Name: Harmonic Nanopartículas Regenerativa Research (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-01T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Aprenda a monitorar aglomerados cardíacos derivados de células-tronco embrionárias humanas em tempo real usando nanopartículas harmônicas e microscopia multiphoton. Este método permite analisar contrações cardíacas em alta resolução espacial.

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Os autores gostariam de agradecer o financiamento parcial do Projeto de Pesquisa FP7 NAMDIATREAM Europeia (NMP4-LA-2010-246479, http://www.namdiatream.eu) eo projecto INTERREG IV França-Suíça NAOMI.

1. Cultura e Expansão da ESC Humano <ol><li> Preparar o meio de propagação da célula (chamado PM) contendo Knockout DMEM suplementado com 20% de Soro KO, 1% MEM não-aminoácidos essenciais, 1% de L-glutamina 200 mM, 1% de penicilina-estreptomicina, e 3,5 ul β-mercaptoetanol. </li><li> Descongele ESC humana (hESC) em 8 ml de meio PM e centrifugar para 5 min a 115 xg para descartar suplementados com DMSO meio de congelamento. </li><li> Adicione 1 ml de meio PM contendo 10 inibidor Rocha mM para evitar a apoptose e melhorar a sobrevivência das células após a descongelação (apenas 24 incubação h). </li><li> Adicionar o factor de crescimento de fibroblastos básico (bFGF), para a AM para a concentração desejada (4-10 ng / ml) para a manutenção da pluripotência. </li><li> Semear a células estaminais embrionárias humanas no prepúcio humano irradiado células alimentadoras (γHFF) (Figura 1A), anteriormente colocadas em placas a uma concentração de 2 x 10 4 células / cm 2. </li><li> Mude média diária e, quando necessário, remover partes colonies começando a diferenciar por aspiração com uma pipeta de Pasteur acentuadamente alongada cortada. </li><li> Uma vez por semana, colônias passagem enzimaticamente: <ol><li> Remover o meio e lava-se as colónias, com 2 ml de PBS. </li><li> Remover PBS e incubar com 0,5 ml por poço de quente colagenase IV a 1 mg / ml durante 10 min a 37 ° C, 5% de CO 2. </li><li> Coletar fragmentos de colônias em 2 ml novo PM e centrifugar a 115 xg por 3 min. </li></ol></li><li> Alternativamente, as colónias podem ser passadas através de raspagem mecânica: <ol><li> Remover o meio e lava-se as colónias, com 2 ml de PBS. </li><li> Raspar manualmente colónias usando a ferramenta rolo raspador StemPro EZPassage (Figura 1B). </li><li> Recolher fragmentos de colónias e depois centrifugar durante 3 minutos a 115 xg para remover o sobrenadante. </li><li> Fragmentos de placa em γHFF ou processá-los para a diferenciação em corpos embrióides (EBS). </li></ol></li></ol> 2. Diferenciação ESC HumanoProtocolo <ol><li> Preparar o meio de diferenciação (MS) usando Knockout DMEM suplementado com 2% de soro de Hyclone, 1,0% MEM não-aminoácidos essenciais, 1,0% de L-glutamina 200 mM, 1% de penicilina-estreptomicina, 3,5 ul β-mercaptoetanol. </li><li> Remover o meio e lava-se as colónias, com 2 ml de PBS. </li><li> EB formação de fragmentos de colônias em suspensão: <ol><li> Remover PBS e incubar com 0,5 ml por poço de quente colagenase IV a 1 mg / ml durante 10 min a 37 ° C, 5% de CO 2. </li><li> Coletar fragmentos de colônias em 2 ml novo DM e centrifugar a 115 xg por 3 min. </li><li> Cultura los em suspensão em ultra-baixo de fixação placas de 6 poços (2 ml por poço) durante 4 dias (Figura 1C). </li><li> Recolha e placa os CEs recém formados em 0,1% revestidas com gelatina de 24 poços, placas (cerca de 3 EB / poço) (Figura 1D). </li></ol></li><li> Alternativamente, a agregação de células individuais forçado a EBS usando a placa Aggrewell: <ol><li> Remover PBS edissociar colónias em células individuais utilizando Accutase (0,5 ml / poço). </li><li> Centrifugar células e ressuspender em DM em 1.2 x 10 6 / ml. </li><li> Adicionar 2 ml por Aggrewell câmara durante 1 dia (Figura 1B). </li><li> Recolhe CEs recém-formados (Fig. 1C &#39;) e placa-los em 0,1% revestidos com gelatina placas de 24 poços (cerca de 3 EB / poço). </li><li> Mude DM a cada 2-3 dias até o aparecimento de bater aglomerados de cardiomiócitos (15-30 dias). </li></ol></li></ol> 3. Ar líquidos culturas 3D de batendo Clusters e Rotulagem com HNPs <ol><li> Identificar e manualmente dissecar aglomerados de batendo cardiomiócitos (Figura 1D), normalmente aparecem após 2-4 semanas de cultura, utilizando uma pipeta Pasteur alongada cortou drasticamente. </li><li> Depósito 4 filtros de PTFE por pastilha, que serão colocados em uma placa de 6 poços (Figura 1F). </li><li> Adicione 1 ml de meio de DM em cima de each bem. </li><li> Adicionar um grupo dissecado batendo em cada filtro de PTFE (Figura 1E), máxima 4/well, ou seja, 24 agregados por placa (Figura 1F). </li><li> Mude médio DM cada 2-3 dias. </li><li> Para identificar os clusters, retire o filtro PTFE contendo o cluster surra e colocá-lo em 3,5 centímetros prato de vidro de fundo (170 mm de espessura). </li><li> Adicionar 1 ml de PNH a uma concentração de 50 ug / ml durante 30 min. </li></ol> 4. Imagem óptico não-linear <ol><li> A preparação das amostras. Após a marcação PNH (ver passo 3.6), transferir ou inteiro diferenciadores HeBS início ou clusters batimento cardíaco (dissecados na aparência contração) em filtros de PTFE sobre um prato de 170 mm de espessura com fundo de vidro compatível com a distância de trabalho de altos objetivos abertura numérica. Como alternativa, aplique uma camada de bater direto clusters para o prato fundo de vidro pré-revestido com 0,1% de gelatina. </li><li> Amostras de transferência para umatudo-em-um microscópio equipado com câmara de incubação garantindo temperatura estável, umidade e CO 2 controle ao longo de períodos de tempo prolongados. </li><li> Após a inspeção inicial, a imagem da amostra através de imagens de campo amplo com iluminação de luz branca para identificar as estruturas de interesse dentro EBs diferenciados ou clusters batendo ativos que serão selecionados para posteriores investigações. </li><li> Se a autofluorescência das células a partir de NADH e SH de HNPs tem que ser adquirido simultaneamente, defina um menor comprimento de onda de excitação de laser (isto é, 720 nm) para coincidir com a absorção molecular. Use um filtro passa-banda espectral estreita centrada na metade do comprimento de onda de excitação (ou seja, λ = 360 ± 10 nm) para detectar SH, e outro para detectar autofluorescência. </li><li> Em primeiro lugar fazer uma, de baixa resolução rápida, digitalização tridimensional para reconstruir a morfologia geral do cluster cardíaca e selecionar um plano de imagem dentro do volume de cluster com vários PNH visívels. </li><li> Se necessário, altere o comprimento de onda de excitação livremente para melhor corresponder propriedades ópticas da amostra ou para evitar a fotodegradação, danos foto e imagem mais profunda nos tecidos, com um comprimento de onda IR (ou seja, 790 nm) e substituir o segundo filtro de harmônicas em conformidade (ou seja, 395 nm ). Otimizar as configurações do pulso de laser pré-compressor no comprimento de onda de trabalho de escolha, maximizando o segundo sinal harmônico de HNPs depositados na amostra. </li><li> Para acompanhar em tempo real as contrações cardíacas de cluster, configure o scanner óptico do microscópio no modo mais rápido, como o modo de ressonância, permitindo a aquisição de alta velocidade de imagens bidimensionais. </li><li> Escolha as configurações como melhor compromisso entre o contraste de imagem e velocidade de aquisição, tais como: <ul type="disc"><li> Média de digitalização: 4 </li><li> Pixel tempo de permanência: 0,1 ms </li><li> Taxa Image: 3,75 frames por segundo (fps) </li></ul></li><li> Poder do laser é ajustada de acordo com focal local size e velocidade de varredura. 50 mW (medido na entrada da objectiva) é um valor típico de 0,1 ms de pixel do tempo de permanência e Plano APO 20X NA 0,75 objectivo preservando a viabilidade celular. </li></ol> 5. Image Analysis <ol><li> Procedimento de calibração Axial. Selecione uma única PNH depositados sobre um substrato nu. Ajustar a focagem (isto é, a posição axial da nanopartícula) para maximizar a intensidade SH. Variar de uma forma controlada a posição axial do estágio de microscópio para obter a curva de calibração relativa intensidade SH como uma função da PNH deslocada do plano focal. O resultado deste procedimento de calibração para o objectivo 0,75 Plano APO 20X NA está relatado na Figura 4C. </li><li> Selecione HNPs presentes em todos os quadros de vídeo e determinar seus movimentos periódicos. Este procedimento pode ser facilmente automatizado, por exemplo, um código personalizado em busca de pontos de sinal máxima intensidade em uma região definida de interesse econectá-los entre quadros diferentes (um código de exemplo escrito em Matlab R2009 b usando a função &#39;adereços região da caixa de ferramentas de processamento de imagem é apresentada). </li><li> Avaliar a quantificação dos deslocamentos fora do plano, associadas HNPs não rastreáveis ​​continuamente em movimento ao longo do eixo óptico, através da conversão de suas modulações de intensidade ao longo de quadros diferentes para o deslocamento axial utilizando a curva de calibração estabelecida no Passo 5.1. Note-se que este procedimento dá acesso aos movimentos axiais, mas não pode ser utilizada para determinar a orientação absoluta (para cima ou para baixo). </li></ol>

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Os autores não têm nada a revelar.

A aplicação da nanotecnologia à investigação em células estaminais é um relativamente novo, mas em rápida expansão campo. Como foi assinalado por vários artigos de revisão sobre o assunto, o uso de nanopartículas pode ser aplicada para realizar tarefas diferentes de pesquisa, variando a partir de células de monitoramento (tanto in vitro como in vivo), para a distribuição intracelular de proteínas e genes, não menos importante, a criação de ambientes celulares biomiméticos para preferencial estimulação ...

Sistemas de microscopia não-lineares, graças às suas inerentes três capacidades de seccionamento dimensionais, têm cada vez desencadeada a demanda por fluoróforos foto-estável, com bandas de absorção de dois fótons do infravermelho próximo. Só no último par de anos, para complementar o desenvolvimento de rótulos baseados em fluorescência (corantes, pontos quânticos, a converter nanopartículas), uma metodologia diferente de imagem vem explorando o uso de uma nova família de nanopartículas inerentemente não-lineares como rótulos, ou seja, nanopartículas de harmônicas (HNPs) que foram desenvolvidos especificamente para microscopia multi-fotão. Esses rótulos, baseadas em cristais inorgânicos, noncentrosymmetric exercer contraste óptico gerando o SH da freqüência de excitação: por exemplo, através da conversão de uma fração de perto a luz de excitação pulsada infravermelho (λ = 800 nm) para a luz azul visível (λ / 2 = 400 nm) . Vários autores no passado recente têm testado diferentes materiais, incluindo iodato de ferro Fe (IO <sub&gt; 3) 3 1, niobato de potássio (KNbO 3) 2, de niobato de lítio (LiNbO 3) 3, o titanato de bário (BaTiO3) 4,5, fosfato de potássio de titanilo (KTiOPO4, KTP) 6-8, e o óxido de zinco (ZnO ) 5,9,10. Em comparação com sondas fluorescentes, HNPs possuem uma série de propriedades interessantes, como ausência completa de branqueamento e piscando, bandas de emissão estreitas, tunability excitação-comprimento de onda (do ultravioleta ao infravermelho), a capacidade de recuperação de orientação e resposta óptica coerente. Estas propriedades únicas foram recentemente explicou em dois artigos de revisão abrangente 11,12. A possibilidade de trabalhar na região espectral do infravermelho, o que aumenta a profundidade da imagem, minimizando a dispersão e absorção, também limita drasticamente a degradação foto da amostra 13,14. Além disso, o sinal de foto-estável infinitamente garantida pelo HNPs torna sondas ideais para rastreamento de células de longo prazo, que ié particularmente atraente para aplicações de medicina regenerativa 15. Neste experimento visualizados, detalhes do protocolo são fornecidos para marcação in vitro de células-tronco embrionárias humanas (hESC) com HNPs não funcionalizados. A síntese e preparação de suspensões coloidais é detalhado em publicação anterior e em referências citadas 16 e está fora do escopo deste trabalho. Metodologias de investigação hESC por microscopia multi-fotão e sua diferenciação em clusters cardíacos (mantidos como culturas de ar líquido longo prazo) são apresentados. CES humana pode ser deixado para diferenciar dentro chamados corpos embrióides (EBS) de duas maneiras diferentes, ou por formação de EB fragmentos de colónias em suspensão ou, em alternativa, a agregação de células individuais em EB utilizando a placa Aggrewell forçados, como ilustrado na Figura 1A . Cultivar batendo aglomerados de células cardíacas com politetrafluoretileno (PTFE) filtros porosos facilitates sua manutenção a longo prazo para estudos posteriores (por exemplo medidas eletrofisiológicas de potenciais de ação). A fonte de excitação do microscópio de varrimento deve ser capaz de fornecer impulsos de ultrashort (com uma duração de impulso mais pequena do que 300 FSEC na amostra), a fim de atingir a potência de pico necessária para realizar segunda imagem harmónica de HNPs. Por exemplo, o FSEC-fonte mais comum usado para geração de imagens são ajustáveis ​​Ti: Safira lasers. Alternativamente, outros lasers ultra-rápidos podem ser empregados, por exemplo, de íons de érbio 17, cromo forsterite 18 ou Ti: Safira bombeado infravermelhos osciladores paramétricos ópticos. O microscópio pode ser equipado com uma objectiva com uma preferência relativamente elevada abertura numérica. Muito importante, antes de medições, e cada vez que o objetivo é substituído, é obrigatório para minimizar a dispersão presente no set-up (lentes), otimizando as configurações do pulso de laser pré-compressor no trabalhocomprimento de onda de escolha. Este procedimento, detalhado no protocolo, garante que o impulso de laser, é o mais próximo possível para o transformar duração limitada (ou seja, mais curto quanto possível) no plano focal e maximiza a resposta da amostra não-linear. O objectivo da análise de imagem descrito no final do protocolo é a identificar e controlar os movimentos em 3D HNPs associados com as contracções rítmicas do bater aglomerados cardíacas. Nanopartículas de rastreamento no plano de imagem é simplesmente realizado através da identificação de suas posições em quadros do filme sucessivos. Para extrair a informação sobre o movimento axial, uma calibração prévia da resposta não linear da intensidade como uma função do deslocamento axial é obrigatório. Note-se que para a medição a longo prazo, um controlo activo interferométrico da posição axial da amostra é requerida para manter a validade da curva de calibração, na presença de desvios térmicos e / ou mecânicos. Os HNPs utilizados aqui para traccélulas e batendo nos agregados são baseados em óxido de potássio niobato (KNbO 3), mas outros nanomateriais não lineares disponíveis são analisados ​​em detalhe no trabalho de Staedler et al 16. As eficiências ópticos não-lineares da maioria dos nanomateriais investigados até agora são muito comparáveis. A escolha para KNbO 3 foi motivado essencialmente pela boa estabilidade da solução coloidal e sua boa biocompatibilidade, testado em várias linhas de células humanas, mesmo em concentração razoavelmente elevada e longos tempos de exposição 16. Dada a novidade do nanomaterial empregada para este trabalho, as principais características do HNPs em comparação com / luminescentes bio-marcadores fluorescentes são mostrados em uma animação de vídeo original do computador curta realizado pelos autores.

<table><tbody><tr><td>Incubadora de microscópio</td><td>OKO LAB</td><td>UNO pacote (estágio superior)</td><td>37 &deg; C, 5% CO2, microscópio multifotônico hidratado</td></tr><tr><td></td><td>Nikon</td><td>AR1-MP</td><td></td></tr><tr><td>Varredura rápida, quatro detectores não fotomultiplicadores desescaneados</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtros SHG e autofluorescência</td><td>Semrock</td><td>FF01-360/12-25</td><td></td></tr><tr><td>FF01-395/11-25&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>FF02-485/20-25</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Objetivas para microscópio</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CFI Plan Fluor 10X</td><td></td><td></td><td>NA 0.30, WD 16 mm</td></tr><tr><td>CFI Plan Apo 20X</td><td></td><td></td><td>NA 0.75, WD 1.0 mm, VC</td></tr><tr><td>CFI Apo 40X</td><td></td><td></td><td>NA 1.25, WD 0.18 mm &lambda; S, Nano-Crystal</td></tr><tr><td>Coat Inibidor de Rhock&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>Y-27632</td><td></td></tr><tr><td>Knockout DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>10829</td><td></td></tr><tr><td>Soro Knockout&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>10828</td><td></td></tr><tr><td>MEM Aminoácidos Não Essenciais&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>1140</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamina 200 mM&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-mercaptoetanol&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>M7522</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase IV&nbsp;</td>Ferramenta de raspador de rolos <td>Gibco</td><td>17104-019</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>StemPro EZPassage, Invitrogen</td><td>23181-010</td><td></td></tr><tr><td>StemPro Accutase&nbsp;</td><td>Sistema Aggrewell</td><td>Gibco S11105-01</td><td></td></tr><tr><td></td><td>StemCell Technologies</td><td>27845</td><td></td></tr><tr><td>Hyclone serum&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>SH30070.03</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina</td><td>Sigma</td><td>G9391</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 6 poços&nbsp;</td><td>Placas</td><td>Falcon 353046</td><td></td></tr> de <tr><td>24 poços&nbsp;</td><td>Filtros de</td> politetrafluoretileno (PTFE) <td>Nunclon 142475</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Millipore</td><td>NA76/25</td><td></td></tr><tr><td>Inserções</td><td>Millipore</td><td>PICM03050</td><td></td></tr></tbody></table>

harmonic nanopartículas regenerativa research

Harmonic Nanoparticles for Regenerative Research

Neste experimento visualizados, detalhes do protocolo são fornecidos para marcação in vitro de células-tronco embrionárias humanas (hESC) com nanopartículas de geração harmônica segundo (HNPs). Estes últimos são uma nova família de sondas introduzidas recentemente para a rotulagem de amostras biológicas para imagens multi-fotão. HNPs são capazes de dobrar a freqüência de luz de excitação pelo processo de óptica não-linear de geração de segundo harmônico, sem restrição do comprimento de onda de excitação. Multi-fóton metodologias para hESC diferenciação em clusters cardíacos (mantidos como culturas de ar líquido longo prazo) com base são apresentados em detalhe. Em particular, as evidências sobre como maximizar a intensa segundo harmônico (SH) emissão de HNPs isoladas durante o monitoramento 3D de bater o tecido cardíaco em 3D é exibido. A análise das imagens resultantes para obter padrões de deslocamento 3D também é detalhado.

Antes de avaliar a actividade de batimento de imagiologia confocal, uma caracterização cuidadosa da resposta óptica não-linear dos filtros de PTFE foi realizada, quer isoladamente ou na presença de HNPs em concentração elevada (1 mg / ml). Assegurou-se que: i) o substrato utilizando dois fotões fluorescência animado é muito fraca e não pode impedir a medição das amostras biológicas relevantes, e ii) a emissão SH de HNPs isolados podem ser facilmente adquiridos por imagiologia através do substrato no modo de detecção de ...

Detalhes do protocolo estão previstas in vitro de células-tronco embrionárias humanas em matéria de rotulagem com a segunda geração de nanopartículas harmônicas. Também são apresentadas as metodologias de investigação hESC por microscopia multi-fotão e sua diferenciação em aglomerados cardíacas.

Harmonic Nanopartículas Regenerativa Research

In this visualized experiment, protocol details are provided for in vitro labeling of human embryonic stem cells (hESC) with second harmonic generation ...

O objetivo geral do experimento a seguir é o monitoramento in vitro de aglomerados cardíacos derivados de células-tronco embrionárias humanas em tempo real tridimensional e com alta resolução espacial. Isso é alcançado primeiramente cultivando e expandindo as células-tronco embrionárias até que formem corpos embrionários. Em seguida, os aglomerados contráteis são dissecados e semeados em filtros porosos de politetrafluoroetileno ou PTFE, o que permite mantê-los em longo prazo como cultura aérea.Culturas líquidas, em seguida, batendo agregados são marcadas com nanopartículas harmônicas para realizar microscopia multiphoton em tempo real. Os resultados obtidos permitem a análise da elongação espacial e da frequência das contrações cardíacas em escala microscópica. Assim, a principal vantagem dessas nanopartículas é que você pode usar qualquer comprimento de onda, especialmente o infravermelho, permitindo penetrar mais profundamente no tecido, além de serem também muito estáveis ao longo do tempo.Assim, podemos monitorar nossos processos prolongados ao longo de longos períodos. Este método de cultura de células-tronco pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área da contração funcional de cardiomiócitos em três dimensões. Em particular, na maturação cardíaca e na engenharia de tecidos.Indivíduos novos no método da doença devem estar cientes de que o procedimento de marcação com nanopartículas harmônicas pode ser usado apenas para microscopia multiphoton e não pode ser transferido para outros tipos de sistemas de imagem. Tivemos pela primeira vez a ideia de usar nanopartículas harmônicas em 2005. Essas nanopartículas apresentam vantagens em relação aos corantes fluorescentes e pontos quânticos.Na verdade, seu sinal não desaparece ao longo do tempo e eles podem ser usados para monitorar amostras em desenvolvimento por longos períodos. A demonstração visual do preparo da amostra é essencial para a eficiência e a reprodutibilidade das diferentes etapas, em particular ao realizar testes de fármacos, e também poderia ser aplicada a diferentes tecidos ou doenças. Modelagem de tecidos.Após o cultivo e expansão de células-tronco embrionárias humanas ou CTEs de acordo com o protocolo descrito no texto e incubação com colagenase aquecida por 10 minutos, colete os fragmentos de colônia em dois mililitros de meio de diferenciação fresco ou DM e centrifugue a 115 vezes a gravidade por três minutos. Cultive os fragmentos de colônia em suspensão em placas de seis poços com aderência ultrabaixa por quatro dias para permitir que formem corpos embrionários ou EBs.Em seguida, plaque os EBS recém-formados em placas de 24 poços revestidas com 0,1% de gelatina por 15 a 30 dias, até o aparecimento de aglomerados pulsantes. Remova o PBS e, com auxílio de uma agulha, dissocie as colônias em células individuais após centrifugação e ressuspenda as células em meio DM, plante dois mililitros por poço. Incube na câmara de poço a 37 graus Celsius por um dia.Colete os EBS recém-formados e plaque três por poço em placas de 24 poços revestidas com gelatina a 0,1% após duas a quatro semanas em cultura. Identifique aglomerados de cardiomiócitos contráteis e, utilizando uma pipeta de vidro longa com a ponta cortada finamente, dissecione-os manualmente. Deposite quatro filtros de PTFE por inserto e coloque cada um em um poço de uma placa de seis poços.Após adicionar um mililitro de DM em cada poço, adicione um agregado pulsante dissecado em cada filtro de PTFE. Para rotular os agregados, transfira os filtros de PTFE com os agregados pulsantes para uma placa de vidro de fundo plano de 3,5 centímetros. Adicione um mililitro de nanopartículas de geração de segundo harmônico a 50 microgramas por mililitro e incube por 30 minutos a 37 graus Celsius para realizar a imagem óptica não linear.Após transferir HEBs marcados ou agregados cardíacos pulsantes para uma câmara de imagem, utilize a microscopia de campo amplo sob iluminação de luz branca para identificar estruturas de interesse dentro dos EBS diferenciados ou agregados pulsantes ativos. Realize uma varredura tridimensional rápida de baixa resolução para reconstruir a morfologia geral do agregado cardíaco e selecione um plano de imagem dentro do volume do agregado contendo várias nanopartículas visíveis de geração de segundo harmônico para monitoramento em tempo real. As contrações do agregado cardíaco ajustam o scanner óptico do microscópio ao modo mais rápido, permitindo a aquisição em múltiplos hertz de imagens bidimensionais.Analise as imagens utilizando o software MATLAB de acordo com o protocolo descrito no texto, conforme demonstrado aqui, antes de avaliar a atividade de contração. A caracterização da resposta óptica não linear dos filtros de PTFE é realizada para garantir que a fluorescência do substrato nu frente a fótons seja muito fraca e não interfira na medição das amostras biológicas relevantes e da emissão de partículas isoladas. Nanopartículas de geração de segundo harmônico podem ser facilmente obtidas por meio de imageamento através do substrato no modo de detecção epi.Nesta figura, nanopartículas de geração de segundo harmônico marcadas em estruturas cardíacas e EBS são exibidas em lâmina. As cores vermelha, amarela e verde correspondem à autofluorescência de NADH, enquanto os intensos pontos azuis de segundo harmônico provêm de nanopartículas isoladas de geração de segundo harmônico. Observe o bom contraste óptico e a marcação relativamente esparsa em comparação com pontos quânticos ou nanopartículas de conversão ascendente.Esta figura ilustra uma vista em corte de um agrupamento cardíaco pulsante marcado com nanopartículas de geração de segundo harmônico. Como mostrado neste vídeo, as estruturas 3D são registradas em alta velocidade para monitorar o padrão de contração na segunda célula. As nanopartículas de geração harmônica agregam-se para manter uma alta taxa de aquisição, permitindo resolver o movimento das nanopartículas.A sensibilidade geral de aquisição não foi suficiente para registrar a autofluorescência celular com emissão de harmônica secundária proveniente da geração de harmônica secundária. A análise de imagem de nanopartículas realizada em quadros de vídeos indica que, dentro do mesmo agrupamento cardíaco, os deslocamentos estão na ordem de poucos micrômetros, e a frequência é constante para o movimento de nanopartículas de geração de harmônica secundária dentro e fora do plano. Quando se domina a técnica de preparo celular, a dissecação do melhor agrupamento, a cultura ar-líquido e o parto podem ser realizados em 24 a 36 horas, se executados corretamente.Principalmente com esta técnica, os contatos com o ar livre devem ser evitados para prevenir contaminações. Após este procedimento, pode-se aplicar outros métodos, como gravações eletrofisiológicas utilizando matrizes de múltiplos eletrodos, a fim de responder a questões adicionais, como correlacionar perfis de potenciais de ação com a frequência de contração em três dimensões. Nossa técnica inovadora, baseada na detecção do sinal não linear por nanopartículas harmônicas, pode ser ainda aprimorada para estudos in vivo, pois os comprimentos de onda utilizados para imagem permitem maior penetração nos tecidos.Um possível desenvolvimento poderia ser acompanhar a integração de estruturas derivadas de células-tronco para aplicações em medicina regenerativa.

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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Aprenda a monitorar aglomerados cardíacos derivados de células-tronco embrionárias humanas em tempo real usando nanopartículas harmônicas e microscopia multiphoton. Este método permite analisar contrações cardíacas em alta resolução espacial.

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