Name: Na migração celular in vitro e invasão Ensaios (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 55 s
Description: Aprenda ensaios de migração e invasão celular in vitro usando ensaio de fechamento de ferida e transwell. Estes métodos acessíveis permitem estudar a dinâmica da motilidade celular em biologia do câncer e imunologia.

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Os autores agradecem a Mike Myles, Sam Saunders e C.W. Elton da ECU Multimedia & Technology Services por fornecer assistência na produção de vídeo. Reconhecemos o apoio do Centro de Biotecnologia da Carolina do Norte, Golfers against Cancer, Brody Brothers Endowment Fund, American Heart Association e ECU / Vidant Cancer Research and Education Fund (LVY e MJR).

1. Cultura Celular Wound Encerramento Assay <ol><li> Separar as células a partir da placa de cultura de tecido usando 0,25% de solução de tripsina-EDTA. Células de pellets em um tubo de 15 ml por centrifugação, aspirar o sobrenadante e as células em meios de cultura re-suspensão. Placa o número adequado de células em uma placa de 6 poços para 100% de confluência em 24 horas. Nota: Os testes podem ser necessários para determinar o tempo e o número de células para atingir 100% de confluência devido ao tipo de célula e a dimensão do bem a ser utilizado (por exemplo, 1 x 10 6 B16F10 células de melanoma são semeadas em um poço de uma 6 poços da placa, 24 horas antes da geração da ferida). Alternativamente, pode ser utilizado de 12 poços ou de 24 poços, placas. Nota: Se estiver disponível, as células podem ser semeadas em uma cultura de inserção (a partir de LLC Ibidi) em uma placa de cultura de tecidos tratados fazendo a ferida pré-fundido. Uma cultura-inserção pode proteger a superfície da placa de cultura de tecido de danos por a ponta da pipeta. Se uma Cultura-Insert é usado passo omitir1.2. </li><li> Em um ambiente estéril (tipicamente um capuz biossegurança) utilizar uma pipeta de ponta de 200 ul para pressionar firmemente contra o topo da placa de cultura de tecidos e fazer rapidamente uma ferida vertical descendente através da monocamada de células. Uma ponta de pipeta de tamanho diferente podem ser usadas para reduzir o tamanho da ferida, que é desejado. Não use força excessiva contra a placa de cultura de tecidos com a ponta da pipeta, pois pode danificar a superfície. Se a ferida é pré-fundido, este passo pode ser omitido. </li><li> Aspirar cuidadosamente a mídia e os restos celulares. Lentamente, adicionar meios de cultura suficiente contra a parede do poço para cobrir o fundo do poço e evitar separar células adicionais. Após a geração e inspeção da ferida uma visão inicial devem ser tomadas. Colocar a placa de cultura de tecidos numa incubadora à temperatura adequada e concentração de CO 2 (tipicamente 37 ° C e 5% CO 2). </li><li> Em vários momentos, por exemplo, a cada 3 horas, retire a placa da incubatou e colocá-lo sob um microscópio invertido para tirar uma foto instantâneo e para verificar o fechamento da ferida. Se microscopia de lapso de tempo está disponível, tirar uma foto a cada X número de minutos (normalmente começando com a cada 5 minutos) para qualquer duração de tempo em uma temperatura e CO 2 câmara controlada. Dependendo do tipo de célula, o tempo de fechamento da ferida pode variar. </li><li> Para analisar os resultados de imagens em fotografias, medir a distância de um lado da ferida para o outro usando uma barra de escala. Analisar e claramente presente o fechamento da ferida ao longo do tempo através de um gráfico de dispersão ou gráfico de barras, por exemplo, Figura 1. </li><li> Para analisar o lapso de tempo imagens, importar as fotos para o software ImageJ (disponível gratuitamente no http://rsb.info.nih.gov/ij/) para fazer um vídeo. Para fazer isso ImageJ aberto, clique em Arquivo, Importar e, em sequência de imagens. Localize o arquivo com as imagens; clique na primeira foto no arquivo. Salve vídeo, escolhendo Arquivo, Salvar como, e AVI. Células migratórias individuais podem ser observadas a characterize movimento direcional. Além disso, as características morfológicas, tais como formação lamellipodia e arrastando retração da borda podem ser estudados, bem como (Figura 2 e de vídeo suplementar). </li></ol> 2. Transwell migração celular e invasão de Ensaio <ol><li> Em um ambiente estéril (tipicamente um capuz biossegurança) separar as células da placa de cultura de tecido usando um tampão de dissociação não enzimática de células ou 0,25% de solução de tripsina-EDTA, as células por centrifugação, e aspirar os meios de comunicação existente deixando as células peletizadas. Re-suspender as células em meio de cultura celular livre de soro contendo 0,1% de BSA (albumina sérica bovina). Nota: Dependendo da linhagem de células a ser investigado 0,25% Tripsina-EDTA pode afectar a migração celular e invasão devido à clivagem de diversos receptores na superfície das células 17. Nota: o número de células por ml depende do tamanho das células. Podem ser necessários mais testes para descobrir a densidade de semeadura que provides os melhores resultados. Normalmente 1 x 10 6 células / ml é um bom ponto de partida para a maioria dos tipos de células ao usar a 24 poços transwell inserir. Existe uma gama de tamanhos de pastilhas transwell e o número de células adicionadas deve ser ajustado em conformidade para. </li><li> Placa de 100 ul de solução de células no topo da membrana de filtro em um transwell insert e incubar durante 10 minutos a 37 ° C e 5% de CO2 para permitir que as células se estabelecer. Nota: O tamanho específico dos poros da membrana Transwell utilizado é dependente do tamanho individual das células na amostra. Por exemplo, se as células forem muito pequenas que podem passar através dos poros, sem a necessidade de facilitar a migração ou se elas forem muito grandes não podem passar através dos poros. Existem várias inserções Transwell com tamanho de poro que variam de 3 mM, 5 mM, e 8 mm para os ensaios de migração celular. As inserções Transwell estão comercialmente disponíveis a partir de companhias tais como a Corning. Nota: O transwell migration ensaio pode ser facilmente modificado para realizar o ensaio de invasão celular. Para fazer isso, adicionar matriz extracelular (ECM) materiais na parte superior da membrana transwell e depois adicionar células no topo da ECM. Por exemplo, Matrigel é descongelado em gelo e liquefeito, e, em seguida, 30-50 mL de Matrigel é adicionada a um 24 bem transwell inserir e solidificado numa incubadora a 37 ° C durante 15-30 minutos de modo a formar uma fina camada de gel. Solução de células é adicionado no topo do revestimento de Matrigel para simular invasão através da matriz extracelular. Nota: Existem diferenças distintas entre a migração de células transwell e os ensaios de invasão celular transwell. O ensaio de migração celular transwell mede a capacidade quimiotática de células em direção a um quimio-atrativo. O ensaio de invasão celular transwell, no entanto, medidas, tanto a quimiotaxia de células ea invasão das células através da matriz extracelular, um processo que é comumente encontrada em metástase do câncer ou o desenvolvimento embrionário. </li><li> Com uma pipeta, muito carefully adicionar 600 ul do quimio-atractor desejado na parte inferior da câmara inferior de uma placa de 24 poços. Adicione o quimio-atrativo, sem mover a inserção transwell e evitar a geração de bolhas. Certifique-se de que o líquido quimio-atractor no poço inferior entra em contacto com a membrana na parte superior do poço, para formar um gradiente quimiotáctica. O tempo de incubação está dependente do tipo de célula e do quimio-atractor de ser utilizado. Nota: podem ser necessários mais testes para determinar o período de incubação. Nota: Para as células aderentes, as células que migraram vai anexar o outro lado da membrana de 1,8. A quantificação de células que migraram pode ser realizado seguindo os passos 2,4-2,8 (2,4-2,8 passos não necessitam de ser realizadas num ambiente estéril). Para as células não aderentes, as células migraram vai cair na mídia na câmara baixa. O número de células que migraram podem ser contadas usando um hemocitómetro ou citómetro de fluxo 5. </li><li> Remova a inserção da placa transwell. Use um aplicador com ponta de algodão quantas vezes for necessário para remover cuidadosamente a mídia e as células restantes que não migraram a partir do topo da membrana sem danificá-lo. </li><li> Adicionar 600-1.000 ul de etanol a 70% dentro de um poço de uma placa de 24 poços. Coloque a inserção transwell em etanol a 70% durante 10 minutos, para permitir a fixação das células. Retirar transwell insert a partir da placa de 24 poços e utilizar um aplicador com ponta de algodão para remover o etanol remanescente a partir da parte superior da membrana. Permitir que a membrana transwell para secar (tipicamente 10-15 minutos). </li><li> Adicionar 600-1.000 ul de 0,2% de violeta de cristal em um poço de uma placa de 24 poços e posicionar a membrana em que para a coloração. Incubar à temperatura ambiente durante 5-10 minutos. </li><li> Suavemente remover o violeta cristal a partir do topo da membrana com uma ponta de pipeta ou aplicador com ponta de algodão. Com muito cuidado, para evitar lavar as células fixas, mergulhe a membrana em água destilada como quantas vezes for necessário para remover o excesso viole cristalt. Permitir que a membrana Transwell para secar. </li><li> Vista sob um microscópio invertido e contar o número de células em diferentes campos de visão, para obter um valor médio de células que migraram através da membrana para a quimio-atractor e ligados no lado inferior da membrana (Figura 3). </li></ol>

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<li>Huang, H. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trypsin-induced+proteome+alteration+during+cell+subculture+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Sci%22%5BJournal%5D)">Trypsin-induced proteome alteration during cell subculture in mammalian cells.</a> J. Biomed. Sci. 17, (2010).</li>
<li>Cortesio, C. L., Boateng, L. R., Piazza, T. M., Bennin, D. A., Huttenlocher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calpain-mediated+proteolysis+of+paxillin+negatively+regulates+focal+adhesion+dynamics+and+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Calpain-mediated proteolysis of paxillin negatively regulates focal adhesion dynamics and cell migration.</a> J. Biol. Chem. 286 (12), 9998-10006 (2011).</li>
<li>Wehrle-Haller, B., Imhof, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin+microtubules+and+focal+adhesion+dynamics+during+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Biochem.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Actin microtubules and focal adhesion dynamics during cell migration.</a> Int. J. Biochem. Cell Biol. 35 (1), 39-50 (2003).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

A migração celular é um aspecto importante para estudar na pesquisa do câncer e também pode ser aplicado a estudos de cura de desenvolvimento, imunológicos e ferida. O ensaio de cultura de células de feridas e de fecho da migração celular e invasão transwell ensaios de revelar a informação detalhada do comportamento migratório das células e pode ser utilizado para investigar os mecanismos moleculares da migração celular 1,2,10,14. Nosso estudo utilizou estes testes de motilidade celular para determinar as cap...

Motilidade é uma característica essencial de células vivas. A migração celular está envolvido na concepção de vida, o desenvolvimento embrionário, a resposta imunitária, e muitos processos patológicos, tais como a metástase do cancro e inflamação 1-9. Portanto, métodos para estudar o comportamento migratório das células são ferramentas de pesquisa muito útil para uma vasta gama de disciplinas em ciências biomédicas, biologia, bioengenharia, e áreas afins. O estudo da migração de células na pesquisa do câncer é de particular interesse como a principal causa de morte em pacientes com câncer está relacionado à progressão metastática. Para que o câncer se espalhar e disseminar por todo o corpo, as células cancerosas devem migrar e invadir através da matriz extracelular (ECM), intravasate em circulação no sangue, anexar a um local distante, e, finalmente, extravasar para formar focos distantes 1,10-12. Vários métodos biológicos podem ser utilizados para estudar estes eventos em detalhe. A cultura de células ferida fechado umd a migração e invasão transwell ensaios são amplamente utilizados na comunidade científica 1,10. Estes testes podem fornecer os dados necessários que possam permitir uma compreensão de como um tipo particular de célula podem migrar espontaneamente ou responder a uma quimioterapia atrativo e direcionalmente migrar em direção a ela. Vários fenótipos migradores foram descritos. As células podem migrar de uma forma única célula, como visto em mesenquimais ou movimento amebóide-like ou pelo movimento multicelular rotulado migração coletiva ou célula streaming de 13. O método de movimento usado em células móveis podem ser facilmente observado utilizando o ensaio de encerramento de feridas de cultura de células. Entre as várias formas de estudar a migração de células, o ensaio de encerramento de feridas de células é um dos mais simples. Este método é útil para determinar a capacidade de migração de massas de células inteiras. Quando mais um passo que pode ser usado para observar as características morfológicas da célula individual durante a migração 14. Após a análise do fechamento da ferida muitos fenótipos pode ser revelado. Medindo a distância fechado ao longo do tempo, quando comparado com um controle pode revelar alterações de migração específica ou um fenótipo migratório prejudicada que era desconhecida anteriormente. Além disso, a formação única lamellipodium celular, cauda retração, e movimento direcional pode dar pistas para o que pode ser prejudicada ou melhorada nas células de interesse 14. A migração transwell e ensaios de invasão pode ser utilizada para analisar a capacidade das células individuais para responder direcionalmente para vários quimio-atractores se são quimiocinas, factores de crescimento, lípidos, ou nucleótidos 4,5,8,15,16. Pode também avaliar a capacidade migratória diferencial devido à sobre-expressão de um receptor de 1,14. Estes ensaios também pode ser utilizado para identificar e caracterizar os reguladores-chave da migração de células tais como a família Rho de GTPases pequenas 2. Na sequência destes curto e de fácil acetestes veis, o modo de migração celular e a capacidade de uma célula para invadir numa matriz 3-D também pode ser determinada.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco' s meio de águia modificado (DMEM)</td> <td>Gibco</td><td>11995-073</td><td></td></tr><tr><td>Soro bovino fetal (FBS)</td> <td>Gemini</td><td>100106</td><td></td></tr><tr><td>albumina de soro bovino (BSA)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>A4503-50G</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina EDTA 0,25%</td> <td>Gibco</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco ' s solução salina tamponada com fosfato (DPBS)</td><td>Gibco</td><td>14190-250</td><td></td></tr><tr><td>Cristal violeta</td><td>Sigma</td><td>C0775-100G</td><td>Dissolvido em água a 0,2%</td></tr><tr><td>Tampão de dissociação celular</td><td>Gibco</td><td>13151-014</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora de cultura de células</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td></td><td>Modelo # 3145</td></tr><tr><td>Capuz de biossegurança SterilGARD</td><td>The Baker Company, Inc.&nbsp;</td><td></td><td>Modelo # VBM-600</td></tr><tr><td>EVOS Fl microscópio invertido</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td></td><td>Modelo # AMF-4302-US</td></tr><tr><td>Placa de cultura de tecidos</td><td>Becton Dickinson</td><td>353046</td><td>O número de catálogo varia dependendo do tipo de placa de cultura</td></tr><tr><td>Corning Transwell insert</td><td>Fisher</td><td>07-200-150</td><td>O número de catálogo varia dependendo do tamanho do poro da membrana</td></tr></tbody></table>

na migração celular in vitro e invasão ensaios

In vitro Cell Migration and Invasion Assays

A migração é uma propriedade fundamental das células vivas e crítica para o desenvolvimento normal, resposta imune e processos de doenças, como metástase e inflamação do câncer. Os métodos para examinar a migração celular são muito úteis e importantes para uma ampla gama de pesquisas biomédicas, como biologia do câncer, imunologia, biologia vascular, biologia celular e biologia do desenvolvimento. Aqui, usamos a migração e invasão de células tumorais como exemplo e descrevemos dois ensaios relacionados para ilustrar os métodos comumente usados e facilmente acessíveis para medir esses processos. O primeiro método é o ensaio de fechamento de ferida de cultura de células, no qual um arranhão é gerado em uma monocamada de células confluentes. A velocidade de fechamento da ferida e migração celular pode ser quantificada tirando fotos instantâneas com um microscópio invertido regular em vários intervalos de tempo. Um comportamento migratório celular mais detalhado pode ser documentado usando o sistema de microscopia de lapso de tempo. O segundo método descrito neste artigo é o ensaio de migração e invasão de células transwell que mede a capacidade de motilidade celular e invasividade em direção a um gradiente quimio-atrativo. É nosso objetivo descrever esses métodos de maneira altamente acessível para que os procedimentos possam ser realizados com sucesso em laboratórios de pesquisa, mesmo apenas com a configuração básica de biologia celular.

O ensaio de encerramento de feridas e no ensaio de migração de células Transwell aqui apresentados foram realizadas utilizando células de melanoma de ratinho B16F10 como um sistema modelo. No ensaio de encerramento de feridas, B16F10 células foram semeadas numa placa de 6 poços de cultura de tecidos e crescidas até 100% de confluência em 24 horas. Uma ferida de aproximadamente 700 m de largura foi gerada usando uma ponteira eo fechamento da ferida (migração de células) foi gravado usando a microscopia de lapso de tempo....

Comumente usado, são descritos métodos altamente acessíveis para analisar a migração celular e invasão in vitro. O primeiro método é o ensaio de encerramento de feridas de células que mede a mobilidade celular. O segundo método é o ensaio de migração e invasão transwell que avalia o quimiotáctica e capacidade invasiva de células.

Na migração celular in vitro e invasão Ensaios

Migration is a key property of live cells and critical for normal development, immune response, and disease processes such as cancer metastasis and ...

A migração celular é um processo altamente dinâmico. É importante para diversas funções fisiológicas, como o desenvolvimento embrionário normal, a resposta imune, bem como processos de doenças. Por exemplo, metástase do câncer e inflamação.O estudo da migração celular é importante para uma ampla gama de ciências biomédicas, como biologia do câncer, imunologia, biologia celular e biologia do desenvolvimento. A migração celular pode ser dividida em quatro etapas mecanicamente distintas: extensão, formação de novas adesões, contração do corpo celular e, por fim, desprendimento da cauda. Aqui descreveremos dois métodos simples para estudar cuidadosamente a natureza dinâmica da migração celular in vitro.O primeiro método é um ensaio de cultura celular de fechamento. Este ensaio é comumente utilizado e altamente acessível para laboratórios com os equipamentos mais básicos. O ensaio de cultura celular de fechamento é um método no qual, utilizando a ponta de uma pipeta, são feitos arranhões em uma monocamada confluente de células, e a monocamada celular confluente fecha, ao longo do tempo, a ferida previamente criada.Os dinâmicas da migração celular podem ser estudadas em detalhes utilizando fotografia de lapso de tempo ou imagens instantâneas. A distância pode ser medida e, ao longo do tempo, pode-se calcular a velocidade com que as células se deslocaram. O segundo método relacionado, o ensaio de migração e invasão celular em transwell, também é altamente acessível para acompanhar o plaqueamento de células em uma membrana de transwell.Também comumente conhecido como câmara de Boyden. Suas habilidades de migração em direção a um gradiente de quimioatraente podem ser medidas. Ambos esses procedimentos experimentais altamente acessíveis são extremamente valiosos em diversas áreas de pesquisa.Capítulo dois, enclausuramento de cultura celular, ensaio. Olá, meu nome é Calvin Justice. Sou aluno de pós-graduação no laboratório da Dra. Yang do Departamento de Oncologia da Brody School of Medicine da East Carolina University.E hoje demonstrarei dois procedimentos que medem as capacidades de migração e invasão de células in vitro. Vamos agora iniciar o cultivo celular. Ensaio das células utilizadas no cultivo celular.O ensaio pode ser cultivado em placas de cultura tecidual utilizando técnicas convencionais de cultura celular. Para iniciar, aspire o meio de crescimento utilizado para cultivar as células, lave uma vez com PBS, então adicione dois mililitros de tripsina 0,25% EDTA à placa e insira-a no incubador por três minutos. Remova a placa do incubador e adicione três mililitros de DMM suplementado com 10% FBS.Remova o meio da placa e coloque-o em um tubo cônico de 15 mililitros. Centrifugue por cinco minutos a 1500 RPM. Após a centrifugação, re-suspenda as células em dois mililitros de DMM suplementado com 10% FBS.Em seguida, conte as células com um hemocitômetro. Após concluir a contagem, plaque um número de células que atinja confluência dentro de 24 horas. Coloque a placa no incubador por 24 horas para permitir a adesão e a espalhamento celular.Retire a placa do incubador e observe-a sob o microscópio para garantir que a placa esteja 100% confluente. Em seguida, na capela de segurança biológica, utilizando a ponta de pipeta com cuidado para não danificar a placa de cultura de tecidos, faça um ferimento do topo do poço até a base. Após criar o ferimento com a ponta de pipeta, aspire o meio e lave suavemente com dois mililitros de meio de crescimento.Neste caso, o DMEM suplementado com 10% FBS para remover qualquer detrito existente, mais uma vez, aspire o meio. Finalmente, adicione dois mililitros de meio de crescimento e, se disponível, insira a placa em uma câmara controlada por temperatura e CO₂ sob o microscópio. Uma capacidade de fotografia de lapso de tempo neste caso.A funcionalidade de lapso de tempo não está disponível. Tire uma foto inicial da localização da marca e do poço e coloque a placa no incubador. Se a fotografia de lapso de tempo estiver disponível, configure as funcionalidades de lapso de tempo no microscópio.Vamos definir nosso intervalo de tempo para 16 horas. Com uma imagem capturada a cada cinco minutos, após 16 horas, a placa pode ser removida da câmara e as imagens adquiridas durante todo o experimento podem ser salvas em um pen drive. Insira o USB no computador e abra o programa Image J.Clique em arquivo. Importe uma sequência de imagens. Localize as imagens que foram capturadas durante o experimento.Clique no primeiro arquivo e clique em abrir. As opções da sequência seguinte serão exibidas. Escolha a primeira imagem na sua lista de fotos e insira os incrementos necessários para o vídeo.Agora você verá as opções do leitor de vídeo. Escolha a melhor opção, experimente e clique. OK. O programa Image J agora criará um vídeo, salvará o vídeo, clique em arquivo, salve como um arquivo de vídeo ou qualquer outra opção que se adeque ao seu experimento.O vídeo pode então ser analisado no estudo celular quanto a características de migração que possam ser de interesse. As características possíveis de serem estudadas são a extensão podal La Malo, a contração do corpo celular e a liberação da cauda. Na ausência de fotografia com perda de tempo, a placa que foi colocada na incubadora por 12 a 16 horas após a imagem inicial pode ser removida.A área que foi inicialmente fotografada deve ser fotografada novamente e uma barra de escala deve ser adicionada para medições posteriores. Após medir a largura inicial do ferimento gerado na primeira foto, a largura medida em pixels deve ser convertida em micrômetros utilizando uma barra de escala. Em seguida, a largura do ferimento nas imagens finais deve ser medida em pixels na mesma área que antes, e novamente deve ser convertida em micrômetros utilizando a barra de escala.O passo final consiste em subtrair a largura final da largura inicial para obter a largura total que a ferida fechou dentro do período de tempo estipulado. A distância final de migração medida deve ser dividida pelo tempo estipulado para determinar a velocidade de fechamento em micrômetros por hora. O método de instantâneo pode ser repetido em múltiplas poças de tamanhos variados para uma análise mais quantitativa da migração celular, capítulo três, ensaio de migração celular em câmara de transwell e inovação.Para começar, você deve primeiro cultivar as células de interesse em uma placa de cultura de tecidos para o procedimento. Em seguida, lave uma vez com PBS e desprenda as células de interesse da placa de cultura de tecidos utilizando o tampão de dissociação celular ou tripsina. Além disso, sugerimos que você leia a literatura sobre como a tripsina pode afetar as células que está estudando, pois o seu uso pode influenciar seus resultados.Após a centrifugação de desanexação a 1500 RPM por cinco minutos, remova e aspire o meio existente, depois ressuspenda as células em 0,1% BSA. Abra a embalagem do inserto Transwell e coloque-o no poço projetado para o seu tamanho específico. Se você estiver realizando primeiro o ensaio de invasão Transwell, adicione matrigel na parte superior do inserto e incube por 30 minutos antes de prosseguir para a próxima etapa.Plaque 100 microlitros da solução celular sobre a membrana do transwell. Incube por 10 minutos para permitir que as células sedimentem. O número de células plaqueadas depende do tipo celular e experimentos subsequentes podem ser necessários.Para determinar esse número, utilize uma pipeta para adicionar cuidadosamente o quimioatraente desejado sob o inserto até o fundo do poço. Evite remover o inserto. O tempo de incubação depende do tipo celular.Remova o inserto de transwell após a incubação e use um aplicador de algodão quantas vezes forem necessárias para remover suavemente o meio e as células em excesso que não migraram para a membrana, a partir da superfície superior da membrana. Tenha cuidado para não danificar a membrana. Adicione de 600 a 1000 microlitros de etanol 70% na câmara inferior de um recipiente vazio.Coloque o inserto no poço com etanol a 70% e incube por 10 minutos para permitir a fixação celular. Novamente, utilize um aplicador de algodão quantas vezes forem necessárias para remover o etanol remanescente nas células que não migraram através da membrana a partir da superfície superior da membrana. Adicione de 600 a 1000 microlitros de violeta de cristal a 0,2% em um poço e posicione o inserto dentro dele para coloração celular.Incube por 10 minutos. Em geral, remova o excesso de corante cristal violeta da superfície da membrana. Em seguida, com muito cuidado para evitar a remoção das células migradas, mergulhe a membrana na água destilada tantas vezes quanto necessário para remover todo o cristal violeta remanescente.Deixe a membrana secar para visualizar as células usando um microscópio. A membrana pode ser cuidadosamente removida com o bisturi e colocada sobre uma lamínula de vidro, ou você pode observar as células com os insertos ainda no poço. Usando um microscópio invertido, deve-se tirar uma imagem de vários campos de visão.Para obter uma boa representação do número de células migradas, o número de células pode ser contado utilizando a ferramenta de contagem do Adobe Photoshop. Os dados acumulados podem ser inseridos em um gráfico de barras para a melhor representação dos seus resultados. Capítulo quatro, resultados representativos.A seguir, apresentaremos alguns resultados representativos do ensaio de cultura celular em compartimento e do ensaio de migração celular em transwell. Dois métodos relacionados para examinar a motilidade celular, descritos neste vídeo, que abordaremos iniciando com o ensaio de cultura celular em compartimento. Aqui exibimos imagens instantâneas capturadas aos 0, 4, 8 e 12 horas.Como é possível observar, após a geração da ferida, podem ser tiradas imagens e, ao longo do tempo, pode-se medir a distância de fechamento da ferida. Apresentamos nossos dados utilizando um gráfico de dispersão e, com o método previamente discutido, determinamos a velocidade de fechamento da ferida ao longo do tempo. Além disso, a migração individual de células também pode ser estudada em detalhes utilizando fotografia com lapso de tempo.Neste caso, ampliamos células individuais durante o fechamento da ferida, acompanhamos sua migração ao longo do tempo e observamos características de seu movimento, como a extensão da borda líder, a retração da cauda e o movimento geral, que podem ser examinadas em detalhes. Agora você analisará alguns resultados do ensaio de migração celular transversal. Aqui apresentamos duas imagens que foram obtidas da membrana após o ensaio de migração celular em transwell.A primeira imagem exibe os resultados sem quimioatraente, nos quais houve pouca ou nenhuma migração celular através da membrana. A segunda imagem exibe os resultados com quimioatraente, nos quais houve aumento da migração celular em direção à membrana. À direita, apresentamos os resultados da quantificação do nosso experimento utilizando um gráfico de barras com barras de erro que representam o erro padrão.Capítulo cinco, conclusão: os dados acumulados após o ensaio de fechamento celular no ensaio de migração ou invasão celular transversal revelam as capacidades de migração das células em um ambiente 2D ou 3D. Esses resultados podem ser comparados a outros resultados para potencialmente revelar dados previamente desconhecidos e também podem correlacionar-se com outros testes bioquímicos. Esses dois ensaios relacionados e comumente utilizados são valiosos e facilmente acessíveis nas configurações mais básicas de laboratórios de biologia celular.Agradecemos por se juntar a nós hoje e desejamos boa sorte em seus futuros empreendimentos científicos.

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