Name: Ex utero Eletroporação e Explantes hemisfério inteiro: um método simples Experimental de Estudos do Desenvolvimento Cortical Precoce (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-03T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 47 s
Description: Aprenda a preparar explantes de hemisfério cerebral completo de embriões de camundongo usando eletroporação ex utero. Este método permite estudar o desenvolvimento cortical precoce e avaliar efeitos de mutações ou toxinas em neurônios.

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Este trabalho foi financiado doações de NINDS (NS066071) e da NIAAA. (P50AA017823) para ECO. Os autores agradecem ao Dr. Robert Quinn e os funcionários do Departamento de Recursos Animais de Laboratório para cuidar dos animais. Agradecemos Judson Belmont para suporte técnico, Nicole Belletier de assistência como um pesquisador Verão Graduação (SURF). Agradecemos também o Dr. David Cameron para comentários e edições em uma versão anterior do manuscrito.

1. Anteriores electroporações utero com expressão da proteína verde fluorescente plasmídeo <ol><li> Soluções para injecção de DNA de plasmídeo são preparados com CAG-eGFP DNA 27 diluído para a concentração de trabalho final de 0,33 mg / ml em DDH 2 O. Qiagen Endo-free Maxi-Preps são utilizadas para purificar o plasmídeo a partir de bactérias transformadas. Corante verde rápido a ~ 0,02% (w / v final) é adicionado à solução de DNA, como um marcador de injecção. </li><li> Para preparar a área cirúrgica, spray para baixo bancada de trabalho e estágio estereomicroscópio com uma solução de etanol 70% e seque. Pulverizar uma tesoura cirúrgica e pinças com etanol 70% antes da dissecção e seque. </li><li> Cronometrados grávidas suíços / Webster barragens são sacrificados no E13 por transferência para uma câmara cheia de CO 2 a partir de um cilindro pressurizado e a barragem é monitorizado até que todo o movimento parou, durante pelo menos 1 min. Após o sacrifício por inalação de CO2, os embriões são removidos do útero e colocados emde 10 cm de placa de Petri contendo gelada solução salina balanceada de Hanks (HBSS). </li><li> Dissecar cuidadosamente cada embrião das membranas que envolvem extraembryonic e manter geladas HBSS. </li><li> Transferir cada embrião individualmente para uma placa de 10 cm segundo Petri contendo HBSS frio. Use uma seringa Hamilton de injectar 2-3 ul da mistura de DNA rápido verde no ventrículo do hemisfério cerebral esquerdo, tendo o cuidado de injectar-se numa área cortical espacialmente separada da área cortical para análise futura. </li><li> Para electroporate, mantenha o embrião suavemente com uma pinça e coloque a pá levemente positivo do eléctrodo de pinça sobre a linha média dorsal da cabeça e levemente coloque a pá negativa por baixo do queixo do embrião. Electroporações são conseguidos com um electroporador BTX830 programado para entregar cinco impulsos de 30 V de 50 ms de duração, separadas por intervalos de 950 mseg. Essas configurações são para o modelo BTX830. Outros sistemas podem ser utilizados de acordo com o fabricante INSTRUÇÕESns. </li></ol> 2. Preparação Explante todo Hemisfério <ol><li> Após a electroporação, os embriões são colocados de volta para gelados HBSS. O cérebro é removido usando duas pinças de joalheiro # 5 para remover a pele e crânio cartilaginoso a partir da cabeça do embrião. A pinça é então deslizado por debaixo do cérebro para remover o cérebro intacto do crânio. O hemisfério electroporated (à esquerda) é, em seguida, dissecado a partir do tecido cerebral e do cérebro médio em anexo é removido. Durante todo o cuidado é tomado procedimento de dissecção para não danificar as meninges que recobrem o hemisfério esquerdo cortical. </li><li> Uma vez que cada dissecados de embriões são transferidos em HBSS, utilizando uma pipeta de 1 ml com uma ponta de pipeta de corte. O hemisfério é expelido suavemente para uma inserção de cultura de colagénio revestida. Até seis explantes hemisfério são dispostos lado medial para baixo em cada pastilha de 24 mm. Uma vez dispostos, HBSS excesso é removido da pastilha e a pastilha é então colocada em um poço de 35 milímetros de um prato de 6 poços. O poço contém exactly 2,7 ​​mL de meio: DMEM-F12 meios contendo Glutamax e suplementado com 2% de B-27, 1% G5 e 1% de Penicilina-Strep. Algumas gotas de meios de comunicação a partir do poço pode ser pipetado em cima de cada explante, mas não se adicione o meio em excesso do original de 2,7 mL por poço. </li><li> Uma vez que os explantes foram colocados em filtros de colagénio do prato de 6 poços contendo os explantes são colocados em um Rothenberg Billups (BR) câmara (que também contém um prato de humidificação com água). A 95% / 5% de oxigénio / CO mistura de gás 2 é injetado na câmara durante pelo menos 1 min antes de selar a câmara fechada e desconectar a 95% / 5% de oxigénio / CO 2 do tubo de abastecimento de gás. A câmara de BR é então colocado a 37 ° C de cultura de tecidos incubadora durante o resto do período de cultura, 1-2 DIV. </li></ol> 3. Fixação de explante para Histologia <ol><li> Numa hotte preparar a solução de fixação Pagano pelo primeiro g 8 solubilizante de paraformaldeído em 100 ml de pré-aquecido (~ 80 &amp; deg; C) DDH 2 O. Adicionar 1-3 gotas de NaOH concentrada para promover a solubilização e agitar suavemente. Uma vez solubilizados misturar a solução de paraformaldeído a 8% de 1:1 com uma solução que é de 500 mM de sacarose, 100 mM de Hepes, pH 7,4, 50 mM de MgCl2, 5 mM de KCl para uma concentração final de 4% de paraformaldeído em 250 mM Hepes 50 mM de sacarose , 25 mM de MgCl2, 2,5 mM de KCl, pH 7,4. </li><li> Para corrigir os explantes aquecer a solução fix Pagano e 37 ° C. Remover rapidamente a maior parte dos meios DMEM/F12 de cada poço de cultura e adicionam-se 5 ml de Fix Pagano a cada poço de explantes. Certifique-se de cobrir cada explante completamente na correção. Fixar durante 1 h à RT. Não remova explantes de filtro antes de 1 hora da fixação. </li><li> Depois de remover a solução de fixação fix Pagano e substituir com Pagano solução sem correcção (250 mM de sacarose 50 mM de Hepes, 25 mM MgCl2, 2,5 mM de KCl, pH 7,4). Adicionar algumas gotas de azida de sódio a 10% e armazenar a 4 ° C até que a incorporação. </li></ol> 4. Incorporação e Sectioning para Histologia <ol><li> Prepara-se uma solução de 10% de pele de vitela por solubilização de gelatina 10 g de gelatina de pele de vitelo em 100 ml de água quente (55-60 ° C). Colocar em solução de gelatina a uma placa quente a 60 ° C e periodicamente redemoinho até solubilizado. </li><li> Verter cerca de 10 ml da solução de gelatina a 10% na parte inferior de uma placa de 10 cm de Petri e deixar 30 minutos para solidificar. Isto irá formar um &quot;pad&quot; para a incorporação de explantes. Estas almofadas podem ser preparadas com antecedência dias e armazenado a 4 ° C. Use uma régua para desenhar uma grelha no fundo da placa de Petri e transferir explantes individuais em cada caixa da grelha. Remover a solução residual Pagano e utilizando um pipetador, cobrir cada explante, com solução a 10% de gelatina quente e deixa-se solidificar. Retomar a adição lenta de uma solução de gelatina, até que cada explante é completamente rodeado por gelatina, tomando cuidado para não derreter a almofada por meio da adição de um excesso de aquecer a gelatina de uma só vez. Permitir a gelatina para endurecer por ~ 1 hora. Uma vez endureceu o indiviexplantes ual pode ser cortado em pequenos blocos de gelatina. Os blocos são pós-fixados em Pagano fixar por 24-48 horas antes da corte com uma vibratome. </li><li> Explantes em blocos de gelatina são posicionados bulbo olfatório-se e seccionadas no plano coronal em 100 um de espessura. As secções são recolhidas e armazenadas em PBS + azida de sódio a 0,1% a 4 ° C até processamento imunohistoquímico. </li><li> Detecção imuno-histoquímica é realizada através da transferência de pontos para uma placa de 24 poços (2-3 pontos por poço). Primeiro bloco de anticorpo de ligação não específica por adição de 0,5 ml de PBST + B (PBS + 0,5% de Triton X 100 e 2% de BSA) a cada um, bem incubar 1 hora com agitação suave. O anticorpo primário apropriado é então diluído em PBST + B e 0,4 ml por poço é adicionado por incubação durante a noite à temperatura ambiente. O primário é lavada com PBS 3X lavagens, pelo menos, 10 min cada. O anticorpo secundário e 2 ug / ml de Hoechst 33342 mancha nuclear são então diluídas em PBST + B e as amostras são incubadas durante 2 h à RTcom agitação suave. Três lavagens de PBS (10 min cada) são executados e em seguida, as secções são montadas em lâminas com um 90% de glicerol a 50 mM Tris, pH 7,4, meios de montagem. </li></ol>

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</ol>

Os autores declaram que não têm interesses conflitantes financeiros.

Temos melhorado e avaliadas num modelo experimental - explantes hemisfério inteiros - para o estudo do desenvolvimento cortical precoce (E13-E15). O modelo mostrou-se útil para a análise de migração e diferenciação da linhagem neuronal excitatória que constitui a camada 6 do córtex cerebral 25,37. As principais vantagens do sistema são: 1) crescimento organotípica DIV para 2, 2) simplicidade de preparação, e 3) o acesso aos neurónios experimental para a manipulação de electroporação, farmacológicas e de image...

Os mamíferos cerebrais formas através do córtex concertada migração, proliferação e diferenciação de neurónios sucessivamente gerados. Cada neurónio nasce na zona ventricular (VZ) e migra do VZ na zona intermédia (IZ), formando a placa cortical (CP) 1. À medida que passam através de diferentes domínios corticais, os neurónios migram exibir vários modos de 2,3 a migração dependentes do meio extracelular e de outros elementos celulares (por exemplo, a glia radial) dentro do tecido em desenvolvimento. Neurónios corticais então prender migração no topo da placa de moldagem cortical nos processos coincidentes de prisão migração neuronal e 4 dendritogenesis. Desenvolvimento cortical é iniciada entre os dias embrionários 11-13 (E11-13) 5 a criação da camada plexiforme primordial 6 ou preplate (PP), uma camada de neurónios pioneiras que recobre o VZ. Em perspectivaCamada 6 neurônios corticais (ou seja, os primeiros neurônios corticais nascidos no VZ), em seguida, orientar seu somata em um padrão estereotipado e se fundem em uma camada distinta dentro do PP 7. Estes eventos dividir o preplate em um (camada cortical futuro 1) marginal superficial e uma zona de fundo, o último composto de células subplaca cortical (camada transitória 7). Este processo, denominado divisão preplate, é um evento fundamental para o crescimento futuro do córtex cerebral 8. Muitas mutações genéticas foram identificadas que interromper vários aspectos do desenvolvimento cortical 9. Desenvolvimento cortical também pode ser impactado negativamente pela exposição a toxinas ingeridas como a cocaína e álcool 10 11. Porque malformações corticais que surgem durante o desenvolvimento provavelmente contribui para distúrbios neurológicos (por exemplo, autismo, esquizofrenia), as investigações empíricas de perturbações do desenvolvimento cortical são inerentesly importante. É, portanto, de grande importância para delinear estratégias para estudar o desenvolvimento cortical que permitem testes rápidos de efeitos genéticos ou toxina, mas que também preservar as possíveis interações entre os neurônios de diferenciação, outros tipos de células e da matriz extracelular (ECM) durante esse período inicial do desenvolvimento do cérebro 12 . Explantes de fatia 13 ter fornecido um tal sistema e têm sido amplamente utilizados para o desenvolvimento do ensaio neurónio cortical 14-16. No entanto, ensaios de fatias podem sofrer da desvantagem de que a migração neuronal e laminação pode ser anormal 17 possivelmente devido a danos nas células meníngeas que rodeiam o cérebro em desenvolvimento e ancorar o andaime glial radial. Como radiais fibras gliais são um importante substrato para cortical neurônio interrupção da migração de 18 a lâmina basal por corte pode perturbar localmente arquitetura radial glial e levar a migração cortical alterada. Além disso, a sliced superfícies de explantes proporciona uma região de células mortas, que podem alterar a composição normal do ECM nestas áreas. Abordagens mais recentes têm focado sua análise sobre células localizadas no fundo da fatia que está cercado por adequadas tipos de células saudáveis ​​e ECM. No entanto, em alguns casos, estas abordagens mais recentes podem requerer que a fatia de espessura original de cultura ser crio-seccionado ou parafina seccionado após a fixação, de modo que o interior relativamente normal da fatia é disponibilizada para análise 19-21. Ambos vibratome original seccionamento para preparar as fatias de tempo real para a cultura, bem como o subsequente cryosectioning de fatias fixos para análise requerem cuidados e esforço para estes ensaios para o trabalho. Para fornecer uma abordagem simples e complementar para estudos do desenvolvimento cortical cedo, modificamos uma fatia abordagens existentes 13 para facilitar os estudos do desenvolvimento cortical cedo. Nós desenvolvemos uma whole modelo explante hemisfério semelhante a um modelo existente hemisfério E14 todo que envolveu culturas agitação em 65 rotações por minuto e permitiram o crescimento organotípica para 16-18 horas 22,23. Na nossa abordagem, explantes hemisfério inteiras são colocadas em membrana semi-permeável 13, com uma atmosfera de oxigénio de alta cultura 21,24 estender crescimento cortical organotípica durante 48 horas. Esta abordagem também permite a electroporação consistente de desenvolvimento de neurónios corticais. Os embriões são removidos do útero e electroporado para introduzir o ADN plasmídico e do telencéfalo é então dissecado. Cada hemisfério é isolado e colocado com o lado medial para baixo sobre um filtro revestido com colagénio. O explante é então cultivado durante um período de 48 horas, um período que abrange a divisão preplate 8. Durante o período de cultura, L6 neurônios desenvolvem a partir de precursor para neurónios diferenciados 25, posicionado correctamente no interior da placa cortical. Ao longo deste período, o desenvolvimentoneurónio é cercado pela ECM apropriada e tipos de células que se confrontar a célula correspondente in vivo. Este sistema já provou ser valioso para decifrar os eventos celulares que estão na base toxicidade do etanol 26, a camada de formação de 6 e preplate divisão 7,25.

<table><tbody><tr><td>Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 + GlutaMAX</td><td>GIBCO</td><td>10565</td><td></td></tr><tr><td>G5 Suplemento 100X</td><td>Invitrogen</td><td>17503-012</td><td></td></tr><tr><td>B27 Suplemento Sem Soro 50X</td><td>Invitrogen</td><td>1504-044</td><td></td></tr><tr><td>Caneta / Estreptococo Líquido 100X</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>HBSS 500 ml</td><td>GIBCO</td><td>14025</td><td></td></tr><tr><td>Inserção de cultura revestida com colágeno </td><td>Costar</td><td>3492</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina de pele bovina </td><td>Sigma</td><td>G9382</td><td></td></tr><tr><td>H&#8211; chst 33342</td><td>Invitrogen</td><td>H1399</td><td></td></tr><tr><td>Albumina de Soro Bovino</td><td>Sigma</td><td>7906</td><td></td></tr><tr><td>Kit Maxi de Plasmídeo EndoFree</td><td>Qiagen</td><td>12362</td><td></td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BTX 830 Eletroporador</td><td>Harvard Apparatus</td><td>450052</td><td></td></tr><tr><td>Pinça eletrodos 10mm</td><td>Harvard Apparatus</td><td>450166</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora</td><td>Billups Rothenberg</td><td>MIC-101</td><td></td></tr><tr><td>Seringa Hamilton (5uL)</td><td>Hamilton</td><td>87930</td><td></td></tr><tr><td>Agulha de seringa Hamilton</td><td>Hamilton</td><td>7803-04</td><td>Especifique 1" e estilo 4</td></tr><tr><td>Dumont #5 Fórceps</td><td>FST</td><td>11251-10</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura Fina Corte Resistente 9 cm</td><td>FST</td><td>14058-09</td><td></td></tr></tbody></table>

ex utero eletroporação e explantes hemisfério inteiro: um método simples experimental de estudos do desenvolvimento cortical precoce

Ex utero Electroporation and Whole Hemisphere Explants: A Simple Experimental Method for Studies of Early Cortical Development

Desenvolvimento cortical envolve complexas interações entre neurônios e não-neuronais, incluindo elementos de células precursoras, vasos sanguíneos, meninges e da matriz extracelular associada. Porque eles fornecem um ambiente adequado organotípica, explantes fatia corticais são muitas vezes utilizados para investigar essas interações que controlam a diferenciação neuronal e desenvolvimento. Embora benéficos, o modelo de explante fatia podem sofrer de inconvenientes, incluindo a laminação celular aberrante e migração. Relatamos aqui um sistema de explante todo hemisfério cerebral para estudos do desenvolvimento cortical precoce, que é mais fácil de preparar do que fatias corticais e programas de migração organotípica consistente e laminação. Neste sistema modelo, laminação precoce e padrões de migração continuar normalmente durante um período de dois dias, in vitro, incluindo o período de separação preplate, durante o qual camada cortical prospectivo seis formas. Em seguida, desenvolvemos um electroporação utero ex (EUEP)abordagem que alcança ~ 80% de sucesso na segmentação expressão GFP para os neurônios em desenvolvimento no córtex dorsal medial. O modelo de explante todo hemisfério faz desenvolvimento precoce cortical acessível para intervenção eletroporação, farmacológicos e abordagens de imagem ao vivo. Este método evita a cirurgia necessária de sobrevivência in utero eletroporação (IUEP) abordagens, melhorando simultaneamente a transfecção e consistência de segmentação de área. Este método irá facilitar os estudos experimentais de neuronal migração, proliferação e diferenciação.

O roedor córtex embrionário apresenta um gradiente neurogenético transversal ao longo do período de desenvolvimento, tais neocórtex que lateral é aproximadamente 1 dia mais maduro do que neocórtex dorsal medial 28. A maior parte da camada 6 neurónios são assim gerado (isto é, exibem a sua última fase S) na E12 no córtex lateral (também chamado Campo 40 5) e em E13 no córtex medial dorsal (também chamado campo 1 5). Dividindo Preplate começa aproximadamente 1 dia após geração neu...

Este protocolo descreve um processo melhorado que implica explante<em&gt; Ex utero</em&gt; Dissecção eletroporação, e cultura de todo hemisférios cerebrais do rato embrionário. A preparação facilita estudos farmacológicos e ensaios de função do gene durante o desenvolvimento precoce cortical.

Ex utero Eletroporação e Explantes hemisfério inteiro: um método simples Experimental de Estudos do Desenvolvimento Cortical Precoce

Cortical development involves complex interactions between neurons and non-neuronal elements including precursor cells, blood vessels, meninges and ...

O objetivo geral deste procedimento é preparar um explante de hemisfério cerebral inteiro para o estudo do desenvolvimento cortical inicial. Isso é realizado primeiramente coletando embriões de camundongo no dia embrionário 13. Em seguida, injeta-se a mistura de DNA plasmidial no ventrículo cerebral e realiza-se uma eletroporação ex utero.Em seguida, prepare um explante de hemisfério inteiro do embrião eletroporado. O passo final é fixar e seccionar o explante de hemisfério inteiro para análises histológicas. Em última instância, a consequência de mutação ou exposição a toxinas no desenvolvimento de neurônios corticais pode ser avaliada por meio de análises imunohistológicas de neurônios que expressam GFP.Meu nome é Eric Olson. Sou do Departamento de Neurociência e Fisiologia da SUNY Upstate Medical University em Syracuse, e hoje vamos mostrar um método que desenvolvemos chamado explante de hemisfério inteiro X. A principal vantagem dessa técnica em relação a métodos existentes, como o explante de fatias, é que os explantes de hemisfério inteiro X são simples de preparar e permitem dois dias de crescimento organotípico.O método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de neurodesenvolvimento, como a forma pela qual uma mutação ou toxina específica interrompe o desenvolvimento cortical inicial. Em geral, indivíduos novos neste método enfrentarão dificuldades, pois o preparo do explante de hemisfério inteiro sem danificar as meninges pode exigir alguma prática. A demonstração visual deste método é essencial, já que os passos de dissecação e transferência do explante são difíceis de aprender devido à sensibilidade do tecido à perturbação mecânica.Demonstrará o procedimento a Dra. Theresa Ozzi, pós-doutoranda no meu laboratório. Para este protocolo, utilize um kit comercialmente disponível para purificar os plasmídeos. Prepare o DNA plasmidial a 0,33 miligramas por mililitro em água e adicione corante azul de poliacrilamida como marcador de injeção em aproximadamente 0,02% peso por volume. Desinfete sempre os instrumentos cirúrgicos, o espaço de trabalho e o microscópio.Com etanol a 70%, em seguida sacrifica um número necessário de matrizes Swiss Webster no dia E13 por inalação de dióxido de carbono. Quando os embriões forem removidos, coloque-os em uma placa de 10 centímetros com HBSS gelado, mantida sob refrigeração. Disseque cuidadosamente cada embrião das membranas extraembrionárias circundantes.Agora, transfira cada embrião individualmente para um recipiente limpo com HBSS gelado. Usando uma seringa Hamilton, injete dois a três microlitros do DNA preparado no ventrículo do hemisfério cerebral esquerdo. Não injete no interior ou próximo à área cortical destinada à análise futura.Para eletroporar o DNA, segure o embrião suavemente com pinças e coloque levemente a lâmina positiva do eletrodo em formato de pinça sobre a linha média dorsal da cabeça. Coloque levemente a lâmina negativa sob o queixo do embrião. Execute um programa com cinco pulsos de 30 volts, cada um com 50 milissegundos, em intervalos de um segundo, utilizando um modelo BTX 830 ou outros sistemas que podem ser configurados de acordo com as instruções do fabricante.Retorne cada embrião para o HBSS gelado e prossiga com o preparo do hemisfério inteiro de Explan sob um microscópio de dissecação, utilizando duas pinças de ourives número cinco. Remova a pele e o crânio cartilaginoso da cabeça do embrião. Em seguida, deslize as pinças sob o cérebro.Para remover o cérebro intacto do crânio, dissecar o hemisfério eletroporado, incluindo o tecido do mesencéfalo anexo. Tenha cuidado para não danificar as meninges que recobrem o hemisfério cortical dissecado. Descobrimos que a etapa mais difícil de dominar é a dissecção e remoção do hemisfério eletroporado sem danificar as meninges.Uma vez dissecado, transfira cada hemisfério para cinco mililitros de HBSS gelado usando uma ponta de pipeta de um mililitro alargada. Se necessário, os embriões podem ser mantidos em poços separados de uma placa de cultura tecidual de 12 poços. Em seguida, transfira suavemente até seis hemisférios para uma cultura revestida com colágeno de 24 milímetros.Insira e posicione com o lado medial voltado para baixo. Agora, preencha um poço de 35 milímetros de uma placa de seis poços com 2,7 mililitros de meio suplementado. Remova qualquer excesso de HBSS do inserto e coloque o inserto no poço; com uma pipeta, adicione algumas gotas do meio do poço sobre a parte superior de cada x explan.Não aumente o volume do meio. Descobrimos que é essencial colocar algumas gotas de meio de cultura sobre o explante X, de modo que os explantes X não fiquem completamente cobertos pelo meio. Isso pode significar adicionar até 400 microlitros aos 2,7 mililitros de meio sobre o explante X.Transfira a placa para uma câmara Billups-Rothenberg que contenha um recipiente com água para umidificação e que tenha sido infundida com 95% de oxigênio por pelo menos um minuto. Feche hermeticamente a câmara e desconecte o tubo de fornecimento de gás. Coloque a câmara em uma incubadora a 37 °C por dois dias, período em que a divisão de pré-implantes terá ocorrido.Em preparação. Prepare placas para inclusão do explan. Prepare uma solução de gelatina de pele de bezerro a 10% a 60 graus Celsius.Uma vez solubilizado, despeje aproximadamente 10 mililitros da solução em um recipiente de 10 centímetros. Mantenha a solução restante a 60 graus Celsius para uso posterior. Deixe as placas solidificarem por meia hora, se necessário.Eles podem ser armazenados a quatro graus Celsius por vários dias, mas devem ser aquecidos à temperatura ambiente antes do uso. No dia da fixação, em uma capela de exaustão, prepare o Pagano, o fixador e a solução Pagano sem fixador. Aqueça a solução de fixação a 37 graus Celsius.Retire os explantes do incubador cuidadosamente e rapidamente, sem perturbar os tecidos. Remova a maior parte do meio e substitua por cinco mililitros de fixador aquecido. Certifique-se de que cada explante esteja completamente submerso.Fixe os tecidos por uma hora à temperatura ambiente. Em seguida, remova o fixador e substitua pela solução de Pagano. Sem fixador.Adicione algumas gotas de azida de sódio 10% em cada poço. Os tecidos podem agora ser armazenados a quatro graus Celsius até serem embutidos em uma placa de inclusão. Desenhe uma grade no fundo da placa com a ajuda de uma régua.Prepare quadrados de dois a três centímetros. Transfira os explantes individuais para a placa de inclusão. Remova qualquer solução residual com pipeta e cubra cada explante com solução morna de gelatina a 10%.Deixe endurecer. Após o completo endurecimento, adicione lentamente mais solução de gelatina até que cada explante fique totalmente envolvido. Evite derreter o suporte, o que pode ocorrer se for adicionada demasiada gelatina de uma só vez.Agora, deixe a gelatina endurecer por cerca de uma hora. Após o endurecimento, o explante individual pode ser cortado em pequenos blocos de gelatina antes da secção. É importante pós-fixar os blocos em fixador de Pagano por um ou dois dias.Ao realizar os cortes, posicione os explantes com o bulbo olfatório voltado para cima e seccione no plano coronal com espessura de 100 micrômetros. Colete os cortes em PBS gelado com 0,1% de azida de sódio.Armazene as seções a quatro graus Celsius até que possam ser coradas utilizando a técnica descrita. Explantes completos de hemisfério foram preparados no E 13 antes da divisão preliminar. Na neocórtex dorsal.O tecido continha um transgene que marca neurônios imaturos da linhagem cortical excitatória. Explantes corticais da mesma ninhada foram fixados por gotejamento sequencialmente ao longo de um período de dois dias in vitro e processados para análise histológica subsequente. No ponto inicial de análise, no DIV zero, a divisão pré-plântula ainda não ocorreu no campo um a um.DIV.O CP tornou-se aparente e continuou a crescer até 2D IV. Assim, os explantes de hemisfério inteiro cultivados inicialmente no E 13 sustentaram por dois dias a maturação do córtex cerebral e capturaram a divisão do prelata no neocórtex dorsal para confirmar o desenvolvimento histológico normal nessa região. Os explantes de 2D IV foram imunomarcados para sulfato de condroitina, proteoglicanos e componentes da matriz extracelular. Duas faixas de imunorreatividade no córtex dorsal indicaram a divisão adequada do PPP em MZ e SP durante o período de cultura in vitro.O PP foi dividido por seis neurônios corticais que expressam CTIP2 e TBR1. O padrão de imunomarcação desses marcadores confirma a expressão adequada desses fatores de transcrição no cp recém-formado. Conjuntamente, essas análises confirmam o desenvolvimento cortical precoce organotípico em todo o hemisfério exposto, utilizando todo o protocolo descrito; a ventrículo esquerdo de embriões E13 intactos foi injetado.Pode-se observar a expressão de GFP eletroporada e processada a partir de precursores neuronais na vz. Embora células intensamente expressando GFP tenham sido observadas na ZI e cp, importantes neurônios positivos para GFP, marcados por setas, foram observados no topo do cp em formação, com dendritos e axônios emergentes. A camada distinta na interface entre o cp e a MZ indica migração, parada e laminação adequadas.Os dendritos se estenderam até a ZM, enquanto os axônios corticougais se estenderam abaixo da PC e para dentro da ZI. As células em diferenciação eram células GFP positivas em diferentes estados de maturidade, incluindo neurônios com morfologia bipolar justapostos a fibras glias radiais e, abaixo delas, neurônios multipolares na ZI. Os dendritos também se estenderam até a ZM, onde a proteína da ECM reelin está adequadamente imunolocalizada.Assim, as condições de eletroporação e de explante permitem o desenvolvimento normal de neurônios corticais. Como esperado, neurônios positivos para GFP pós-mitóticos colonizaram o cp em formação. Dessa forma, o protocolo pode direcionar de forma confiável neurônios corticais L seis para estudos de sua migração e maturação.O uso extensivo deste procedimento resultou em uma taxa de sucesso de 79%. 195 de 248 tentativas foram adequadas para imagem e análise. Metade das falhas ocorreu devido à ausência de expressão de GFP ou ao alvo errado de GFP. Uma vez dominado.Essa técnica pode ser realizada em 90 minutos se executada corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar-se de praticar as dissecações para que os hemisférios eletroporados possam ser cultivados com meninges intactas após este procedimento. Outros métodos, como a microscopia de lapso de tempo, podem ser realizados com o objetivo de responder perguntas adicionais, como a forma pela qual mutações de interesse interrompem a migração neuronal ou a agênese dendrítica.

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

In Utero injeção intraventricular e eletroporação de embriões de camundongos E15

Na eletroporação utero é um método valioso para transfecting células progenitoras neuronal in vivo. Dependendo da colocação dos eletrodos e do ponto no tempo de desenvolvimento de eletroporação, certos subgrupos de células corticais podem ser alvo. Células-alvo podem então ser analisados ​​in vivo ou in vitro para efeitos da alteração genética.

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Este artigo descreve em pormenor um protocolo para electroporate no útero do córtex cerebral eo hipocampo em E14.5 em ratinhos. Mostramos também que este é um método valioso para estudar dendritos e espinhas nessas duas regiões cerebrais.

Visualização e manipulação genética de dendritos e espinhas no córtex cerebral e hipocampo do rato usando<em&gt; In utero</em&gt; Eletroporação

Aqui apresentamos um protocolo que fornece uma ferramenta para examinar mecanismos regulatórios de genes específicos durante o desenvolvimento do hipocampo. O emprego de eletroporação ex utero e cultura de fatias organotípicas permite a regulação positiva e descendente da expressão de genes de interesse em células individuais e segue seu destino durante o desenvolvimento.

Ex Utero Eletroporação e Organotípicas Cultura Slice of Mouse Hippocampal Tissue

Este protocolo descreve em detalhes como transfectar especificamente diferentes regiões do sistema nervoso central C57BL/6 por meio de eletroporação in utero. Incluídas neste protocolo estão instruções detalhadas para transfecções de regiões que se desenvolvem no córtex, hipocampo, tálamo, hipotálamo, núcleo septal lateral e estriado.

Específicos do Striatum Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- e<em&gt; In Utero</em&gt; A electroporação em ratinhos C57BL / 6 mouse

Este manuscrito fornece protocolos que usam in utero eletroporação (IUE) para descrever a conectividade estrutural dos neurônios no nível de uma única célula e a excitabilidade dos neurônios marcados com fluorescência. A histologia é utilizado para caracterizar dendrítica e projecções axonais. a gravação de célula inteira em fatias agudas é usado para investigar a excitabilidade.

In Utero Eletroporação Abordagens para estudar a excitabilidade neuronal subpopulações e Conectividade uma única célula

Aqui, nós fornecemos um método confiável e de baixo custo para gerar electroporated culturas do cérebro organotypic fatia de embriões do rato apropriados para microscopia confocal e técnicas de geração de imagens ao vivo.

Ex Utero Eletroporação e culturas Organotypic fatia do cérebro embrionário Mouse para imagens ao vivo de migração gabaérgica interneurônios

O dobro na eletroporação uteral permite atingir populações celulares que são separadas espacial e temporalmente. Esta técnica é útil para visualizar interações entre essas populações celulares usando proteínas fluorescentes em condições normais, mas também após experimentos funcionais para perturbado genes de interesse.

Dupla em Eletroporação utero para atingir populações celulares temporais e espacialmente separadas

Aprenda a preparar explantes de hemisfério cerebral completo de embriões de camundongo usando eletroporação ex utero. Este método permite estudar o desenvolvimento cortical precoce e avaliar efeitos de mutações ou toxinas em neurônios.

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Ex utero Eletroporação e Explantes hemisfério inteiro: um método simples Experimental de Estudos do Desenvolvimento Cortical Precoce

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