Name: Plataforma microfluídica para medição de quimiotaxia de neutrófilos não transformados Sangue Total (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 13 s
Description: Aprenda a medir quimiotaxia de neutrófilos humanos diretamente de uma gota de sangue total usando uma plataforma microfluídica. Este método permite avaliar rapidamente a função imunológica celular em contexto fisiológico.

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O apoio dos Institutos Nacionais de Saúde (concede GM092804, DE019938) e Shriners Hospital Queimaduras.

1. Fabricação de dispositivos microfluídicos <ol><li> Usando técnicas de fotolitografia padrão, fabricar o wafer molde mestre em uma classe de 1000 sala limpa. Padrão da primeira camada de material fotosensitivo 3 mícrons-fina à base de epóxi negativo para definir os canais de migração de acordo com as instruções do fabricante. Padrão a segunda camada de 50 mícrons de espessura para definir as câmaras de célula de carga e quimiocinas. </li><li> Use o wafer padronizada para lançar dispositivos polidimetilsiloxano (PDMS). Misture vigorosamente PDMS (20 g) com o iniciador (2 g) durante 5 min usando garfo de plástico, em grande bandeja de pesagem de plástico. </li><li> Com cuidado, despeje PDMS para molde. </li><li> Desgasificar o PDMS pela colocação do molde com PDMS vertida num exsicador de vácuo durante 1 hora. </li><li> Asse e curar PDMS dispositivos de microfluidos para, pelo menos, 3 horas num forno regulado para 65 ° C. </li><li> Perfurar os WBLCs centrais usando um perfurador com um diâmetro da ponta de 1,5 mm. </li><li> Retire o dispositivos em forma de anel inteiras usando uma punçãoela com um diâmetro da ponta de 5,0 mm. </li><li> Remova as partículas a partir de dispositivos de rosca com fita adesiva. </li><li> Lavar a 12 poços placa com água deionizada e, em seguida, seco com nitrogênio. Colocar em placa a 60 ° C forno durante 5 min. </li><li> Plasma de oxigénio tratar a placa de 12 poços por duas vezes; uma vez sozinho por 35 segundos e, em seguida, novamente com os dispositivos de rosca para outros 35 seg. </li><li> Com cuidado, coloque os dispositivos nos poços da placa, usando uma pinça. </li><li> Asse placa com dispositivos ligados em uma placa quente definida como 80 ° C durante 10 min. </li></ol> 2. Microfluidic Ensaio Preparação <ol><li> Dispositivos de microfluidos Prime imediatamente após o tratamento por plasma de oxigénio, quando o dispositivo é hidrófilo e os efeitos capilares pode promover a iniciação dos pequenos canais no dispositivo. </li><li> Criar solução quimioatractiva pela mistura de 5 mL de fMLP [solução stock 10 uM] com 5 mL de fibronectina [solução de estoque de 1 mg / mL] e 490 uL de HBSS. </li><li> Lentamente pipeta &amp; #160; solução quimioatractiva em WBLC, utilizando uma ponta de carga do gel (Figura 1A). Pipeta um adicional de 20 ul de quimioatractor em torno do exterior do dispositivo. </li><li> Coloque a placa num secador durante 15 minutos. Através da aplicação de um vácuo para o dispositivo, a solução é instilada nos canais laterais do dispositivo e o ar deslocado difundido para fora através das PDMS. </li><li> Retire a placa de exsicador e confirmar umedecimento do canal dispositivo sob microscópio. Veja como bolha torna-se menor, como solução chemoattractant entra na câmara. Nenhuma bolha deve estar presente no interior do dispositivo após o tratamento a vácuo. </li><li> Lava-se a WBLC e fora do dispositivo completamente para remover o excesso de solução quimioatractor. Este passo produz um gradiente de quimioatractor de cada uma das câmaras quimiotáticos focais (FCC) para o centro do dispositivo. <ol><li> Encha uma seringa de 1 ml com PBS, adicionar uma 30 G contundente ponta da agulha de seringa. Gentilmente, insira a ponta da agulha da seringa nopara o centro do orifício de rosca. Suavemente empurrar 100 ul de PBS no orifício de modo a que uma gotícula de formas de PBS na parte superior do dispositivo. </li><li> Placa de inclinação e de pipeta de 1 ml de PBS em torno do dispositivo de modo a que o líquido se acumula na parte inferior do poço. Aspirar o processo líquido e repita para o total de 3x usando solução tampão fresco (media de uso em vez de buffer se os neutrófilos separados serão carregados em media) 9. </li></ol></li><li> Encher cada poço com a mídia até que os topos dos dispositivos estão submersos sob líquido. Deixe os dispositivos descansar por 15 min para permitir inclinação a se estabilizar. Os resultados experimentais e os dados teóricos obtidos em simulações de elementos finitos mostram que os gradientes em estes dispositivos são estáveis ​​até cerca de 24 horas, para as moléculas pequenas (por exemplo, fMLP) e até um de vários dias para o maior peso molecular (por exemplo, IL8). </li><li> Usando Dicas para colocar o gel, lentamente pipeta 2 mL de sangue (neutrófilos ou isoladas) em cada loa sangue totalding câmara (WBLC) (Figura 1A). </li></ol> 3. Preparação de Amostras Os neutrófilos humanas A partir de sangue capilar <ol><li> Coletar sangue capilar de punção digital de voluntários saudáveis, que está em nenhum imunossupressores. Todas as amostras dos pacientes foram obtidas com consentimento informado por escrito, e através de procedimentos aprovados pelo MGH e Shriners Conselhos de Revisão Institucional. <ol><li> Para a coleta de sangue de punção digital, lavar as mãos com água e sabão e seque a pele. Preparar a solução estoque anti-coagulant/stain adicionando 1 ml HBSS + 0,2% de HSA e 10 mL Hoechst mancha (32,4 mM) à heparina tubo de coleta de sangue (1,65 USP/50 mL de sangue). Picar o dedo usando uma lanceta segurança SurgiLance (profundidade de 2,2 mm, 22 G), limpe primeira gota de sangue e recolher 50 mL de sangue em tubo Eppendorf contendo o estoque de anti-coagulante e solução fluorescente mancha Hoechst (10 mL) e gentilmente misturar. </li></ol></li&gt; <li> Incubar o sangue e Hoechst mancha durante 10 min para permitir a coloração fluorescente núcleo. Execute amostra dentro de 1 hora da coleta de sangue. </li></ol> Neutrófilos humanos do sangue venoso <ol start="3"><li> Desenhar 10 ml de sangue periférico, venoso em tubos contendo 33 USP de heparina. </li><li> Adicionar 50 mL de sangue venoso para a mídia e Hoechst mancha como descrito anteriormente. Incubar o sangue e Hoechst mancha durante 10 min para permitir a coloração fluorescente núcleo. Execute amostra dentro de 1 hora da coleta de sangue. </li></ol> Neutrófilos Separação De Sangue - Controle Positivo <ol start="5"><li> Para separar os neutrófilos, utilizar técnicas estéreis para isolar os neutrófilos a partir de 10 ml da amostra de sangue total venoso usando Hetastarch (6% w / v) de gradiente de densidade, seguido por uma selecção kit de isolamento de esfera magnética negativa seguindo o protocolo do fabricante. </li><li> Ressuspensas a alíquota final, de neutrófilos a uma concentrção de 4.000 células / ul em 1X HBSS + 0,2% de albumina do soro humano. Manter as células a 37 ° C até que esteja pronto para executar o experimento. </li></ol> 4. Microscopia e Análise de Imagem para medições de quimiotaxia de neutrófilos <ol><li> Defina-se a temperatura biochamber a 37 ° C, humidade entre 80% e CO 2 a 5%. </li><li> Comece imaginando imediatamente o uso de imagens de lapso de tempo em um microscópio (10X ou superior ampliação). </li></ol> 5. Statistical Analysis <ol><li> Rastrear manualmente, pelo menos, 50 neutrófilos em cada amostra. </li><li> Contar as células que entram na FCC ao longo do tempo (Figura 2). </li><li> Calcular as velocidades de neutrófilos no canal entre WBLC e CCI, utilizando o ImageJ (NIH) (Figura 2). </li><li> Quantificar direccionalidade de neutrófilos através da contagem do número de células que passam a bifurcação e calcular a razão entre o número de células que voltam-se para o FCC e que as células de saída the dispositivo. As células que não são direcionais não seguem o gradiente quimiotático e, portanto, migrar em números iguais em direção à FCC e do canal de saída (Figura 2). </li></ol>

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<li>Hoang, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+neutrophil+speed+and+directionality+during+chemotaxis%2C+directly+from+a+droplet+of+whole+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Technology%22%5BJournal%5D)">Measuring neutrophil speed and directionality during chemotaxis, directly from a droplet of whole blood.</a> Technology. 0, 1-9 (2013).</li>
<li>Kurihara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resolvin+D2+restores+neutrophil+directionality+and+improves+survival+after+burns%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+journal+%3A+official+publication+of+the+Federation+of+American+Societies+for+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Resolvin D2 restores neutrophil directionality and improves survival after burns.</a> FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. , (2013).</li>
<li>Buffone, V., Meakins, J. L., Christou, N. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+function+in+surgical+patients.+Relationship+to+adequate+bacterial+defenses%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Surg%22%5BJournal%5D)">Neutrophil function in surgical patients. Relationship to adequate bacterial defenses.</a> Arch Surg. 119, 39-43 (1984).</li>
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</ol>

Não há conflitos de interesse de divulgar.

Neste trabalho, foi desenvolvida uma plataforma microfluídica para medir quimiotaxia de neutrófilos a partir de uma gota de sangue (2 mL). A filtragem mecânica on-chip de hemácias de migração de neutrófilos ativamente contorna a necessidade de métodos complicados de separação de células, como a densidade gradientes 10, a seleção positiva 11, ou seleção negativa de 12, que são propensas a introduzir artefatos ativando neutrófilos. A filtragem mecânica de hemácias distingue a nossa tecnolo...

<html> Tráfico de neutrófilos desempenha um papel fundamental na determinação do progresso e resolução de muitas doenças inflamatórias, incluindo aterosclerose 1, infecção bacteriana ou sepsia 2, lesão por queimadura e 3. Por sua grande contribuição para as condições de saúde e doença, contagem de neutrófilos é parte da análise de sangue padrão muitas vezes considerado em laboratórios clínicos e de pesquisa. No entanto, apesar de ser um dos testes mais ubíquos, o valor de contagem de neutrófilos para o diagnóstico da infecção e sépsis tem sido frequentemente questionada 4. Por exemplo, um estudo de neutrófilos em pacientes com queimaduras revelou que a contagem de neutrófilos e função de migração de neutrófilos não se correlacionam; significando contar que neutrófilos por si só não é um indicador preciso do estado imunológico 3. Embora mais difícil de medir, competência funcional de neutrófilos tem sido proposta como mais valioso em uma ampla gama de condições. t &quot;&gt; É importante, muitos dos defeitos de neutrófilos são transientes e não são provocados por defeitos genéticos permanentes, uma distinção que tem sido largamente ignorada na clínica até recentemente. No contexto de queimaduras, a migração de neutrófilos pode ser monitorizada durante o curso de o tratamento de um paciente como um indicador do estado inflamatório ou infecção 3. ensaios de migração tradicionais actualmente utilizados no laboratório (câmara de Boyden, Dunn câmara, ensaio micropipeta) não pode ser traduzido em um ambiente clínico porque requerem grandes volumes de sangue e pesado demorado técnicas de isolamento de neutrófilos (Tabela 1). Estes ensaios também não pode ser usado para monitorar as mudanças transitórias na quimiotaxia de neutrófilos em animais de laboratório pequenos, tais como ratos, porque o volume de sangue necessário para o isolamento de neutrófilos permite apenas um exemplo e muitas vezes até mesmo exige conjugação de sangue de vários animais para um único ensaio. Por exemplo, um estudo envolvendo mcondições ultiple e tratamentos ao longo de vários pontos temporais poderiam exigir milhares de ratos usando ensaios de quimiotaxia atuais. Isso restringe a pesquisa biológica básica que pode ser feito para compreender a complexa dinâmica da função imune no contexto de lesão, infecção ou queimar freqüentemente estudados em modelos murinos 5. Para satisfazer a necessidade de um ensaio funcional de neutrófilos que é rápida e robusta, enquanto o volume de sangue que exige um mínimo, temos desenvolvido um dispositivo de microfluidos, que mede a quimiotaxia de neutrófilos directamente a partir de uma pequena gota de sangue completo. Sabe-se que muitos fatores em sangue total, incluindo soro 6 e 7 plaquetas, afetar a função dos neutrófilos. Por conseguinte, é benéfico que o doseamento de microfluidos sangue total minimiza o processamento da amostra para manter o microambiente in vivo dos neutrófilos ao medir variações de quimiotaxia com um ensaio in vitro 8. Esta abordagemreduz o tempo de coleta de sangue para testes de migração de neutrófilos de horas usando técnicas tradicionais, a poucos minutos (Tabela 1). A plataforma de microfluidos sangue total produz um gradiente linear quimioatractiva estável durante a duração da experiência, não tem partes móveis, e não necessita de uma fonte de pressão exterior (isto é, uma bomba de seringa). A característica-chave no desenho de conjunto do dispositivo de microfluidos de sangue é a incorporação de uma célula de sangue vermelho (RBC) pente filtração que filtra mecanicamente GVs de entrar no canal de migração do dispositivo. As voltas à direita deste pente filtração evitar a necessidade de filtração exclusão de tamanho, o que provavelmente seriam obstruídos por hemácias e, portanto, bloquear o gradiente chemoattractant de atingir os neutrófilos migram ativamente na WB. A incorporação de todo o dispositivo de microfluidos de sangue em uma placa de 12 ou 24 poços facilita o rastreio de vários mediadores de si quimiotaxia de neutrófilos humana ou murinataneamente.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Fabricação de Dispositivos</td></tr><tr><td>SU-8</td><td>Microchem</td><td>Y131273</td><td></td></tr><tr><td>Polidimetilsiloxano (PDMS)</td><td>Ellsworth Adhesives</td><td>Sylgard 184 Kit de 1.1 lb. Lâminas</td><td></td></tr><tr><td>de vidro padrão</td><td>Fisher Scientific</td><td>125495</td><td>1 X 3 polegadas</td></tr><tr><td>Placa de fundo de vidro</td><td>MatTek</td><td>P12G-1.5-14-F</td><td></td></tr><tr><td>Harris Uni-Core, Diâmetro da Ponta 5.0 mm</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>15081</td><td></td></tr><tr><td>Harris Uni-Core, Diâmetro da ponta 1,5 mm</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>15072</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Preparação e Análise de Ensaio Microfluídico</td></tr><tr><td>Ponta de pipeta de carregamento de gel</td><td>Seringa Fisher Scientific</td><td>02-707-139</td><td></td></tr> Agulha de ponta romba <tr><td></td><td>309602</td><td></td><td>Fisher Scientfic</td></tr>, <tr><td>30 G &frac12; pol.</td><td>Brico Medical Supply</td><td>BN3005</td><td></td></tr><tr><td>Vacutainer, heparina</td><td>Becton Dickinson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Albumina sérica humana</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5843-5G</td><td>concentração final de 0,2% em HBSS</td></tr><tr><td>Fibronectina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0895-1MG</td><td></td></tr><tr><td>fMLP</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F3506-10MG</td><td></td></tr><tr><td>Lanceta de segurança SurgiLance, 2,2 mm de profundidade, 22 G</td><td></td><td>SLN240</td><td></td></tr><tr><td>Coloração Hoescht</td><td>Life Technologies</td><td>H3570</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Positive Control</td></tr><tr><td>HetaSep</td><td>STEMCELL Technologies Inc.</td><td>7906</td><td></td></tr><tr><td>Kit de Enriquecimento de Neutrófilos Humanos EasySep</td><td>STEMCELL Technologies Inc.</td><td>19257</td><td></td></tr><tr><td>Plasma Asher</td><td>March Instruments</td><td>P-250</td><td></td></tr><tr><td>Lindberg / Blue M Forno</td><td>Thermo Scientific</td><td>13-258-30C</td><td></td></tr><tr><td>Pinças de Precisão de Aço Inoxidável</td><td>Techni Tool</td><td>758TW458</td><td></td></tr><tr><td>Bel-Art Scienceware Dessecador a Vácuo Resistente a Produtos Químicos</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-594-15A</td><td></td></tr><tr><td>Dataplate Placa de Aquecimento Digital</td><td>Alpha Multiservices</td><td>PMC 720</td><td></td></tr><tr><td>Nikon TiE microscópio invertido</td><td>Nikon - Micro Video Instruments Inc.</td><td></td><td></td>MEA53100</tr><tr><td>CFI Plan Fluor DL 10X NA 15.2 wd Objetiva</td><td>Nikon - Micro Video Instruments Inc.</td><td></td><td></td>MRH20101</tr><tr><td>Lumen 200 com Guia de Luz de 2 Metros para Nikon</td><td>Nikon - Micro Video Instruments Inc.</td><td>500-L200NI2</td><td></td></tr><tr><td>DAPI/Hoechst/AMCA Banda Estreita 32-mm Excitadores - Emissores de 25-mm</td><td>Chroma - Micro Video Instruments Inc.</td><td>31013v2</td><td></td></tr><tr><td>Retiga R 2000 refrigerou a câmera CCD 1.600 x 1.200 pixels</td><td>Qimaging - Micro Video Instruments Inc.</td><td>RET-2000R-F-M-12-C</td><td></td></tr></tbody></table>

plataforma microfluídica para medição de quimiotaxia de neutrófilos não transformados sangue total

Microfluidic Platform for Measuring Neutrophil Chemotaxis from Unprocessed Whole Blood

Os neutrófilos desempenham um papel essencial na proteção contra infecções e seus números no sangue são freqüentemente medido na clínica. Maiores número de neutrófilos no sangue são geralmente um indicador de infecções em curso, enquanto a baixa contagem de neutrófilos são um sinal de alerta para os riscos mais elevados para infecções. Para realizar as suas funções, os neutrófilos, também tem que ser capaz de se mover de forma eficaz a partir do sangue, onde eles passam a maior parte de sua vida, para os tecidos, onde ocorrem infecções. Consequentemente, quaisquer defeitos na capacidade dos neutrófilos para migrar pode aumentar os riscos de infecções, mesmo quando os neutrófilos estão presentes em números adequados no sangue. No entanto, a medição de neutrófilos capacidade de migração na clínica é uma tarefa desafiadora, que é demorado, exige grande volume de sangue, e conhecimento especializado. Para lidar com essas limitações, nós projetamos um robusto ensaios microfluídicos para a migração de neutrófilos, o que requer uma única gota de sangue não transformados, circumvents a necessidade de separação dos neutrófilos, e é fácil de quantificar num microscópio simples. Neste ensaio, os neutrófilos migram directamente a partir da gota de sangue, através de pequenos canais, no sentido da fonte do quimioatractor. Para evitar que o fluxo granular de células vermelhas do sangue através dos mesmos canais, implementamos filtros mecânicos com ângulo direito voltas que bloquear seletivamente o avanço das células vermelhas do sangue. Nós validamos o ensaio comparando a migração de neutrófilos de gotas de sangue coletadas de punção digital e sangue venoso. Também comparamos todo estes sangue (BM) fontes com migração de neutrófilos a partir de amostras de neutrófilos purificados e encontrou velocidade consistente e direcionalidade entre as três fontes. Esta plataforma microfluídica permitirá o estudo da migração de neutrófilos humano na clínica e no ambiente de pesquisa para ajudar a avançar a nossa compreensão das funções de neutrófilos na saúde e na doença.

O sangue (BM) ensaio quimiotaxia de neutrófilos todo foi validada medindo o acúmulo de neutrófilos para um gradiente fMLP (S1 Filme). Os resultados confirmam que os glóbulos vermelhos estão presos pelo pente filtração enquanto neutrófilos (azuis) são capazes de migrar ativamente de todo o sangue (Figura 3A e S1 Filme). O gradiente estável linear chemoattractant (verde), formado por todo o dispositivo micro sangue foi confirmado usando dextrano marcadas com FITC ...

Este protocolo detalha um ensaio concebido para medir a quimiotaxia de neutrófilos humanos a partir de uma gota de sangue total com reprodutibilidade robusta. Esta abordagem evita a necessidade de separação de neutrófilos e requer apenas alguns minutos de ensaio tempo de preparação. O chip de microfluídica permite a medida repetida de quimiotaxia de neutrófilos ao longo do tempo em crianças ou pequenos mamíferos, onde o volume da amostra é limitado.

Plataforma microfluídica para medição de quimiotaxia de neutrófilos não transformados Sangue Total

Neutrophils play an essential role in protection against infections and their numbers in the blood are frequently measured in the clinic. Higher ...

Essa tecnologia microfluídica tem como objetivo medir diretamente a funcionalidade de neutrófilos humanos a partir de uma única gota de sangue em uma plataforma que pode ser multiplexada. A câmara central de carregamento serve como fonte de sangue integral e também atua como sumidouro para os gradientes de quimioatraentes que se formam a partir das 16 câmaras quimiotáticas focais. A filtragem mecânica exclusiva de hemácias permite investigar a função dos neutrófilos no contexto natural do sangue, com seus componentes celulares e bioquímicos.A bifurcação entre um canal que leva à câmara quimiotática focal e um canal que sai do dispositivo permite a quantificação e modulação da direcionalidade de neutrófilos migratórios. Assim, os resultados podem demonstrar como neutrófilos ativamente migratórios atravessam facilmente eritrócitos aprisionados e se acumulam em número ao longo do tempo. Uma característica única de nossos dispositivos microfluídicos é que eles são muito fáceis de fabricar e montar.Eles consistem em uma camada de PDMS moldada sobre uma pastilha microfabricada que ligamos a uma placa de fundo de vidro, com poço único ou múltiplos. A principal vantagem dessa técnica é que

microfluidic-platform-for-measuring-neutrophil-chemotaxis-from

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

Este protocolo descreve o desenvolvimento de um dispositivo micro para investigar quimiotaxia bacteriana em gradientes de concentração estável de chemoeffectors.

Um dispositivo micro para Quantificar Quimiotaxia bacteriana em gradientes de concentração estável

Nós descrevemos um protocolo de brightfield microscopia intravital para medir a dinâmica interações neutrófilos-célula endotelial durante o recrutamento de neutrófilos em resposta à fonte de um chemoattractant neutrófilos in vivo. Neutrófilos rastejando intraluminal, a migração transendotelial e quimiotaxia em tecido muscular do rato cremaster são visualizados com o tempo decorrido, fotografia, vídeo e rastreados com ImageJ.

Rastreamento Crawling neutrófilos Intraluminal, migração transendotelial e Quimiotaxia em tecido por Microscopia intravital Vídeo

Este vídeo demonstra o ensaio de quimiotaxia de neutrófilos usando um método all-on-chip. O método permite o isolamento direto de neutrófilos do sangue total por seleção imunomagnética negativa seguida de ensaio de quimiotaxia em um chip microfluídico.

Um método baseado em chip microfluídico para análise rápida de quimiotaxia de neutrófilos usando sangue total

A aderência de neutrófilos ao endotélio activado em locais de infecção é um componente integral da resposta inflamatória do hospedeiro. Descritos neste relatório é um ensaio de ligação de neutrófilos, que permite...

Quantitativo<em&gt; In vitro</em&gt; Ensaio medir a adesão de neutrófilos ativados primárias células humanas endoteliais microvasculares em condições estáticas

Os leucócitos atravessam a monocamada endotelial utilizando o paracelular ou o percurso intracelular. Foi desenvolvido um ensaio simples para seguir a distribuição de juncional endógeno VE-caderina e PECAM-1 durante a migração transendotelial de leucócitos sob fluxo fisiológico para discriminar entre as duas vias de transmigração.

Imagens em tempo real de endoteliais junções célula-célula durante Neutrophil Transmigração Sob Fisiológica Fluxo

ensaios de quimiotaxia visuais são essenciais para um melhor entendimento de como as células eucarióticas controlar a migração celular mediada por direccional quimioatractor. Aqui, descrevemos métodos detalhados para: 1) em tempo real, monitoramento de alta resolução de vários ensaios de quimiotaxia, e 2) visualizando simultaneamente o gradiente quimioatrativo ea dinâmica espaço-temporais de eventos de sinalização em células HL60 neutrófilos-like.

Imagiologia G protein-coupled receptor mediada por quimiotaxia e seus eventos de sinalização em células de HL60 de Neutrófilos-like

Este artigo fornece o método detalhado de realização de um teste rápido de quimiotaxis de neutrófilos integrando o isolamento de neutrófilos no chip do sangue total e o teste de quimiotaxia em um único microfluídico.

Um método All-on-chip para análise rápida de quimiotaxis de neutrófilos diretamente de uma gota de sangue

Protocolos para avaliação quantitativa da quimiotaxia de linfócitos e migração são ferramentas importantes para pesquisa de Imunologia. Aqui, um protocolo em vitro é descrito que permite em tempo real, multiplexados avaliação da migração celular, bem como um complementares na vivo técnica permitindo rastreamento de células nativas para o baço.

Quantificar o humano Monocyte Chemotaxis In Vitro e linfócitos murino tráfico Vivo

Nesta pesquisa, vamos demonstrar um método de separação de neutrófilos rótulo livre de secreções clínico das vias aéreas utilizando a operação de circuito fechado de microfluídica inercial espiral. O método proposto poderia expandir os ensaios clínicos em vitro para várias doenças respiratórias.

Livre de rótulo neutrófilo enriquecimento de secreção do paciente-derivado das vias aéreas usando microfluídica inercial de circuito fechado

Este protocolo gera micromatrizes de biopartículas que fornecem enxame de neutrófilos espacialmente controlados. Ele fornece fácil acesso aos mediadores que os neutrófilos liberam durante a migração e permite análise quantitativa de imagem.

Micromatrizes de biopartículas para análise quimiotática e molecular de swarming de nêutrons humanos in vitro

Neste protocolo, um ensaio biomimético de microfluido, que pode reproduzir um ambiente microvascular fisiologicamente relevante e reproduzir toda a cascata de adesão/migração leucócito, é empregado para estudar interações células leucócitos-endoteliais em doenças inflamatórias.

Um sistema microfisiológico para estudar a interação das células leucócitos-endoteliais durante a inflamação

Aprenda a medir quimiotaxia de neutrófilos humanos diretamente de uma gota de sangue total usando uma plataforma microfluídica. Este método permite avaliar rapidamente a função imunológica celular em contexto fisiológico.

Plataforma microfluídica para medição de quimiotaxia de neutrófilos não transformados Sangue Total

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