Name: Medula Óssea derivadas de macrófagos Produção (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-22T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: Aprenda a diferenciar macrófagos a partir de medula óssea de camundongo para estudos de imunologia e biologia celular. Este método permite obter grandes quantidades de macrófagos primários para análises experimentais detalhadas.

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Este trabalho foi apoiado pelo CNRS (PICS 2012-2014 a GE) e por uma bolsa da Regione Campania (LR n.5, 28.03.2002 para Giovanna Mottola). Filippo Conti é membro da Cooperação Científica Foundation&#39;&#39; Infectiopole Sud.&#39;&#39; Nicola Boucherit é um companheiro do Ministério Francês de Pesquisa e Tecnologia. As fontes de financiamento não teve nenhum papel no desenho do estudo, coleta de dados, análise de dados, a decisão de publicar ou preparação do manuscrito.

Declaração de Ética O protocolo para manejo dos animais foi aprovado pelo Comitê de Ética institucional nosso Animal &quot;Conseil Scientifique du Centre de Formation et de Recherche Experimental Médico-Cirúrgica&quot; (CFREMC, licença Projeto 10-300122013 para Eric Ghigo) da Universidade de Aix-Marseille de acordo com as regras Décret de N ° 87-848 de 1987/10/19. Os experimentos foram realizados na Faculté de Médecine de la Timone (número de autorização Experimentação 13,385 para Eric Ghigo). 1. Material e Meios de Cultura Preparação <ol><li> Esterilizar duas pinças, duas tesouras, duas lâminas cirúrgicas, um almofariz e um pilão. </li><li> Obter DMEM completo contendo 10% de soro fetal de vitelo (FCS), 2 mM de glutamina, 100 U / ml de penicilina e 100 ug / ml de estreptomicina. </li><li> Diluir 10x PBS em água destilada estéril para obter 1x PBS. </li><li> Obter gelada PBS 1x, gelada DMEM completo, wa DMEM completormed a 37 ° C. </li></ol> 2. Preparação de sobrenadantes de células L929 <ol><li> Crescer as células L929 até à confluência (vinte e dois frascos de 175 centímetros) em DMEM completo a 37 ° C, 5% de CO 2. </li></ol> Nota: granulócitos-macrófagos colónia factor (GM-CSF) estimulante é necessária para induzir a diferenciação de células hematopoiéticas em macrófagos 12. L929 células produzem GM-CSF. <ol start="2"><li> Na confluência, substituir meios de cultura com DMEM completo fresco. Transferir para frascos de 32 ° C, 5% de CO 2 durante 10 dias. </li><li> Coletar, piscina e centrifugar o sobrenadante a 750 g durante 10 min. Descartar sedimentos celulares. </li><li> Sobrenadantes Armazene em tubos de 15 ml e armazenar a -20 ° C. </li></ol> 3. Bone Marrow-derivado do macrófago (BMDM) Preparação <ol><li> Sacrifique um rato por deslocamento cervical. <ol><li> Use lâminas cirúrgicas estéreis durante todo o experimento. Desinfetar a pele com 70% alcohol. Realizar uma incisão na parte superior de cada perna traseira e puxe a pele para baixo em direcção ao pé para expor o músculo. </li><li> Corte as pernas traseiras, retire a pele com uma tesoura estéril e pinças esterilizadas. Coloque as pernas numa placa de Petri estéril (35/10 mm) contendo estéril gelada 1x PBS (5 ml). </li><li> Retire a carne e músculos que estão aderindo aos ossos com tesouras e pinças esterilizadas. </li></ol></li><li> Transfira os ossos para uma nova placa de Petri estéril (35/10 mm) contendo gelado, estéril 1x PBS (5 ml). Lave os ossos duas vezes com 5 ml de gelado, estéril PBS 1x. </li><li> Transferir o osso em um almofariz estéril contendo 5 ml de gelado, estéril PBS 1x. </li><li> Corte a tíbia do fêmur na articulação com tesoura esterilizada. Esmagar os ossos suavemente num almofariz estéril contendo 5 ml de gelado, estéril 1x PBS utilizando um pilão. </li><li> Recolhe-se o sobrenadante em tubos de 15 ml de gelo-frio. Repita este passo 3x. </li><li> Filtrar com um 70 um stra célula NylonIner para remover fragmentos sólidos. Centrifuga-se o filtrado a 450 xg durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Delicadamente, desprezar o sobrenadante. Dissociar o sedimento em 10 ml de tampão de lise de glóbulos vermelhos para 30 seg. Adicionar 20 ml de gelado, DMEM completo. </li></ol> Nota: O objectivo deste passo é o de remover contaminantes de células vermelhas do sangue, portanto, este passo deve ser realizado no prazo de 2 minutos, para evitar a alteração de células hematopoiéticas por o tampão de lise de glóbulos vermelhos. <ol start="8"><li> Centrifugar a 450 xg durante 10 min a 4 ° C. Delicadamente, desprezar o sobrenadante. Dissociar o sedimento em 20 ml de DMEM completo que foi aquecido a 37 ° C. </li><li> Transferir as células dissociadas em duas placas de Petri (100/20 mm). Incubar durante 4 horas a 37 ° C. </li><li> Recolhe-se os sobrenadantes em tubos de 50 ml à temperatura ambiente. Rejeitar os pratos que contêm os macrófagos residentes. </li></ol> Nota: O objetivo deste passo é eliminar o marro osso residentemacrófagos w por sua capacidade de aderir ao plástico tratados com cultura. Estes macrófagos residentes podem ser usados ​​em outras experiências. <ol start="11"><li> Centrifugar os sobrenadantes recolhidos a 450 xg durante 10 min a 4 ° C. Desprezar o sobrenadante. </li><li> Dissociar suavemente o sedimento em 10 ml de DMEM completo contendo 15% de sobrenadante de células L929. Filtrar as células através de um coador de células de 40 mM de nylon. </li><li> Recuperar o filtrado. Adicionar o filtrado recolhido (10 ml) a 140 ml de DMEM completo que foi suplementado com 15% de meios de células L929. </li><li> Distribuir 10 ml da suspensão de células por placa de Petri (15 placas de Petri, 100/20 mm). Incubar as células a 37 ° C, 5% de CO 2. </li><li> Crescer as células durante 3 dias </li><li> Adicionar 10 ml de DMEM completo que foi suplementado com 15% L929. Incubar as células durante 4 dias adicionais. </li></ol> Nota: Monitorar periodicamente o crescimento de células com um microscópio invertido (passos 3,14-3,16). Macrófagos aderentes seráobservado após 3 dias de cultura. 4. BMDMs Colheita <ol><li> Remover o sobrenadante. Lavar BMDMs 2 vezes com DMEM completo </li><li> Adicionar 5 ml de DMEM completo que foi aquecido a 37 ° C. Retire BMDMs raspando suavemente com um policial de borracha. </li><li> Recolhe BMDMs em tubos de 50 ml e centrifugar a 450 xg durante 10 min. Suavemente dissociar os sedimentos celulares em 20 ml de DMEM completo. </li><li> Contagem BMDMs na presença de azul de tripano (não houve mortalidade de mais de 10% devem ser observados). </li></ol> Nota: Em geral, cerca de 6-7,5 x 10 7 macrófagos são obtidos a partir de 15 placas de Petri (100/20 mm) dos macrófagos. Há cerca de 4-5 x 10 6 macrófagos / placa de Petri (100/20 mm). <ol start="5"><li> Prepare BMDMs conforme necessário para o experimento. Depois de 16 horas em meio completo a 37 ° C, 5% de CO 2, macrófagos vai novamente aderir ao suporte. </li></ol> 5. Armazenar BMDMs <ol><li> Colete BMDMs isolados (passo 4.3). Centrifugar a 450 xg durante 10 min. Nota: BMDMs podem ser congeladas em nitrogênio líquido. </li><li> Os sedimentos de células ressuspender em meio de congelação consistindo em 10% de DMSO e 90% de FCS a uma concentração final de 4 x 10 6 células / ml e pipeta de 1 ml em cada ampola. </li><li> Congelar as células a uma taxa de arrefecimento de 1 ° C / min. Após 24 horas, transferir a ampola a um contentor de azoto líquido para o armazenamento a longo prazo. </li></ol>

<ol><li>Rutherford, M. S., Witsell, A., Schook, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+generating+functionally+heterogeneous+macrophages%3A+chaos+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Leukocyte+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms generating functionally heterogeneous macrophages: chaos revisited.</a> J. Leukocyte Biol. 53, 602-618 (1993).</li>
<li>Van Furth, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aVan+Furth%2C+R+%22Inflammation%3A+Basic+Principles+and+Clinical+Correlates%22">Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates</a>. Gallin, J. I., Goldstein, I. M., Snyderman, R. 112, Raven Press. 325-336 (1992).</li>
<li>Adams, D., Halmiton, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAdams%2C+D+%22Inflammation%3A+Basic+Principles+and+Clinical+Correlates%22">Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates</a>. Gallin, J. I., Goldstein, I. M., Snyderman, R. 112, Raven Press. 325-336 (1992).</li>
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<li>Underhill, D. M., Ozinsky, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phagocytosis+of+microbes%3A+complexity+in+action%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Phagocytosis of microbes: complexity in action.</a> Annu. Rev. Immunol. 20, 825-852 (2002).</li>
<li>Castagna, A., Polati, R., Bossi, A. M., Girelli, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monocyte%2Fmacrophage+proteomics%3A+recent+findings+and+biomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Monocyte/macrophage proteomics: recent findings and biomedical applications.</a> Expert Rev. Proteomics. 9, 201-215 (2012).</li>
<li>Benoit, M., Desnues, B., Mege, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+polarization+in+bacterial+infections%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Macrophage polarization in bacterial infections.</a> J. Immunol. 181, 3733-3739 (2008).</li>
<li>Barry, A. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+stimulation+of+p38alpha-MAPK%2FVps41-HOPS+by+LPS+from+pathogenic+Coxiella+burnetii+prevents+trafficking+to+microbicidal+phagolysosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Impaired stimulation of p38alpha-MAPK/Vps41-HOPS by LPS from pathogenic Coxiella burnetii prevents trafficking to microbicidal phagolysosomes.</a> Cell Host Microbe. 12, 751-763 (2012).</li>
<li>Henry, R. M., Hoppe, A. D., Joshi, N., Swanson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+uniformity+of+phagosome+maturation+in+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The uniformity of phagosome maturation in macrophages.</a> J. Cell Biol. 164, 185-194 (2004).</li>
<li>Sundaramurthy, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+Chemical+and+RNAi+Multiparametric+Profiles+Identifies+Triggers+of+Intracellular+Mycobacterial+Killing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Integration of Chemical and RNAi Multiparametric Profiles Identifies Triggers of Intracellular Mycobacterial Killing.</a> Cell Host Microbe. 13, 129-142 (2013).</li>
<li>Boltz-Nitulescu, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+rat+bone+marrow+cells+into+macrophages+under+the+influence+of+mouse+L929+cell+supernatant%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Leukocyte+Biol%22%5BJournal%5D)">Differentiation of rat bone marrow cells into macrophages under the influence of mouse L929 cell supernatant.</a> J. Leukocyte Biol. 41, 83-91 (1987).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O protocolo aqui descrito detalha um método para produzir grandes números de BMDMs. BMDM são células primárias e têm a função biológica e as propriedades dos macrófagos diferenciados a partir de monócitos, porque há madura, em contraste com as linhas celulares de macrófagos, que são imaturos. BMDMs podem ser utilizados para o rastreio genético (RNAi), a triagem de drogas, estudos funcionais, estudos de interação patógeno-hospedeiro e muitas outras áreas de investigação. O procedimento aqui a...

Um aspecto importante da função dos macrófagos é o seu papel na imunidade inata e adaptativa. Devido à sua capacidade de fagocitar partículas inertes, bactérias ou parasitas, os macrófagos são a primeira linha de defesa contra os invasores externos. Uma vez internalizado, micróbios são degradados dentro de fagolisossomas. Os macrófagos também enviam sinais de recrutamento para e antígenos presentes a outras células do sistema imunológico, como os linfócitos T. Os macrófagos são derivados dos monócitos. Os monócitos surgem na medula óssea a partir de células-tronco mielóides e migrar para o sangue periférico e vários tecidos, onde eles diferenciam-se em macrófagos. Estima-se que um rato adulto saudável contém aproximadamente 10 8 macrófagos que são distribuídos ao longo do corpo em vários órgãos e tecidos (Tabela 1) 1,2. Os macrófagos exibem grande diversidade fenotípica e funcional por causa de sua capacidade de se adaptar ao seu microambiente 3,4. O mais importante macrophage propriedade é a sua actividade microbicida, a qual é definida pela sua capacidade de fagocitose de micróbios e as destroem. A resposta fagocítica está definido pela activação de redes de sinalização complexas que são estimulados por contacto microbiana, assim, para modular a expressão de genes de macrófagos de forma apropriada em resposta a diversos estímulos. Após a fagocitose, os micróbios são eliminados em uma estrutura chamada fagolisossomo, no entanto, muitos micróbios patogénicos têm desenvolvido estratégias para subverter a função microbicida dos macrófagos 5. A diversidade de mecanismos de subversão que são utilizadas por diferentes espécies microbianas é uma prova da complexidade do processo de fagocitose 6 e fagolisossomo biogênese. As doenças infecciosas são os principais problemas de saúde humana, e vários mecanismos e moléculas de participar de atividades antimicrobianas de macrófagos. Além disso, os alvos das propriedades microbicidas que são sequestradas por micróbios permanecem desconhecidos, assim, existe uma mensagemxplosion de interesse nos aspectos evolutivos, genéticos e bioquímicos de interação patógeno-hospedeiro, que renovou a atenção científica sobre macrófagos. Atualmente, a maioria das pesquisas no campo é feito em macrófagos linhagens celulares, que diferem de macrófagos primários na atividade fagocitária, a produção de citocinas e da regulação do burst oxidativo. Além disso, eles são menos adequados para microscopia. Investigar a interação macrófagos-patógenos é recomendado o uso de macrófagos primários, tais como medula macrófagos derivados (BMDMs), que apresentam características mais fisiológicas. Além disso, é possível trabalhar em BMDMs geneticamente modificados, porque estes macrófagos pode ser isolado directamente a partir de ratinhos transgénicos e, com a disponibilidade de novas tecnologias, tais como a transfecção lentiviral, o perfil de expressão do gene podem ser alterados por sobre-expressão do gene ou ARN de interferência. Aqui, descrevemos um procedimento para diferenciar murino osso marrow em macrófagos que irão proporcionar um grande número de macrófagos em 7 dias para várias análises funcionais, como a proteômica 7, 8 transcriptômica, tráfico intracelular estuda 9, estudos dinâmicos 10, telas genéticos (RNAi) e triagem de drogas 11.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>21969-035</td><td></td></tr><tr><td>Soro de bezerro fetal</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>10270</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>15070</td><td></td></tr><tr><td>Glutamina</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>PBS (10x)</td><td>Lonza</td><td>BEM515F</td><td></td></tr><tr><td>Lise de glóbulos vermelhos buffer</td><td>Sigma</td><td>R7757</td><td></td></tr><tr><td>Filtro de célula 70 &mu; m Nylon</td><td>BD Falcon</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Filtro de célula 40 &mu; m Nylon</td><td>BD Falcon</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de 50 ml</td><td>qualquer fornecedor</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de 15 ml</td><td>Qualquer fornecedor</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Placas de Petri (100/20 mm)</td><td>Qualquer fornecedor</td><td>n/a</td> Placas de Petri <td>tratadas com cultura</td></tr><tr><td>(35/10 mm)</td><td>Qualquer fornecedor</td><td>n/a</td><td></td></tr></tbody></table>

medula Óssea derivadas de macrófagos produção

Bone Marrow-derived Macrophage Production

Os macrófagos são componentes críticos das respostas imune inata e adaptativa, e eles são a primeira linha de defesa contra invasores estrangeiros por causa de suas poderosas atividades microbicidas. Os macrófagos são amplamente distribuído por todo o corpo e estão presentes nos órgãos linfóides, fígado, pulmões, tracto gastrointestinal, sistema nervoso central, ossos e pele. Por causa da sua repartição, que participam numa vasta gama de processos fisiológicos e patológicos. Os macrófagos são células altamente versáteis que são capazes de reconhecer alterações do microambiente e para manter a homeostase do tecido. Numerosos agentes patogénicos desenvolveram mecanismos para usar macrófagos como cavalos de Tróia para sobreviver, replicam em, e infectam os seres humanos e animais e para propagar ao longo do corpo. A recente explosão de interesse em aspectos evolutivos, genéticos e bioquímicos de interação patógeno-hospedeiro renovou atenção científica sobre macrófagos. Aqui, descrevemos umProcesso para isolar e cultivar macrófagos de medula óssea de murino que irá proporcionar um grande número de macrófagos para estudar interacções hospedeiro de organismos patogénicos, assim como outros processos.

O objectivo deste método é obter facilmente um grande número de macrófagos em poucos dias. A preparação de células da medula óssea é ilustrada na Figura 1. Ossos da perna foram coletadas e esmagado num almofariz. Uma vez que os macrófagos residentes foram removidos a partir da preparação de células de medula óssea, células da medula óssea foram incubadas com GM-CSF (Dia 0). Após 3 dias, as células, que foram rodada e não aderentes antes da cultura, começam a diferenciar-se em macrófagos e aderir <strong...

Os macrófagos têm sido reconhecidos como um componente crítico das respostas imune inata e adaptativa. A recente explosão de conhecimentos relativos aos aspectos evolutivos, genéticos e bioquímicos da interação entre macrófagos e micróbios renovou atenção científica para macrófagos. Este artigo descreve um método para diferenciar macrófagos de medula óssea de ratinho.

Medula Óssea derivadas de macrófagos Produção

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar macrófagos a partir de culturas celulares derivadas de medula óssea e urina. Isso é realizado primeiramente por meio da extração da medula óssea das patas traseiras de camundongos. Na segunda etapa, os macrófagos residentes na medula óssea são removidos e, em seguida, as células da medula óssea são cultivadas sob condições que induzem a diferenciação em macrófagos.Em seguida, quando as células da medula óssea tiverem se diferenciado em macrófagos, elas podem ser coletadas para análise experimental. Em última instância, a microscopia confocal pode ser utilizada para demonstrar a localização do LPS bacteriano dentro de macrófagos derivados da medula óssea, em compartimentos ácidos. A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como o cultivo de linhagens celulares de macrófagos, é que um grande número de macrófagos primários pode ser obtido.A demonstração visual do método é essencial, pois os passos de autoprodução são difíceis de aprender e exigem prática. Para obter sucesso, desinfete a pele de um camundongo eutanasiado com etanol 70%. Faça uma incisão no topo de cada pata traseira e puxe a pele em direção ao pé para expor o músculo. Em seguida, corte as patas traseiras utilizando tesoura e pinça estéreis.Para remover a pele, coloque as pernas em uma placa de Petri estéril de 35 milímetros contendo cinco mililitros de PBS frio estéril com gelo. Remova qualquer pele e músculo aderidos aos ossos e, em seguida, transfira os ossos para uma nova placa de Petri estéril contendo cinco mililitros de gelo.PBS frio e estéril. Lave os ossos duas vezes com mais cinco mililitros de PBS e, em seguida, transfira-os para um almofariz estéril contendo cinco mililitros de gelo. PBS frio e estéril.Agora, corte a tíbia do fêmur na articulação e use um pistilo para esmagar suavemente os ossos. Colete o sobrenadante em tubos de 15 mililitros gelados três vezes. Em seguida, filtre a suspensão tecidual através de um filtro de células de náilon de 70 mícrons.Para remover os fragmentos sólidos, centrifugue o filtrado e descarte cuidadosamente o sobrenatante. Dissocie o pellet com tampão de lise de eritrócitos, adicionando 20 mililitros de DMEM completo gelado após 30 segundos para interromper a reação após a centrifugação das células; em seguida, suspenda o pellet em 20 mililitros de DMEM completo a 37 graus Celsius e divida a suspensão celular entre duas placas de Petri de 100 milímetros. Incube as placas por quatro horas a 37 graus Celsius e, então, colete os sobrenatantes em tubos de 50 mililitros à temperatura ambiente.Após centrifugar os sobrenadantes, re-suspenda o pellet em 10 mililitros de DMEM completo suplementado com o sobrenadante de células L 9 29 previamente preparado e, em seguida, filtre as células através de um filtro de nylon de 40 mícrons. Adicione o filtrado a 140 mililitros de DMEM completo e meio de células L 9 29, e distribua então 10 mililitros da suspensão celular por placa em 15 placas de Petri de 100 milímetros. Após incubar as células por três dias a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono com 10 mililitros de DMEM completo mais sobrenadante de L 9 29, incube as células por mais quatro dias.Monitore periodicamente o crescimento celular com um microscópio invertido para colher os macrófagos derivados da medula óssea; primeiro aspire e descarte o sobrenadante. Em seguida, lave as placas de Petri duas vezes com DMEM completo. Depois, adicione cinco mililitros de DMEM completo a 37 graus Celsius e use um espátula de borracha para destacar suavemente as células, colete os macrófagos derivados da medula óssea em tubos de 50 mililitros e, então, centrifugue as células.Re-suspenda os pellets em 20 mililitros de DMEM completo. Por fim, conte as células pelo método de exclusão com azul de tripano. Utilizando este método, grandes números de macrófagos podem ser obtidos em apenas alguns dias após o isolamento e semeadura das células da medula óssea não aderentes, redondas, excluindo os macrófagos residentes da medula óssea, conforme acabou de ser demonstrado.Essas células precursoras representativas de MDM-B foram incubadas com G-M-C-S-F. Após três dias, as células começaram a aderir e a se diferenciar em macrófagos. Após sete dias, observou-se uma monocamada confluente de macrófagos derivados da medula óssea.A análise citométrica de fluxo para F four 80 e H-L-A-D-R revelou que os macrófagos derivados da medula óssea expressaram ambos os marcadores, confirmando a diferenciação das células da medula óssea em macrófagos. Para avaliar as capacidades ácidas do PHA nos macrófagos derivados da medula óssea, foi monitorada a capacidade das células de internalizar esferas de látex, conforme esperado.O número de microesferas por célula foi determinado ao longo do tempo para avaliar seu potencial endocítico. Os macrófagos derivados da medula óssea também foram cultivados em co-cultura com Coxiella. Observou-se que o LPS de Burnett eye em vermelho estava localizado em um compartimento que abriga a proteína de membrana associada aos lisossomos um em azul, mas não a catepsina D em verde, demonstrando que o LPS estava presente nos endossomos tardios, os quais não são capazes de se fundir com lisossomos, conforme esperado para macrófagos derivados da medula óssea.As interações entre patógenos bacterianos foram analisadas mais detalhadamente por meio de sua infecção pelo olho TMA Wiley. Como esperado, as bactérias em vermelho não estavam localizadas no compartimento que contém KPS e D, que aparece novamente em verde. Nesse imunoblot representativo, foram avaliados os caminhos de transdução de sinal em macrófagos derivados de medula óssea, demonstrando que macrófagos derivados de medula óssea, semelhantes aos macrófagos teciduais isolados, aumentam os níveis de p38 alfa map quinase fosforilada em resposta à estimulação com LPS de esia coli.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais no campo da microbiologia celular, como em qual compartimento intracelular o microrganismo se localiza.

bone-marrow-derived-macrophage-production

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Neste vídeo, demonstramos a ativação de macrófagos derivados da medula óssea em resposta ao lipopolissacarídeo bacteriano e imunoglobulina intravenosa.

Ativação de macrófagos derivados de medula óssea de camundongo em resposta a anticorpos

O artigo descreve a adaptação prontamente...

Investigação de polarização de macrófagos Usando medula macrófagos derivados

Apresenta-se um protocolo simples e eficiente para a geração de macrófagos humanos. Casacos de Buffy são processados ​​por dupla centrifugação em gradiente de densidade e monócitos isolados são então diferenciado para macrófagos em revestidos de teflon de cultura de células de sacas. Isso maximiza o rendimento de macrófagos e facilita a colheita de células para experiências posteriores.

Isolamento de monócitos humanos por duas vezes centrifugação em gradiente e sua diferenciação de macrófagos em revestidos de teflon Cultura de Células Bags

Descrevemos aqui um protocolo simples para isolar macrófagos peritoneais murinos. Este procedimento é seguido pela extração de RNA para realizar a análise da expressão gênica após a estimulação de receptores do tipo Toll.

Isolamento de Murino macrófagos peritoniais de Cumprir a análise de expressão gênica Após Toll-like receptors Estimulação

A reprogramação metabólica é uma característica e pré-requisito para a polarização de macrófagos M1 e M2. Este manuscrito descreve um ensaio para a medição de parâmetros fundamentais de glicólise e função mitocondrial em macrófagos derivados da medula óssea de camundongos. Esta ferramenta pode ser aplicada para investigar como fatores específicos afetam o metabolismo e o fenótipo do macrófago.

Caracterização metabólica de Polarizada M1 e M2 macrófagos da medula óssea derivadas usando análises em tempo real do fluxo extracelular

Células da medula óssea cultivadas com fator estimulador de colônias de macrófagos granulócitos (GM-CSF) geram uma cultura heterogênea contendo macrófagos e células dendríticas (DCs). Este método destaca o uso da ligação de MHCII e hialuronano (HA) para diferenciar macrófagos das DCs na cultura GM-CSF. Os macrófagos nesta cultura têm muitas semelhanças com os macrófagos alveolares.

Geração e identificação de GM-CSF macrófagos derivados e dendríticas células alveolares do tipo de ratinho de Medula Óssea

Um protocolo é apresentado para cultura de células de macrófagos derivados de monócitos humanos diferenciados pelo fator estimulador de colônias de macrófagos (M-CSF). O protocolo utiliza a criopreservação de monócitos juntamente com sua diferenciação em massa em macrófagos. Em seguida, os macrófagos colhidos podem ser semeados em poços de cultura nas densidades celulares necessárias para a realização de experimentos.

Cultura de macrófagos macrófagos Colony estimulante fator diferenciado Humano monócitos derivados

Este protocolo descreve a geração robusta de macrófagos a partir de células-tronco pluripotentes induzidas pelo homem, e métodos para sua caracterização subseqüente. A expressão do marcador de superfície celular, a expressão genética e os ensaios funcionais são usados para avaliar o fenótipo e a função desses macrófagos derivados do iPSC.

Produção e Caracterização de Macrófagos Humanos de Células-Tronco Pluripotentes

Este protocolo foi estabelecido para cultivar tetrahidrobiopterina (BH4)- e sintetizador de óxido nítrico indutível (iNOS)-deficiente macrófagos murinos para estudar biologia no-redox. O estudo tem como foco a redução da contaminação potencial do BH4 e de outros artefatos encontrados em métodos tradicionais de isolamento e cultura que podem confundir desfechos experimentais e interpretação dos resultados.

Isolamento e Cultura In vitro de Macrófagos Derivados da Medula Óssea para o Estudo da Biologia NO-Redox

O presente protocolo descreve o isolamento e a cultura de macrófagos derivados da medula óssea de camundongos.

Isolamento e cultura de macrófagos derivados da medula óssea de camundongos

Este protocolo descreve um método não enzimático e direto para isolar células da medula óssea de camundongos neonatais de 7 a 9 dias de idade e gerar macrófagos diferenciados usando um sobrenadante de células L929 como fonte de fator estimulador de colônias de granulócitos (M-CSF). Os macrófagos derivados da medula óssea foram posteriormente analisados quanto aos antígenos de superfície F4/80, CD206, CD11b e competência funcional.

Isolamento da medula óssea de camundongos neonatais e preparação de macrófagos derivados da medula óssea

Aprenda a diferenciar macrófagos a partir de medula óssea de camundongo para estudos de imunologia e biologia celular. Este método permite obter grandes quantidades de macrófagos primários para análises experimentais detalhadas.

Medula Óssea derivadas de macrófagos Produção

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