nacional e Ciências da Engenharia do Canadá (NSERC), o Canadian Institutes of Health Research (CIHR) e do Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ). Fabio Alexis Lefebvre e Gaël Moquin-Beaudry são suportados por NSERC bolseiros de iniciação científica, enquanto Carole Iampietro é suportado pela irmandade Pizzagalli Angelo pós-doutorado.

1. Preparação da sonda de ARN Resumo: A seção seguinte descreve os passos necessários para fazer sondas digoxigenina (Dig)-rotulados de RNA suficiente para os peixes. O primeiro passo envolve a clonagem ou PCR amplificar uma sequência correspondente à região transcrita de um gene de interesse que irá ser utilizado para gerar uma sonda específica da sequência. Isto pode ser conseguido por clonagem do primeiro segmento de gene em um plasmídeo no qual o sítio de clonagem múltipla é flanqueado por elementos do promotor de bacteriófago (T7, T3 ou SP6), que pode então servir como um modelo para PCR, utilizando iniciadores que flanqueiam que incorporam as sequências de promotor , gerando um produto de PCR linear com as sequências promotoras diferentes, em cada extremidade (Figura 1A). Alternativamente, a fim de evitar o passo de clonagem, pode-se também realizar a amplificação por PCR a partir de DNA genómico ou de ADNc, utilizando oligonucleótidos que incluem T7, T3 ou SP6 nas suas sequências 5 &#39;extremidades (por exemplo T7:5&#39;-TAATACGACTCACTATAGGGAGA-3 &#39;; T3: 5&#39;-AATTAACCCTCACTAAAGGGAGA-3&#39;; Sp6: 5&#39;-ATTTAGGTGACACTATAGAAGAG-3 &#39;). Os produtos de PCR lineares são então utilizados como modelos para fazer sentido Dig-rotulado ou sondas de RNA anti-sentido, através do escoamento de transcrição in vitro com a polimerase apropriada (Figura 1B). Ao fazer sondas para genes específicos, recomendamos a preparação tanto sentido e as sondas de RNA anti-sentido utilizando polimerase distintas, que serão úteis para avaliar a especificidade FISH sinal (isto é, a menos que o gene de interesse é transcrito na orientação anti-sentido, o sentido de RNA sonda irá revelar o nível de sinal de fundo). Em todas as etapas a seguir, deve-se tomar muito cuidado para evitar a degradação potencial por ribonucleases contaminantes (ARNases) pela primeira limpeza de todas as áreas de banco e equipamentos com etanol 70% ou soluções de descontaminação comerciais RNase e usando RNase suprimentos (água, por exemplo, dicas, tubos de microcentrífuga). Mamãeriais <ul><li> 1,5 ml tubos de microcentrífuga, (ABgene, Rochester, NY, EUA Cat. No 0900) </li><li> Gel de extração de kits (QIAGEN, Mississauga, ON, Canadá;. Cat. 28706). </li><li> RNAse água (Wisent, Cat Inc. º. 809-115-CL) </li><li> Polimerases de ARN (T7, T3, ou SP6). (20 U / ul, Fermentas Biosciences cat.. No. EP0101, EP0111, EP0131). </li><li> RNAse-OUT inibidores de ribonucleases (40 U / ul), (Invitrogen, Burlington ON. Canada.Cat. No. 10777-019). </li><li> Digoxigenina (DIG) misturas de nucleotídeos (DIG-11-UTP, Roche Applied Biosciences, Laval, Quebec, Canadá. Gato. No.11209256910). </li></ul> Equipamento <ul><li> Tampo micro centrífuga- </li><li> Electroforese em gel aparelho </li></ul><ol><li> PCR amplificar gene específico da sequência de DNA genómico, cDNA, ou DNA de plasmídeo para gerar um produto de PCR linear flanqueado pelo bacteriófago T7, T3 ou sequências de promotor SP6. Seguir as recomendações do fabricante para as condições de PCR. </li><li> Verificar a qualidade ea size do produto de PCR por electroforese em gel de agarose. Especial e do produto de PCR purificar utilizando um kit de extracção de gel-padrão de acordo com a fabrica recomendações e eluir o produto em 50 ul de tampão. </li><li> Precipitar o produto de PCR por adição de 5 jul de acetato de sódio 3M (pH 5,2) e 150 ul de etanol a 100% arrefecido em gelo, e coloque os tubos a -70 ° C durante a noite. Centrifugar os tubos a 13.000 xg durante 10 min a 4 ° C e lava-se o sedimento com etanol a 70%. Girar novamente, remover todos os vestígios de etanol e secar o sedimento. Ressuspender em 25-50 ul de ARNase isento de água. </li><li> Transcrever Dig-sonda marcada com 200-500 ng produto de PCR purificado numa reacção de 20 uL da seguinte forma: 2 ul de tampão 10X de transcrição de T7 (Invitrogen), 1 ul (20 U / ul) de inibidor de RNAse, 2 ul de mistura de Dig-NTP e 2 ul de ARN-polimerase de T7 (20 U / ul). Trazer o volume final de 20 ul com água livre de RNAse. Incubar a reacção de transcrição a 37 ° C durante 3-4 horas. </li><li> Ajuste transcription mistura a 50 ul com água livre de RNAse e precipitar o Dig-rotulado sonda de ARN, tal como descrito no Passo 4. Ressuspender o pellet lavado RNA em 100 ul de RNAse-livre de água. Armazenar as amostras ressuspensas a -70 ° C. </li><li> Quantificar a sonda usando um espectrofotômetro NanoDrop. Para verificar a qualidade da sonda, executar uma amostra 1-2 ul em 1-2 manchado gel de agarose% com brometo de etídio. </li></ol> 2. Recolha e fixação de embriões de Drosophila Resumo: Esta seção descreve as etapas para colheita e processamento encenado embrião de Drosophila. Dependendo do número de embriões necessários, as moscas podem ser mantidos em gaiolas de população de vários tamanhos. Os passos seguintes são para coleções realizada utilizando 900 centímetros 3 gaiolas cilíndricas usando 100 milímetros maçã placas de coleta de suco. Fixação adequada requer a remoção de duas camadas de protecção em torno do embrião: o cório exterior e o interior vitelinae membrana 13. Uma vez colhido, os embriões são primeiro banhado com uma solução de lixívia a 50% para remover o cório, em seguida, são misturados com uma solução bifásica contendo heptano (permeabilizes a membrana vitelina), e PBS contendo formaldeído a 3,7%. A membrana vitelina é então quebrado e removido através da transferência dos embriões em uma mistura bifásica de heptano e metanol. Fixação embrião propriamente dito e a remoção da membrana vitelina é crítico para o sucesso do procedimento FISH jusante. Materiais <ul><li> Sumo de maçã placas de agar (40% de sumo de maçã, de 4% de sacarose, 3,5% de ágar, 0,3% de metil-parabeno) com dime-sized pasta de levedura (levedura de padeiro misturado com água até uma consistência de manteiga) </li><li> Paraformaldeído em pó (Ciências da microscopia eletrônica, Hatfield, PA, EUA,. Cat n ​​º 19.208) </li><li> Heptano </li><li> Metanol </li><li> Solução Bleach 3% </li><li> 20 ml de vidro de cintilação frascos (Thermo Fisher Scientific, Ottawa, ON, Canadá;. Cat No. 03-337-15). </li></ul> Equipamento <ul><li> Gaiolas população </li><li> Cestos de recolha (feito usando uma malha Nitex e a parte de cima de um corte de tubos de polipropileno de 50 ml, em que um furo tenha sido cortada na tampa). </li><li> Pincel pequeno </li><li> Vórtice de mesa </li></ul><ol><li> Pré-claras bem alimentados gaiolas população com uma maçã fresca placa suco / levedura durante 1 hora a 25 ° C. </li><li> Adicionar um novo prato de maçã suco / levedura para a gaiola para a colheita de embriões em fase inicial. Incubar a gaiola durante 4 hr a 25 ° C (note que os tempos de recolha pode ser ajustado dependendo das fases desejadas). </li><li> Prepara-se uma solução de formaldeído a 37% fresco, combinando 3,7 g de paraformaldeído em pó, 70 ul de KOH 2N e 7,3 ml de milliQ água num frasco de cintilação de vidro sob uma coifa química. Ferve-se a solução até que o paraformaldeído em pó esteja completamente dissolvido, e depois arrefecer até à temperatura ambiente e filtrar para frasco de cintilação de novo. </li><li> Prepare uma solução de fixação por bifásicacombinando 2,25 ml de 1X PBS com 250 ml de formaldeído a 37% num frasco de cintilação, em seguida, adicionando 7,5 ml de heptano. </li><li> Colher da placa de sumo de maçã da gaiola e recolher os embriões através da adição de um pouco de água da torneira temperatura ambiente e delicadamente escovar os embriões fora da placa com o pincel. Transferir os embriões ressuspensos em uma cesta e enxágüe com água morna da torneira. </li><li> Embriões Dechorionate para 90 seg banhando as cestas de coleta em solução de água sanitária, em seguida, enxaguar com água morna da torneira (até lixívia cheiro se foi). </li><li> Desmonte a cesta coleta, coletar embriões delicadamente usando um pincel e transferi-los para a solução de fixação bifásico. Os embriões vai acumular na interface entre a camada de heptano e PBS. </li><li> Selo de cintilação frascos e prenda a um misturador de vórtice. Agitar durante 20 minutos na configuração mais baixa. </li><li> Remover e descartar a maior parte das fases inferiores e superiores de PBS heptano, usando uma pipeta de Pasteur. Aspirara mistura de PBS / heptano / embriões restantes para a pipeta. Gota a gota, rejeitar a fase inferior PBS da pipeta, tendo o cuidado de não eliminar os embriões. Depositar os embriões para um tubo de 1,5 ml contendo uma solução bifásica de 500 ul de heptano (fase superior) e 500 uL de metanol (fase inferior). </li><li> Agite vigorosamente os tubos com a mão por 30-45 seg para quebrar as membranas vitelínicos. Uma vez rachado, os embriões vai afundar o metanol. </li><li> Descarte a fase superior de heptano e embriões uncracked na interfase heptano / metanol e adicionar 500 ul de metanol. Agitar durante 5 seg. </li><li> Lavar 3 vezes com metanol e armazenar os embriões a -20 ° C (neste ponto os embriões podem ser armazenados por semana / mês). </li></ol> 3. Pós-fixação Lava hibridação, Processamento e Pós-hibridação Resumo: Esta seção detalha as etapas de processamento para permeabilização embrião antes da FISH, hibridação pré-hibridação com as sondas de RNA e de pós-hibridação lavagens. Para os passos iniciais permeabilização os embriões são tratados como um conjunto de um único tubo (passos 1-9 a seguir, a fim de 10-15 ul de embriões assentadas / amostra), mas eles são aliquotadas em poços individuais de uma placa de PCR de 96 poços antes de prosseguir com o passo de pré-hibridação (passo 10). Isso ajuda a garantir um tratamento de todos os embriões nas fases iniciais do experimento. Quando da criação de uma experiência FISH, é importante incluir controlos negativos para determinar o nível de sinal de fundo em experiências individuais. Por isso, recomendamos incluindo amostra de um &quot;não-sonda e, como mencionado na seção 1, uma amostra hibridizada com o&quot; sentido &quot;RNA sonda, que normalmente dão um sinal comparável à condição de o&quot; não-sonda. Materiais: <ul><li> Metanol </li><li> Salina tamponada com fosfato com 0,1% de Tween-20 (PBT) </li><li> Proteinase-K 1 mg / ml de solução-mãe (Sigma Aldrich, Oakville, ON, Canadá. Catalog No. P2308) </li><li> Glicina (20 mg / ml de solução stock) </li><li> Solução de hibridação: 50% de formamida, 5X SSC, 0,1% de Tween-20, 100 g / ml de DNA de esperma de salmão, 100 Heparina ug / ml. </li><li> 0,2 ml halfskirted placas de 96 poços de PCR, ABgene, Rochester, NY, EUA gato. Não 0900) </li></ul> Equipamento <ul><li> Forno de hibridização, o bloco de aquecimento digital ou banho de água ajustável para 56 ° C, 80 ° C ou 100 ° C, ou de uma máquina de PCR. </li><li> Pipetas multicanal (recomendado para simplificar as etapas de lavagem) </li><li> Nutação misturador </li></ul><ol><li> Enxaguar os embriões em metanol, seguida de uma mistura de 1:1 de metanol: PBT, e depois duas vezes em PBT. </li><li> Fixar os embriões, durante 20 min em 1 ml de PBT contendo formaldeído 3,7% (preparada de fresco tal como descrito no passo 11) com agitação constante num Nutator. </li><li> Lavar os embriões por 3 vezes durante 2 minutos em PBT enquanto agitando. </li><li> Prepara-se uma solução de 3 | ig / ml de proteinase K (PK) diluído em PBT e adicionar500 ul de solução de amostra. Incubar as amostras durante 10 min à temperatura ambiente sem agitação. Misturar embriões cada 2 min por jacto com uma pipeta ou invertendo suavemente os tubos. </li><li> Transferir amostras de embriões em gelo durante 1 hr. </li><li> Mover as amostras à temperatura ambiente e remover a solução de PK. Lavar 2 vezes, durante 2 min com 1 ml de PBT + 2 mg / ml de glicina. </li><li> Fixar as amostras de 20 min em 1 ml de formaldeído PBT + 3,7%, com agitação. Enxaguar embriões 5 vezes em PBT. </li><li> Enxaguar os embriões com 1 ml de uma mistura 1:1 de solução de PBT e Hyb. Substituir com 0,5-1 ml de solução 100% Hyb (nesta etapa, os embriões podem ser armazenados durante vários dias / semanas a -20 ° C). </li><li> Embriões alíquotas em poços individuais de uma placa de 96 poços (objectivo para ~ ul 10-15 de embriões assentados / bem, ter o cuidado de usar dicas de grande abertura para evitar danificar os embriões). </li><li> Ferver 100 ul / amostra de solução de Hyb durante 5 minutos e depois arrefece-se em gelo durante 5 min. Esta solução é utilizada para a amostra de pré-hibridação (pré-Hyb). </li><li> Adicionam-se 100 ul / amostra de pré-Hyb solução e incubar durante pelo menos 2 horas a 56 ° C. </li><li> Para cada amostra, dilua ~ 100 ng de sonda em 100 ul de solução de Hyb. Aquece-se a 80 ° C durante 3 min, depois arrefece-se em gelo durante 5 min (sondas aquecidas pode ser mantida em gelo durante várias horas). </li><li> Remover a solução de pré-Hyb dos embriões e substituir com a solução de sonda de RNA. </li><li> Hibridizar a 56 ° C durante 12-16 hr. </li><li> Pré-aquecer as seguintes soluções de lavagem a 56 ° C: (A) 200 ul / amostra de solução de Hyb, (B) 100 ul / amostra de uma mistura de 3:1 de Hyb: PBT, (C) ul 100 / amostra de um 01:01 mistura de Hyb: PBT, (D) 100 ul / amostra de uma mistura de 1:3 de Hyb: PBT, (E) 400 ul / amostra de PBT. </li><li> Enxaguar as amostras com 100 uL de solução de lavagem A, em seguida, executar o passo de lavagem com 100 ul / amostra de AD soluções a 56 ° C durante 15 minutos cada. Em seguida, lava-se amostras de quatro vezes durante 5 min com 100 ul / amostra de solução E, a 56 ° C. </li><li> Amostras arrefecer à temperatura ambiente. </li></ol> Visão geral: Esta secção descreve os anticorpos e reagentes de detecção utilizados para a detecção e a visualização da distribuição do sinal de hibridação de sonda de ARN a seguir. Estes passos estão descritos de forma esquemática na Figura 2. Aqui nós apresentamos apenas os reagentes de detecção normalizados que utilizamos para a amplificação do sinal robusto, mas existe uma variedade de reagentes disponíveis comercialmente, que podem ser utilizados como alternativas, especialmente quando realizar FISH dupla experiências de co-detectar RNAs diferentes simultaneamente para a proteína-RNA duplo coloração. Exemplos de resultados obtidos com este protocolo são mostrados no padrão de mosaico mRNA expressão / localização na Figura 3. Materiais <ul><li> HRP conjugada com anticorpo monoclonal de ratinho anti-DIG (Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc. Cat. No. 200-032-156) </li><li> A biotina conjugada com anticorpo monoclonal de ratinho anti-DIG (Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc. gato. Não. 200-062-156) </li><li> Estreptavidina-HRP (Molecular Probes, Eugene OR, EUA, cat. No.S991) </li><li> Cy3-tiramida conjugados (Perkin Elmer Life Sciences, Boston, MA, EUA, Gato. Não. SAT704A) </li><li> DABCO solução de montagem: Num tubo de 50 ml, diluir 1,25 gramas de DABCO (1,4-diazabiciclo [2.2.2] octano, Sigma D-2522) em 15 ml de 1X PBS, em seguida, adicionar 35 ml de glicerol e mistura até que esteja totalmente homogênea. Por pré-mistura com PBS, o pó é dissolvido DABCO muito rapidamente. Solução de loja de montagem à temperatura de -20 ° C. </li><li> Lâminas de vidro, lamínulas </li></ul> Equipamento <ul><li> Nutação misturador </li><li> Pipetador multicanal </li><li> Microscópio de fluorescência </li></ul><ol><li> Prepare PBTB solução, contendo PBT + 1% de leite seco não gordo (normalmente 50-100 ml é suficiente para todas incubação do reagente de detecção e as etapas de lavagem). </li><li> Bloquear as amostras durante 10 min à temperatura ambiente em 100 PBTB ul / amostra, enquanto agitando na Nutator. </li> &lt;li&gt; Remover solução de bloqueio a partir de embriões e as amostras a incubar durante 1,5-2 horas à temperatura ambiente com 100 ul / amostra monoclonal biotina da solução de anticorpo anti-DIG (diluído a 1/400 de estoque em PBTB) com agitação. </li><li> Lave as amostras 6 vezes durante 5 minutos cada uma com 100 PBTB ul / amostra, com agitação. </li><li> Incubar 1,5 h à temperatura ambiente com 75 ml / amostra de solução de estreptavidina-HRP (diluído a 1/100 de estoque em PBTB, 10 ug / ml de concentração final), com agitação. </li><li> Lave as amostras 6 vezes durante 5 minutos cada. PBTB 100 ul / amostra com agitação (para a contracoloração DNA, diluir DAPI a concentração 1X trabalhando em PBTB e usar esta solução no passo de lavagem primeiro) </li><li> Enxaguar embriões com PBT, em seguida, lavar duas vezes durante 5 min com PBS. </li><li> Incubar as amostras durante 2 horas à temperatura ambiente no Nutator com 50 ul / amostra de Cy3-tiramida solução (diluído a 1/50 em tampão de amplificação tiramida). A partir deste passo, certifique-se para manter as amostras em um recipiente blindado luz. &lt;/ Li&gt; <li> Lave as amostras 6 vezes durante 5 minutos cada um com 100 ul de PBS / amostra em Nutator. </li><li> Remover PBS e adicionar 100-125 ul / amostra de solução de montagem contendo glicerol a 70% e 2,5% (DABCO). Armazenar as amostras a 4 ° C. Estas amostras podem ser armazenadas durante vários anos. </li><li> Utilizando uma ponta de grande calibre, ressuspender os embriões por pipetagem suave e transferir as amostras de 25 ul de embriões em uma lâmina de vidro, em seguida, colocar uma lamela sobre os embriões e vedação sobre a lâmina com unha polonês. </li><li> Analisar amostras de embriões, utilizando um microscópio de fluorescência. </li></ol>

<ol><li>Wilcox, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fundamental+principles+of+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Histochem.+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Fundamental principles of in situ hybridization.</a> J. Histochem. Cytochem. 41, 1725-1733 (1993).</li>
<li>Tautz, D., Pfeifle, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+non-radioactive+in+situ+hybridization+method+for+the+localization+of+specific+RNAs+in+Drosophila+embryos+reveals+translational+control+of+the+segmentation+gene+hunchback%5BTitle%5D)+AND+%22Chromosoma%22%5BJournal%5D)">A non-radioactive in situ hybridization method for the localization of specific RNAs in Drosophila embryos reveals translational control of the segmentation gene hunchback.</a> Chromosoma. 98, 81-85 (1989).</li>
<li>Lecuyer, E., Tomancak, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+the+gene+expression+universe%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Genet+Dev%22%5BJournal%5D)">Mapping the gene expression universe.</a> Curr Opin Genet Dev. 18, 506-512 (2008).</li>
<li>Tomancak, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+analysis+of+patterns+of+gene+expression+during+Drosophila+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Global analysis of patterns of gene expression during Drosophila embryogenesis.</a> Genome Biol. 8, 2007-208 (2007).</li>
<li>Thisse, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+and+temporal+expression+of+the+zebrafish+genome+by+large-scale+in+situ+hybridization+screening%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Spatial and temporal expression of the zebrafish genome by large-scale in situ hybridization screening.</a> Methods Cell Biol. 77, 505-519 (2004).</li>
<li>Quiring, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+expression+screening+by+automated+whole-mount+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Dev%22%5BJournal%5D)">Large-scale expression screening by automated whole-mount in situ hybridization.</a> Mech. Dev. 121, 971-976 (2004).</li>
<li>Pollet, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+atlas+of+differential+gene+expression+during+early+Xenopus+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Dev%22%5BJournal%5D)">An atlas of differential gene expression during early Xenopus embryogenesis.</a> Mech. Dev. 122, 365-439 (2005).</li>
<li>Lein, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+atlas+of+gene+expression+in+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genome-wide atlas of gene expression in the adult mouse brain.</a> Nature. 445, 168-176 (2007).</li>
<li>Lecuyer, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+analysis+of+mRNA+localization+reveals+a+prominent+role+in+organizing+cellular+architecture+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Global analysis of mRNA localization reveals a prominent role in organizing cellular architecture and function.</a> Cell. 131, 174-187 (2007).</li>
<li>Imai, K. S., Levine, M., Satoh, N., Satou, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulatory+blueprint+for+a+chordate+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Regulatory blueprint for a chordate embryo.</a> Science. 312, 1183-1187 (2006).</li>
<li>Bell, G. W., Yatskievych, T. A., Antin, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GEISHA%2C+a+whole-mount+in+situ+hybridization+gene+expression+screen+in+chicken+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">GEISHA, a whole-mount in situ hybridization gene expression screen in chicken embryos.</a> Dev. Dyn. 229, 677-687 (2004).</li>
<li>Wilkie, G. S., Shermoen, A. W., O'Farrell, P. H., Davis, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcribed+genes+are+localized+according+to+chromosomal+position+within+polarized+Drosophila+embryonic+nuclei%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Transcribed genes are localized according to chromosomal position within polarized Drosophila embryonic nuclei.</a> Curr. Biol. 9, 1263-1266 (1999).</li>
<li>Rothwell, W. F., Sullivan, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+embryo+dechorionation%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Drosophila embryo dechorionation.</a> CSH Protoc. , (2007).</li>
<li>Stapleton, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+gene+collection%3A+identification+of+putative+full-length+cDNAs+for+70%25+of+D.+melanogaster+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">The Drosophila gene collection: identification of putative full-length cDNAs for 70% of D. melanogaster genes.</a> Genome Res. 12, 1294-1300 (2002).</li>
<li>Rubin, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila+complementary+DNA+resource%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A Drosophila complementary DNA resource.</a> Science. 287, 2222-2224 (2000).</li>
<li>Tomancak, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+determination+of+patterns+of+gene+expression+during+Drosophila+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Systematic determination of patterns of gene expression during Drosophila embryogenesis.</a> Genome Biol. 3, (2002).</li>
<li>Terashima, J., Bownes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translating+available+food+into+the+number+of+eggs+laid+by+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Translating available food into the number of eggs laid by Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 167, 1711-1719 (2004).</li>
<li>Lecuyer, E., Parthasarathy, N., Krause, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+in+situ+hybridization+protocols+in+Drosophila+embryos+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent in situ hybridization protocols in Drosophila embryos and tissues.</a> Methods Mol. Biol. 420, 289-302 (2008).</li>
<li>Lecuyer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+fluorescent+in+situ+hybridization+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">High resolution fluorescent in situ hybridization in Drosophila.</a> Methods Mol. Biol. 714, 31-47 (2011).</li>
<li>Kosman, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+detection+of+RNA+expression+in+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multiplex detection of RNA expression in Drosophila embryos.</a> Science. 305, 846(2004).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Para as etapas de síntese da sonda, que normalmente geram o escoamento sondas antisense RNA por transcrição in vitro a partir de cDNAs completos Drosophila amplificados de plasmídeos encontrados no gene Drosophila Collection (DGC), um recurso detalhada no site: <a href="http://www.fruitfly.org/DGC/index.html" target="_blank">http://www .fruitfly.org / DGC / index.html</a> 14,15. Esta abordagem tem sido amplamente utilizado em estudos de grande escala ISH destinadas a expres...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de Catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> T7, T3 ou SP6 RNA polimerase </td><td> Fermentas Life Sciences </td><td> EP0101, EP0111, EP0131 </td><td> Kits contêm tampão de reacção. </td></tr><tr><td> DIG RNA Labeling Mix </td><td> Roche Applied Science </td><td> 11 277 073 910 </td><td></td></tr><tr><td> RNAguard </td><td> Amersham Biosciences </td><td> 27-0816-01 </td><td></td></tr><tr><td> Acetato de sódio 3M </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Etanol a 100% frio. </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Etanol a 70% frio. </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Solução de lixívia de cloro diluído 1:1 com água. </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Heptano </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Metanol </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> proteinase K </td><td> Sigma Aldrich Oakville, Ontário, Canadá </td><td> Catalog No. P2308 </td><td></td></tr><tr><td> Solução de formaldeído a 40%, recentemente preparada </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> PBS-Tween (PBT) </td><td></td><td> 1xPBS, 0,1% de Tween-20 </td><td></td></tr><tr><td> Glicina solução </td><td></td><td> 2 mg / ml de glicina em PBT </td><td></td></tr><tr><td> HRP conjugada com anticorpo monoclonal de ratinho anti-DIG </td><td> Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc </td><td> 200-032 - 156 </td><td> (1/400 de uma diluição de 1 mg / ml de solução concentrada de PBTB </td></tr><tr><td> HRP-conjugado ovelha monoclonal anti-DIG </td><td> Roche Applied Science, Laval, QC </td><td> 1 207 733 </td><td> 1/500 diluição da solução de reserva em PBTB </td></tr><tr><td> A biotina conjugada com anticorpo monoclonal de ratinho anti-DIG </td><td> Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc., West Grove, PA, EUA </td><td> 200-062-156 </td><td> (1/400 de uma diluição de 1 mg / ml de solução concentrada de PBTB </td></tr><tr><td> Estreptavidina-HRP conjugado </td><td> Molecular Probes, Eugene OR, EUA </td><td> S991 </td><td> (Diluição 1/100 de um estoque 1 ug / ml </td></tr></tbody></table>

todo o monte rna fluorescente<em&gt; in situ</em&gt; a hibridação de<em&gt; drosophila</em&gt; embriões

Whole Mount RNA Fluorescent in situ Hybridization of Drosophila Embryos

Avaliar o padrão de expressão de um gene, assim como as propriedades de localização subcelular dos seus transcritos de ARN, são características chave para a compreensão da sua função biológica durante o desenvolvimento. RNA de hibridação in situ (RNA-ISH) é um poderoso método utilizado para visualização de propriedades de distribuição de RNA, seja nos organismos, níveis celulares ou subcelular 1. RNA-ISH baseia-se na hibridação de uma sonda marcada de ácido nucleico (por exemplo, ARN anti-sentido, oligonucleótidos) complementar à sequência de um mRNA ou de um não-codificantes de ARN alvo de interesse 2. À medida que o processo requer a informação de sequência primária sozinho para gerar sondas específicas de sequência, pode ser universalmente aplicado a uma ampla gama de organismos e amostras de tecido 3. De facto, uma série de estudos de grande escala ISH foram implementados para documentar a expressão do gene de ARN e dinâmica de localização em vários organismos modelo, o que levou àestabelecimento de recursos comunitários importantes 4-11. Embora uma variedade de etiquetagem da sonda e estratégias de detecção têm sido desenvolvidos ao longo dos anos, o uso combinado de reagentes de detecção marcados por fluorescência e as etapas de amplificação enzimática de sinal oferecem melhorias significativas na sensibilidade e resolução do processo 12. Aqui, nós descrevemos um método fluorescente optimizado em hibridização in situ (FISH) utilizando amplificação de sinal de tiramida (TSA) para visualizar a expressão de RNA e da dinâmica de localização em embriões de Drosophila faseados. O procedimento é realizado em formato de 96 poços da placa de PCR, o que facilita grandemente o processamento simultâneo de um grande número de amostras.

Quando realizada com sucesso, este procedimento oferece um nível notavelmente melhorada de detalhe na análise espaço-temporal da expressão gênica e dinâmica de localização de mRNA durante a embriogênese Drosophila cedo. De fato, como ilustrado na Figura 3A para o nanico gene clássico par-regra (pista), pode-se usar este protocolo para observar eventos de expressão gênica por meio da detecção de focos transcrição nascente em grupos de núcleos expressando. Além disso, como mostr...

Aqui nós descrevemos um fluorescente todo-mount<em&gt; In situ</em&gt; Protocolo de hibridização (FISH) para determinar as propriedades de expressão e localização de RNAs expressas durante a embriogênese na mosca da fruta,<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt;.

Todo o Monte RNA Fluorescente<em&gt; In situ</em&gt; A hibridação de<em&gt; Drosophila</em&gt; Embriões

Assessing  the expression pattern of a gene, as well as the subcellular localization  properties of its transcribed RNA, are key features for ...

Este procedimento descreve um método de peixe otimizado para avaliar as características de expressão e localização do RNA em embriões inteiros de Drosophila. Isso é feito sintetizando primeiro uma sonda de RNA marcada, complementar a um Sr. NA ou RNA não revestinte de interesse por transcrição in vitro de um molde de DNA adequadamente selecionado. Em gaiolas de população de moscas paralelas são usadas para colher, fixar e permear embriões do estágio de desenvolvimento desejado.Após várias etapas pós-fixação, os embriões são hibridizados com a sonda de RNA antisense marcada. Finalmente, após extensa lavagem das amostras, a sonda hibridizada é detectada por imunomarcação com um anticorpo específico e reagentes de detecção conjugados com fluorocromo, fornecendo assim uma leitura sensível da distribuição do RNA alvo. Em última análise, os resultados produzem sinais fluorescentes altamente resolvidos que são analisados por microscopia de fluorescência padrão para documentar as características de expressão espacial e temporal do RNA alvo durante a embriogênese da drosófila.A principal vantagem desta técnica sobre os métodos existentes, como Northern blot ou RTPCR, é que se pode avaliar a

whole-mount-rna-fluorescent-situ-hybridization-drosophila

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Montar toda a hibridização in situ é uma das técnicas mais utilizadas em biologia do desenvolvimento. Aqui, apresentamos uma alta resolução de dupla fluorescentes em protocolo de hibridização in situ para analisar o padrão de expressão precisa de um único gene e para determinar a sobreposição dos domínios de expressão dos dois genes. Incluímos uma propidium iodeto nuclear contra-coloração para destacar a organização do tecido.

Zebrafish Whole Mount Alta Resolução Duplo Fluorescente In Situ Hibridização

Hemócitos Drosophila dispersam sobre a totalidade do embrião em desenvolvimento. Este protocolo demonstra como montar e imagem essas migrações usando embriões com hemócitos fluorescente etiquetado.

Imagens ao vivo de Drosophila melanogaster Embrionárias Migrações hemócitos

Este protocolo de hibridização in situ em preparação inteira discute etapas críticas que garantem resultados de alta qualidade e reprodutíveis para estudos de expressão gênica em embriões de camundongo com idade entre E8,5 e E11,5 dias.

Monte todo In Situ Hibridação de E8.5 de Embriões E11.5 rato

O peixe-zebra, um pequeno peixe tropical, tornou-se um modelo popular para estudar a função do gene durante o desenvolvimento de vertebrados e doença. A expressão espacial e temporal dos genes alvo pode ser determinada...

Alta resolução Monte Whole<em&gt; In Situ</em&gt; Hibridização dentro embriões Zebrafish para estudar a expressão gênica e função

Nós descrevemos um monte de todo o processo de hibridação in situ multi-alvo cromogénico (MC-DESEJO) em embriões de Drosophila intactas permitindo a detecção simultânea e específica de três padrões de distribuição mRNA diferentes, contrastando precipitados de cor.

Multi-alvo Chromogenic Whole-mount<em&gt; In Situ</em&gt; Hibridização para Comparando Expressão Gênica em Domínios<em&gt; Drosophila</em&gt; Os embriões

O protocolo descrito de RNA em situ hibridização permite a detecção de RNA em toda Drosophila embriões ou tecidos dissecados. Usando placas de 96 poços da microplaca e amplificação do sinal de tyramide, transcrições podem ser detectadas no throughput, sensibilidade e alta resolução e a um custo relativamente baixo.

Alta resolução hibridação fluorescente In Situ em embriões da drosófila e tecidos usando amplificação de sinal Tyramide

Este manuscrito apresenta um método detalhado para a geração X-cromossomo braço sondas e realizando fluorescência situ hibridação in (peixe) para examinar o estado da irmã coesão cromátide em prometafase e metáfase prendi  Drosófila ovócitos. Este protocolo é apropriado para determinar se a coesão de braço meiótica é intacta ou interrompidos em diferentes genótipos.

Uso de hibridização in situ de fluorescência (FISH) para monitorar o estado da coesão do braço em oócitos de Drosophila na prometáfase e na metáfase I

Aqui, apresentamos um protocolo para a visualização, detecção, análise e rastreamento do tráfico endógeno de mRNA em câmara de ovo de Drosophila melanogaster ao vivo usando balizas moleculares, microscopia confocal de disco giratório e análise de código aberto Software.

Visualizando e rastreando mRNAs endógenas em câmaras de ovo de Drosophila melanogaster ao vivo

Aqui, descrevemos um protocolo de detecção e localização da proteína de embrião Drosophila e RNA da coleta à pré-incorporação e incorporação, imunostaining e mRNA in situ hibridização.

Um Protocolo para Imunohistoquímica e Distribuição In-situ de RNA dentro do Embrião Drosophila Precoce

A hibridização in situ de fluorescência iterativa assistida por expansão (EASI-FISH) é uma técnica robusta que combina microscopia de expansão com hibridização in situ de fluorescência (FISH) para detectar a expressão de vários genes em tecidos espessos. Este protocolo descreve os recentes avanços no método e sua adaptação para rotular o sistema nervoso central intacto da Drosophila.

Detecção multiplex da expressão gênica no cérebro intacto de Drosophila usando hibridização in situ de fluorescência iterativa assistida por expansão

Aprenda hibridização in situ fluorescente em embriões de Drosophila melanogaster para visualizar a expressão e localização de RNA durante a embriogênese. Este método otimizado permite análises detalhadas de padrões de expressão gênica.

Todo o Monte RNA Fluorescente

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