Embora o genoma humano tenha sido mapeado há mais de 10 anos, os cientistas ainda estão longe de entender a função de cada gene humano! Uma maneira de avaliar como um gene funciona é interromper a sequência codificando-o e, em seguida, avaliar o impacto dessa mudança (o fenótipo) na biologia do animal. Esta abordagem é comumente usada no camundongo (Mus musculus), uma vez que compartilha um alto grau de semelhança genética com os humanos. Para rastrear os animais com alterações genéticas ao longo de várias gerações, é necessário testar o DNA de cada rato em um processo conhecido como genotipagem.
Este vídeo fornece uma visão geral da teoria e prática por trás de ratos genotipagem. A discussão começa com os princípios básicos da genética do camundongo, incluindo uma revisão dos termos homozigoto, heterozigoto, selvagem, mutante e transgênico. Em seguida, instruções passo a passo são fornecidas para extrair e purificar DNA genômico do tecido do rato. Exemplos são fornecidos demonstrando como interpretar os resultados genotipos, bem como como acompanhar os ratos com o genótipo desejado. Finalmente, algumas aplicações representativas do procedimento de genotipagem serão apresentadas a fim de demonstrar por que essa técnica comum é tão essencial para a pesquisa do rato.
Genotipagem é o processo de detectar a presença, ou ausência, de sequências específicas de DNA no genoma de um determinado organismo.
Uma vez que os genes podem influenciar o fenótipo de um rato, ser capaz de sondar a composição genética de um camundongo individual, ou “genótipo”, é fundamental para atribuir um fenótipo a um gene específico. Este vídeo explorará a genética do rato, demonstrará os principais passos do procedimento de genotipagem e explicará como interpretar os resultados de genotipagem baseados em PCR.
Para entender o que os pesquisadores procuram quando genótipos de camundongos, vamos rever algumas manipulações comuns à genética dos camundongos.
Para estudar um gene, os cientistas frequentemente interrompem sua função alterando sua sequência genética. No entanto, os ratos são diploides, então eles têm duas cópias de qualquer gene. Como a maioria dos genes precisa de apenas uma cópia normal para funcionar, os camundongos devem ser criados para produzir um animal com ambos os genes interrompidos antes de estudar fenótipo.
Este genótipo é chamado de “nocaute homozigo”, ou mais comumente apenas “nocaute” para abreviar. Por outro lado, um rato normal com duas cópias funcionais é chamado de “tipo selvagem homozigo”, ou apenas “tipo selvagem”. Finalmente, camundongos com apenas uma cópia funcional são chamados de “heterozigous”, ou “hets”.
Em vez de remover material genético, alguns experimentos requerem a introdução de sequências de DNA no genoma do camundongo. Esses fragmentos de DNA inseridos são chamados de “transgenes”, e os ratos que os carregam são “transgênicos”. O “transgene” mais comum introduzido em camundongos é aquele que impulsiona a expressão de proteína fluorescente verde, ou GFP, de águas-vivas. Usando um promotor específico do tecido (uma sequência regulatória que “promove” a atividade de um gene) para impulsionar a produção de GFP, as células de um tipo específico de tecido podem ser facilmente identificadas por fluorescência verde.
Como muitas alterações genéticas não levam a um fenótipo facilmente observável, como a expressão GFP, os camundongos precisam ser genótipos para determinar qual animal específico deve ser usado em experimentos. Antes da genotipagem, os ratos devem ser cuidadosamente rotulados para que possam ser identificados novamente mais tarde. Não, você vai precisar de algo mais permanente do que isso. Um método comum é fazer entalhes no ouvido, de modo que a posição e o número de entalhes correspondem a um número de identificação.
Uma vez que o rato é rotulado, colete um pequeno pedaço de tecido (tipicamente 2 — 5 mm de cauda, usando um razorblade ou uma tesoura) do qual extrair DNA. Se você estiver coletando tecido de mais de um rato, marque os segmentos usados da lâmina para garantir que você não usará a mesma parte no próximo animal, o que pode levar à contaminação cruzada em suas amostras.
Para iniciar o processo de separação do material genético de outros componentes do tecido, a amostra é digerida em tampão de lise contendo a enzima proteinase K. Após uma digestão durante a noite, a amostra é centrifuada para pelo de pelotas e qualquer outro material não digerido. Para isolar o DNA do lisato digerido, um método simples e eficaz é adicionar álcool a ácidos nucleicos precipitados. Após uma breve incubação, a amostra é centrifuga novamente para coletar o DNA em uma pelota.
Depois de lavar com 70% de etanol para remover o excesso de sais, a pelota de DNA é resuspendida em água ou tampão e está pronta para genotipagem.
Existem muitas estratégias para determinar se uma sequência específica de DNA está presente em seus camundongos. A maioria deles exige que você primeiro amplie a região genética de interesse usando a reação em cadeia de polimerase, ou PCR. Para obter mais informações sobre como configurar o PCR, confira o “Guia para PCR” da JoVE Science Education.
Um método para distinguir genótipos é detectar alterações no tamanho do fragmento amplificado pelo PCR. Digamos que você está rastreando para ratos com uma inserção genética de 700 pares de bases. Depois do PCR, as bandas wildtype são 200 pares de base, e as bandas transgene devem ser 900 pares de base.
Depois de executar seu PCR, separe os produtos de reação em um gel de agarose percentual apropriado, para que você possa distinguir os tamanhos de seus fragmentos. O controle do tipo selvagem deve ter apenas a banda wildtype de 200 pares base; o controle transgênico deve ter apenas um par de base 900, banda transgênica; e o controle het deve ter ambas as bandas. Finalmente, um controle “sem modelo” está incluído para ter certeza de que os reagentes não contêm dna contaminante e, portanto, não devem gerar nenhuma faixa.
Agora que estamos confiantes de que os controles funcionaram como esperado, vamos verificar os ratos desconhecidos. Uma vez que os ratos 1 e 2 cada um tem apenas uma banda, wildtype, eles são homozygous wildtype. Os ratos 4 e 6 têm apenas uma banda transgênica, e, portanto, são transgênicos homozigosos.
E os ratos 3 e 5 cada têm duas bandas, e são, portanto, hets.
Finalmente, quando você volta para encontrar os ratos com o genótipo que você deseja, você só precisa combinar o padrão de entalhes de ouvido com o número de identificação do mouse.
Depois de obter uma compreensão do que é genotipagem e como é feito, vamos olhar para alguns exemplos de por que é útil.
Em alguns casos, modificações genéticas mais complexas são necessárias para produzir o fenótipo desejado. Por exemplo, para estabelecer esse modelo de câncer de pele em camundongos, são necessários dois transgenes. Um carrega um “oncogene” indutível, ou um gene que pode causar câncer, e o segundo carrega a enzima Cre recombinase, que só é expressa em células da pele e excisa uma sequência que impede a transcrição oncogênica, permitindo assim a expressão oncogene. Para produzir descendentes com ambos transgênicos, ratos heterozigos para cada um são acasalados. Genotipagem é então usada para identificar a prole desejada.
Às vezes pode não ser possível genótipo de ratos antes de um experimento. Por exemplo, neste estudo da frequência cardíaca embrionária, não é viável coletar tecido para genotipagem dos embriões sem interromper seu comportamento. Portanto, as posições de embrião dentro da mãe são primeiro cuidadosamente rotuladas, em seguida, as medidas de ultrassom são registradas. Finalmente, biópsias de cauda são coletadas para determinar o efeito do genótipo na frequência cardíaca.
Este vídeo demonstrou um método de extração de DNA, mas há muitas variações. Por exemplo, o sistema DIRECT PCR requer menos de cinco minutos de digestão tecidual. Além disso, depois de girar para baixo material não digerido, o supernante está pronto para PCR, eliminando a necessidade de purificação de DNA.
Você acabou de ver o guia do JoVE para genotipar ratos. Neste vídeo, revisamos o básico da genética do camundongo, como preparar e analisar amostras de DNA do rato, bem como algumas aplicações práticas desta técnica. Obrigado por assistir!
Genotyping is the process of detecting the presence, or absence, of specific DNA sequences in a particular organism’s genome.
Since genes can influence a mouse’s phenotype, being able to probe an individual mouse’s genetic make-up, or “genotype,” is critical for attributing a phenotype to a specific gene. This video will explore mouse genetics, demonstrate key steps of the genotyping procedure, and explain how to interpret PCR-based genotyping results.
In order to understand what researchers look for when they genotype mice, let’s review some common manipulations to mouse genetics.
To study a gene, scientists frequently disrupt its function by altering its genetic sequence. However, mice are diploid, so they have two copies of any given gene. Since most genes need only one normal copy to function, the mice must be bred to produce an animal with both genes disrupted prior to studying phenotype.
This genotype is called a “homozygous knockout,” or more commonly just “knockout” for short. Conversely, a normal mouse with two functional copies is called a “homozygous wildtype,” or just “wildtype.” Finally, mice with just one functional copy are referred to as “heterozygous,” or “hets.”
Instead of removing genetic material, some experiments require the introduction of DNA sequences into the mouse genome. These inserted DNA fragments are called “transgenes,” and the mice that carry them are “transgenic.” The most common “transgene” introduced into mice is one that drives the expression of green fluorescent protein, or GFP, from jellyfish. By using a tissue-specific promoter (a regulatory sequence that “promotes” the activity of a gene) to drive GFP production, cells from a specific tissue type can be easily identified by green fluorescence.
Because many genetic changes do not lead to a readily observable phenotype, like GFP expression, mice need to be genotyped to determine which specific animal should be used in experiments. Prior to genotyping, mice should be carefully labeled so that they can be identified again later. No, you’ll need something more permanent than that. One common method is to make notches in the ear, such that the position and number of notches corresponds to an ID number.
Once the mouse is labeled, collect a small piece of tissue (typically 2 — 5 mm of tail, using a razorblade or scissors) from which to extract DNA. If you’re collecting tissue from more than one mouse, mark the used segments of the blade to ensure you won’t use the same part on the next animal, which could lead to cross-contamination in your samples.
To begin the process of separating the genetic material from other components of the tissue, the sample is digested in lysis buffer containing the enzyme proteinase K. After an overnight digestion, the sample is centrifuged to pellet hair and any other undigested material. To isolate DNA from the digested lysate, a simple and effective method is to add alcohol to precipitate nucleic acids. After a brief incubation, the sample is centrifuged again to collect the DNA in a pellet.
After washing with 70% ethanol to remove excess salts, the DNA pellet is resuspended in water or buffer and is ready for genotyping.
There are many strategies to determine whether a specific DNA sequence is present in your mice. Most of them require you to first amplify the genetic region of interest using the polymerase chain reaction, or PCR. For more information on how to set up PCR, please check out the JoVE Science Education “Guide to PCR.”
One method to distinguish genotypes is to detect changes in the size of the PCR-amplified fragment. Let’s say that you’re screening for mice with a genetic insertion of 700 base pairs. After PCR, wildtype bands are 200 base pairs, and transgene bands should be 900 base pairs.
After running your PCR, separate the reaction products on an appropriate percentage agarose gel, so you can distinguish the sizes of your fragments. The wildtype control should only have the 200 base pair wildtype band; the transgenic control should only have the one 900 base pair, transgene band; and the het control should have both bands. Finally, a “no template” control is included to be sure the reagents do not contain any contaminating DNA, and should therefore not generate any bands.
Now that we are confident that the controls worked as expected, let’s check out the unknown mice. Since mice 1 and 2 each have only one, wildtype band, they are homozygous wildtype. Mice 4 and 6 each have only one, transgene band, and are therefore homozygous transgenic.
And mice 3 and 5 each have two bands, and are therefore hets.
Finally, when you go back to find the mice with the genotype you want, you just need to match up the pattern of ear notches with the mouse’s ID number.
After gaining an understanding of what genotyping is and how it’s done, let’s look at some examples of why it’s useful.
In some cases, more complex genetic modifications are required to produce the desired phenotype. For example, to establish this model of skin cancer in mice, two transgenes are required. One carries an inducible “oncogene,” or a gene that can cause cancer, and the second carries the enzyme Cre recombinase, which is only expressed in skin cells and excises a sequence that prevents oncogene transcription, thereby allowing oncogene expression. To produce offspring with both transgenes, mice heterozygous for each are mated. Genotyping is then used to identify the desired offspring.
Sometimes it may not be possible to genotype mice before an experiment. For example, in this study of embryonic heart rate, it is not feasible to collect tissue for genotyping from the embryos without disrupting their behavior. Therefore, the embryo positions within the mother are first carefully labeled, then ultrasound measurements are recorded. Finally, tail biopsies are collected to determine the effect of the genotype on heart rate.
This video has demonstrated one method of DNA extraction, but there are many variations. For example, the Direct PCR system requires less than five minutes of tissue digestion. Additionally, after spinning down undigested material, the supernatant is ready for PCR, eliminating the need for DNA purification.
You’ve just watched JoVE’s guide to genotyping mice. In this video, we’ve reviewed the basics of mouse genetics, how to prepare and analyze mouse DNA samples, as well as some practical applications of this technique. Thanks for watching!
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