Name: Derivação sem alimentador de células da crista neural progenitoras pluripotentes humanas de células-tronco (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-22T14:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 33 s
Description: Aprenda a derivar células progenitoras da crista neural a partir de células-tronco pluripotentes humanas usando um protocolo definido sem camada de alimentação. Este método de 18 dias permite estudar doenças relacionadas à crista neural e diferenciar células em linhagens específicas.

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Este trabalho foi apoiado por uma bolsa para pesquisadores avançados da National Science Foundation suíço e através de doações de NYSTEM (C026446; C026447) ea iniciativa de células-tronco Tri-institucional (Fundação Starr).

1. Preparação de Meios de Cultura, pratos revestidos e Manutenção de hPSCs Preparação 1.1 Mídia Nota: Filtro de todos os meios para a esterilização e armazenar a 4 ° C no escuro por até 2 semanas. Números nomes de reagentes, da empresa e catálogo estão listadas na Tabela de Materiais. <ol><li> DMEM/10% de FBS: Combinar 885 mL de DMEM, 100 ml de FBS, 10 ml de Pen / Strep e 5 ml de L-Glutamina. </li><li> HES-médio: Combinar 800 mL de DMEM/F12, KSR 200 ml, 5 ml de L-glutamina, 5 mL de Pen / Strep, 10 ml de solução de MEM essencial mínimo de aminoácidos, 1 ml β-mercaptoetanol. Adiciona-se 10 ng / ml de FGF-2, depois de filtrar o meio. CUIDADO: β-mercaptoetanol é tóxico, evitar a inalação, ingestão e contato com a pele. </li><li> Meio KSR diferenciação: Combinar 820 mL Knockout DMEM, 150 ml KSR, 10 ml de L-Glutamina, 10 ml de Pen / Strep, 10 ml de solução de MEM essencial mínimo de aminoácidos e 1 ml β-mercaptoetanol. </li><li> N2-differentiatino meio: Dissolve-se 12 g do pó em DMEM/F12 980 mL de dH2O, adicionar 1,55 g de glucose, 2 g de bicarbonato de sódio e 100 mg de APO transferrina humana. Misturar 2 mL de dH2O com 25 mg de insulina humana e 40 mL de NaOH 1 N, adicionar a solução dissolvida ao meio. Adicionar 100 ul de di-hidrocloreto de putrescina, selenito de 60 ul, 100 ul de progesterona e trazer o volume até 1 L com dH2O </li></ol> 1.2 Revestimento de placas de cultura <ol><li> Revestimento Matrigel: Thaw 1 ml congelado matrigel alíquota pipetando 19 ml DMEM/F12 sobre a alíquota até que se dissolva. Remover aglomerados fazendo-o passar através de um filtro de células de 40 ^ m e placa 8 ml/10 cm de disco. Incubar os pratos durante 1 hora à temperatura ambiente. Aspirar o matrigel imediatamente antes do plaqueamento das células. Nota: trabalhar rapidamente com matrigel porque podem aglutinar-se a temperaturas acima de 4 ° C. </li><li> Revestimento PO / Lam / FN: Adicionam-se 10 ml de 1x PBS contendo 15 ug / ml de bromidrato de poli-L Ornithin para uma placa de 10 cm. Incubar o prato durante a noite a 37 ° C. Lavar as placas com PBS 1x e depois adicionar 10 ml/10 cm de disco de 1x PBS contendo 2 mg / ml de rato laminina-I e 2 ug / ml de fibronectina. Incubar os pratos durante a noite a 37 ° C. Antes de plaqueamento das células, remova completamente a solução e deixe secar completamente as placas à temperatura ambiente durante 15-20 minutos por pé-los para a cultura parede capô do tecido, sem a tampa. Nota: Os pratos são completamente seco e pronto para o chapeamento de celular quando pode-se ver as estruturas de cristal na superfície (visível a olho nu). As placas podem ser mantidas à temperatura ambiente durante algumas horas a este estado seco. Pratos PO / Lam / FN tem que estar preparado dois dias antes do tempo. Em casos de emergência Lam / FN pode ser incubada por apenas 2-4 horas. No entanto, isso pode arriscar subótimas resultados diferenciação / sobrevivência. </li></ol> 1.3 Manutenção de hPSCs Nota: hPSCs são mantidos em 0,1% de gelatina e rato mitoticamente inactivadas fibroblastos embrionários (MFE) em HES meio suplementado com 10 ng / ml de FGF-2, conforme descrito anteriormente 10,12. As células devem ser divididas a cada 6-8 dias. <ol><li> Revestir uma placa de 10 cm, com 8 ml de gelatina a 0,1% (em 1x PBS sem cálcio ou magnésio), a temperatura ambiente durante 5 min. </li><li> Descongelar MEFs congeladas rapidamente num banho de água a 37 ° C. Adicionar 1 milhão MEFs para 10 ml DMEM/10% de FBS. </li><li> Aspirar a gelatina e placa das células. Incubar a 37 ° C durante pelo menos 6 horas. </li><li> Aspirar o FBS DMEM/10% a partir da placa MEF preparado, lavar placa com 1x PBS uma vez e adicionar 10 ml de HES-meio suplementado com 10 mM Y-27632, dicloridrato. Permitir que o meio para se aquecer a 37 ° C por 20 min. Nota: Para a divisão manual hPSCs uma câmara de fluxo laminar com um microscópio incorporado é usado. No entanto, as células podem ser passadas através de métodos alternativos adequados. </li><li> Dentro de uma câmara de fluxo laminar com um microscópio incorporado, retire colônias separadas usando um levantador de celular e deixá-los flutuar. </li><li> Use umaSeringa de 1 ml para aspirar as colônias flutuantes e despachá-los para o, placa MEF quente fresco. Transferir cerca de um quarto das células para a nova antena. Incubar a 37 ° C. </li><li> Alimente células diariamente com meio HES fresco. </li></ol> 2. Chapeamento de hPSCs para Diferenciação Nota: hPSCs deve ser dividido ou revestida de diferenciação, quando as colônias são grandes, mas ainda tem arestas cortantes com tão pouco como possíveis células diferenciadoras nas suas fronteiras (ver Figura 1B). Quando as células são mantidas através de passagens em manual, as colónias deve ser suficientemente grande para ser facilmente visto pelo olho. Para começar a sentir certo para este ponto do tempo pode-se manter um prato HPSC separado para duas semanas sem passaging e assistir as células alcançar e passar o ponto de tempo ideal para passaging / diferenciá-los. <ol><li> Preparar placas de 10 cm com matrigel 1 h antes de iniciar a diferenciação. Revestimento matrigel bem sucedida pode serverificada com ampliação de 4x. </li><li> Quando os hPSCs está pronto para ser dividida, aspirar o meio e adicionar 4 ml de 0,05% de tripsina-EDTA para as células. </li><li> Agite o prato na horizontal por 2 min vigorosamente até que se possa ver os MEFs como células individuais levantando a placa sob o microscópio. As colônias HPSC permanecer anexado como colônias. </li><li> Imediata e cuidadosamente, aspirar a tripsina e deixar o prato ficar à temperatura ambiente durante 2-4 min. </li><li> Adicionar 2 ml de HES-meio para a placa e com uma pipeta P1000, separar as células. Nota: Se as células não podem ser levantados facilmente para fora da superfície, a placa pode ser incubada vazio à TA por mais 2-3 minutos. </li><li> Transferir as células a 8 mL de HES-meio suplementado com 10 mM Y-27632, dicloridrato. </li><li> Aspirar o matrigel a partir de uma previamente preparada placa de 10 cm. Placa as células em uma relação de 1:1 ou 1:2 (por exemplo: as células de uma placa de 10 cm são divididos em duas placas de 10 cm) sobre a placa de matrigel. Incubar a 37 °C durante a noite. Nota: Esta camada deve resultar em cerca de 100.000 células / cm 2. </li></ol> 3. Indução da diferenciação neural Nota: A diferenciação pode ser iniciado (dia 0), quando as células são 90-100% confluentes (ver Figura 1C), normalmente no dia seguinte. Se a confluência exata ainda não foi alcançado, as células podem ser alimentados diariamente com HES-médio até que estejam prontos para a diferenciação. Alternativamente, o número inicial de células plaqueadas pode ser aumentada. <ol><li> No dia 0-3, as células alimentar diariamente, com 10 ml/10 cm de disco médio KSR diferenciação contendo 0,1 uM e 10 uM LDN193189 SB431542. </li><li> Nos dias 4 e 5 de alimentação das células com 75% de meio KSR-diferenciação e 25% de meio N2-diferenciação tanto contendo LDN193189 e SB431542. </li><li> No dia 6 e 7 de alimentos para as células com 50% de médio KSR-diferenciação e 50% médio N2-diferenciação ambos contendo LDN193189 e SB431542. </li><li> No dia 8 e 9 de alimentação das células com 25% de meio KSR-diferenciação e 75% de meio N2-diferenciação tanto contendo LDN193189 e SB431542. </li><li> No dia 9 e 10 de preparar pratos PO / Lam / FN, tal como indicado em 1.2.2 por replating das células no dia 11. </li><li> No dia 10 células de alimentação com meio N2-diferenciação contendo LDN193189 e SB431542. </li></ol> 4. Repique em gotas para Especificação NC <ol><li> No dia 11 aspirado Lam / FN a partir dos pratos previamente preparados e deixá-las secar completamente à temperatura ambiente, durante 20-30 minutos, tal como explicado em 1.2.2. </li><li> Remova o meio das células em diferenciação, lave as células uma vez com PBS 1x e adicionar 8 mL accutase/10 cm prato. Incubar durante 20 min a 37 ° C. </li><li> Usando um levantador de celular, separar as células e ressuspender-los em Accutase com uma pipeta de 5 ml. Transferir a suspensão para um tubo de 15 ml. </li><li> Adicionar 5 ml de PBS 1x e girar as células durante 5 min a 114 x g. </li><li> Ressuspender as células em 10 ml de 1x PBS. Para garantir uma suspensão única célula, filtrá-los através de um filtro de células 40 mM e contar as células usando um hemocitômetro ou técnica equivalente. </li><li> Rodar as células para baixo e ressuspender-los em meio N2-diferenciação contendo 200 ^ M do ácido ascórbico (AA), 20 ng / ml de BDNF, 100 ng / ml FGF8, 20 ng / mL de SHH, 10 uM Y-27632, dicloridrato, na concentração de 100 mil -150,000 células/10 jil. </li><li> Usando um repeat-pipeta, placa 10 gotas ul próximos uns dos outros, sem lhes tocar na PO secos / Lam / FN 15 centímetros pratos. Nota: Uma placa de 10 cm de células diferenciadas, normalmente resulta em cerca de 2-3 vezes 15 centímetros de pratos ou de aproximadamente 100 x 10 cm ul droplets/15 prato. </li><li> Deixe as gotículas repousar à temperatura ambiente durante 20-30 minutos, em seguida, muito cuidadosamente (para não perturbar as gotas) adicionar 30 ml de N2/AA/BDNF/FGF8/SHH/Y e incubar a 37 ° C. </li><li> No dia 12, cuidadosamente alimentar as células com 20 ml/15 cm de disco N2/AA/BDNF/FGF8/SHH. </li><li> A partir day 14-17 alimentar as células a cada segundo ou terceiro dia com N2/AA/BDNF/FGF8. </li><li> No dia 16 e 17 de preparar pratos PO / Lam / FN para replate células NC após FACS classificação. </li></ol> 5. Fluorescência celular ativado (FACS) de células NC Nota: A preparação das células para FACS requer cerca de 2 horas. <ol><li> No dia 18 de meio de remoção, lave as células uma vez com PBS 1x no prato e adicionar 12 ml de Accutase. Incubar as células durante 20 min a 37 ° C. </li><li> Usando um levantador de célula, separar as células da superfície e deixá-los flutuar. Pipetar as células em suspensão usando uma pipeta de 5 ml, transferi-los para um tubo de 50 ml e adicionar 30 ml de PBS 1x. Rodar as células durante 5 min a 114 x g. </li><li> Usando uma pipeta P1000, ressuspender as células em 1 ml de 2% de FBS / HBSS (HBSS contém 15 mM de HEPES). Adicionar 19 ml de 2% de FBS / HBSS e filtrar as células através de um coador de células de 40 mM para assegurar uma suspensão de células individuais. Incubar as células em gelo durante 15 min para bloqueio de anticorpos e depois contá-los usando um hemocitômetro. </li><li> Rodar as células para baixo e ressuspender deles na concentração de 10 milhões de células / ml em 2% de FBS / HBSS. </li><li> Separe 1 milhão de células cada um para o imaculado, single-coradas (HNK-1 apenas e só p75) e anticorpo secundário manchado apenas (APC só e 488 apenas) FACS controla. </li><li> Adicionar 5 mL de HNK-1 e 5 uL de anticorpo primário p75 por 10 milhões de células em 1 ml de suspensão apropriados para as amostras e incuba-se durante 20 min em gelo. </li><li> Lavar as células em 10 ml de PBS 1X (5 min de centrifugação a 114 xg) e ressuspender as células em 1 ml de 2% de FBS / HBSS. Adicionar 2 mL de APC e 1 ml de 488 anticorpo secundário por 10 milhões de células em 1 ml de suspensão apropriados para as amostras e incuba-se durante 20 minutos em gelo no escuro. Nota: A APC e 488 são os anticorpos secundários utilizados aqui para a coloração HNK-1 e p75, respectivamente. </li><li> Lave as células em 10 ml de 1x PBS, duas vezes, ressuspender 10 milhões de células em 500 ul de2% de FBS / HBSS contendo DAPI (a 0,5 ng / mL) ou alternativo da mancha de células vivas adequada para excluir as células mortas da análise de FACS. </li><li> Transferir as amostras para tubos de FACS apropriar. </li><li> Prepare os tubos de FACS com 0,5 ml de 2% FBS / HBSS para coleta de células. Nota: As células e tubos de coleta são mantidos em gelo, no escuro, durante o tempo de classificação. </li><li> Usando uma máquina de classificação de células com lasers que podem detectar DAPI, APC e 488 tipo DAPI-/HNK-1 + / P75 + células positivas duplas. Nota: o tempo e manipulação das células Preparação leva a uma pequena percentagem de morte celular, DAPI manchas células mortas e, assim, permite que apenas a estas células a ser excluídos da população classificada. Qualquer mancha vivo / morto alternativa funciona igualmente bem para esta finalidade. O próprio DAPI não provocar citotoxicidade na população de células vivas. </li></ol> 6. Repique de células classificadas, NC Manutenção e Expansão Nota: células FACS classificadas deve ser mãolevou com cuidado especial para garantir a sobrevivência ideal. Mantenha-os no gelo até repique eles. Não vórtice ou pipeta-los duramente. As células podem ser ressuspendidas sacudindo o tubo. <ol><li> Após separação FACS, contar as células de CN, em seguida, colocá-los para baixo e ressuspender em meio N2-diferenciação suplementado com 10 ng / mL de FGF2, 20 ng / mL de EGF e 10 uM dicloridrato Y-27632 no volume apropriado para replate los em 30.000 células / 10 gotas ul. </li><li> Completamente seco previamente preparado PO / placas Lam / FN ea placa de aproximadamente 50-70 gotas por 10 centímetros prato. Deixe os pratos repousar à temperatura ambiente durante 20-30 min. </li><li> Adicionar muito cuidado 20 ml/10 cm prato de N2/FGF2/EGF/Y-27632 sem perturbar as gotas. Incubar as células a 37 ° C. </li><li> Alimentar as células a cada 2-3 dias com N2/FGF2/EGF. Nota: células NC são expandidos ou repicadas aproximadamente a cada 4-5 dias ou quando eles começam a se acumulando dentro das gotículas. </li><li> Para a passagem das células NC, retire o meio, wash as células uma vez com PBS 1x e adicionar 8 mL accutase/10 cm prato. Incubar durante 20 min a 37 ° C. </li><li> Pipetar as células para fora da placa com uma pipeta de 5 ml, e transferi-los para um tubo de 15 ml. Adicionar 6 ml de 1x PBS. </li><li> Rodar as células durante 5 min a 114 x g. </li><li> Ressuspender as células em meio N2-diferenciação suplementadas com 10 ng / mL de FGF2, 20 ng / mL de EGF e 10 uM Y-27632, dicloridrato, a fim de ter 20000 células/10 ul gota. </li><li> Replate as células em 10 gotas ul em placas de PO / Lam / FN secas. Deixe os pratos repousar à temperatura ambiente durante 20-30 min. </li><li> Adicione cuidadosamente 20 ml/10 cm prato de N2/FGF2/EGF/Y-27632. Incubar a 37 ° C. Nota: células NC pode ser mantido ou ampliado por até 2 semanas, como uma população progenitor relativamente homogênea. Cultura já pode levá-los a se diferenciar em vários tipos de células descendentes. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm interesses conflitantes para divulgar.

Para a diferenciação de células bem sucedida R-NC a partir de células estaminais embrionárias humanas / hiPSCs as seguintes considerações devem ser feitas. É crítico para o trabalho sob condições de cultura estéril em todos os momentos. Em particular, é importante testar culturas HPSC de contaminação por micoplasma regular, uma vez que esta contaminação irá dificultar a diferenciação com êxito, mas não pode ser facilmente detectada visualmente em culturas HPSC. A diferenciação de R-NC deve ser iniciada com 90-100% densi...

Células estaminais embrionárias humanas (hESC) e células-tronco pluripotentes induzidas pelo homem (hiPSC) mostraram um imenso potencial, em particular para a investigação e tratamento futuro de doenças humanas para as quais nem bons modelos animais nem tecidos primários estão disponíveis. Exemplos de aplicação para a tecnologia de células estaminais embrionárias humanas / hiPSC são os seguintes: Células de interesse particular podem ser gerados a partir de células estaminais embrionárias humanas / hiPSCs para a medicina regenerativa em quantidade ilimitada 1. As células podem ser produzidos a partir de pacientes portadores de uma doença específica e utilizado para estabelecer, em modelos de doenças in vitro, 2,3. Tais modelos de doenças pode ser empregado para a triagem de drogas em grande escala na busca de novos compostos de drogas 4, bem como testes de drogas existentes para a eficácia e toxicidade 5. Em modelos de doenças in vitro podem levar à identificação dos mecanismos da doença da novela. Para todas as aplicações da tecnologia de células estaminais embrionárias humanas / iPSC é importante trabalhar com específica, bem definirtipos d célula afetada na doença de interesse. Assim, a disponibilidade de protocolos de diferenciação in vitro sólidos e reprodutíveis é fundamental para todas as aplicações da tecnologia de células estaminais embrionárias humanas / hiPSC. Protocolos são desejáveis ​​que mostram variabilidade mínima, custa tempo, esforço, dificuldade e custo, bem como a reprodutibilidade máxima entre linhas hESC / hiPSC e diferentes pesquisadores. Crista neural (NF), as células surgem durante neurulação vertebrado entre a epiderme e o epitélio neural. Eles proliferam e migram extensivamente durante todo o desenvolvimento do embrião, dando origem a uma diversidade impressionante de tipos de células descendentes, incluindo o osso / cartilagem, o esqueleto craniofacial, nervos sensoriais, as células de Schwann, os melanócitos, células musculares lisas, neurônios entéricos, os neurônios autonômicos, células cromafins , células do septo cardíaco, dentes e adrenal / tireóide células glandulares 6. Assim, células de CN são um tipo de célula atraente para o campo de células-tronco e importante para oa modelagem de uma variedade de doenças, tais como a doença de Hirschsprung, 7, disautonomia familiar 8, bem como os cancros, tais como o neuroblastoma 9. Além disso, eles oferecem a possibilidade de estudar os aspectos do desenvolvimento embrionário humano in vitro. A atualmente disponíveis e amplamente aplicado em protocolo de diferenciação in vitro para a derivação de células da CN de hESCs 10,11 requer até 35 dias de diferenciação e que envolve indução neural em células alimentadoras, como as células do estroma MS5 e é, portanto, realizadas em condições mal definidas. Embora possa ser em maior escala para gerar grandes quantidades de células da CN, por exemplo necessário para high-throughput screening de drogas 4, este é o trabalho e onerosa. Além disso, envolve passaging manual das rosetas neurais, que podem ser difíceis de reproduzir e, portanto, é sujeito a variabilidade global, em particular quando é aplicado a uma grande variedade de células estaminais embrionárias humanas, ou hiPSClinhas. Aqui, a derivação gradual de células NC em um protocolo de 18 dias que está livre de células alimentadoras é mostrado. Este método é mais curto e mais definido do que o protocolo usado atualmente. Além disso, ele é muito robusto na geração de células NC entre diferentes linhas hiPSC. Importante, é mostrado que as células NC gerados por ambos os protocolos surgem na fronteira de rosetas neurais (doravante denominado roseta-NC ou R-NC). As células derivadas utilizando um dos dois protocolos olhar morfologicamente idênticos, eles expressam os mesmos marcadores NC e se agrupam em análise de microarray. Células NC derivadas usando o novo protocolo (R-NC) são funcionais, semelhantes às células NC derivados usando o protocolo de idade (MS5-R-NC) de tal forma que eles podem migrar e diferenciar-se em neurónios mais. Portanto, as células podem ser utilizadas simultaneamente com as células MS5-R-NC. O protocolo de células R-NC para a derivação de células a partir de células estaminais embrionárias humanas NC / iPSC será útil para todas as aplicações da tecnologia hESC / iPSC envolvendo a linhagem NC. &lt;/ P&gt;

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino (FBS)</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11150</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>11330-032</td><td></td></tr><tr><td>Knockout Serum Replacement</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>10828-028</td><td>Lote deve ser testado</td></tr><tr><td>L-Glutamina</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>Penicinina/Estreptomicina</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>MEM solução de aminoácidos essenciais mínimos&nbsp;</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Mercaptoetanol&nbsp;</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>21985-023</td><td>tóxico</td></tr><tr><td>FGF humano recombinante básico (FGF2)</td> <td>R & D Systems</td><td>233-FB-001MG/CF</td><td></td></tr><tr><td>Knockout DMEM</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>10829-018</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 em pó&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>12500-096</td><td></td></tr><tr><td>Glicose</td><td>Sigma</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato de Sódio&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>APO transferrina humana</td><td>Sigma</td><td>T1147</td><td></td></tr><tr><td>Insulina humana&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>I2643</td><td></td></tr><tr><td>dicloridrato de putriscina</td><td>Sigma</td><td>P5780</td><td></td></tr><tr><td>Selenita</td><td>Sigma</td><td>S5261</td><td></td></tr><tr><td>Progesterona</td><td>Sigma</td><td>P8783</td><td></td></tr><tr><td>Matriz matrigel</td><td>BD Biosciences</td><td>354234</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L Bromidrato de ornitina</td><td>Sigma</td><td>P3655</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Laminin-I</td><td>R& AMP; D Systems</td><td>3400-010-01</td><td></td></tr><tr><td>Fibronectina</td><td>BD Biosciences</td><td>356008</td><td></td></tr><tr><td>Dispase in Hank's Balanced Salt Solution 5 U/ml</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>7013</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA&nbsp;</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632 dicloridrato</td><td>Tocris-R& D Systems</td><td>1254</td><td></td></tr><tr><td>LDN193189</td><td>Stemgent</td><td>04-0074</td><td></td></tr><tr><td>SB431542</td><td>Tocris-R& D Systems</td><td>1614</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Innovative Cell Technologies</td><td>AT104</td><td></td></tr><tr><td>Ácido Ascórbico&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A4034</td><td></td></tr><tr><td>BDNF</td><td>R& D Systems</td><td>248-BD</td><td></td></tr><tr><td>FGF8</td><td>R& D Systems</td><td>423-F8</td><td></td></tr><tr><td>Mouse ouriço sônico recombinante (SHH)</td><td>R& D Systems</td><td>464SH</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>14170-112</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>1563-080</td><td></td></tr><tr><td>Recombinante humano EGF</td><td>R& D Systems</td><td>236EG</td><td></td></tr><tr><td>gelatina (PBS sem Mg / Ca)</td> <td>em casa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Anticorpos:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Anti HNK-1 / N-Cam (CD57) mIgM</td><td>Sigma</td><td>C6680-100TST</td><td>lote deve ser testado</td></tr><tr><td>Anti-p75 mIgG1 (receptor do fator de crescimento nervoso)</td> <td>Advanced Targeting Systems</td><td>AB-N07</td><td>lote deve ser testado</td></tr><tr><td>APC rato anti-mIgM</td><td>BD Parmingen</td><td>550676</td><td>lote deve ser testado</td></tr><tr><td>AlexaFluor 488 cabra anti-rato IgG1&nbsp;</td><td>O lote Invitrogen</td><td>A21121</td><td>deve ser testado</td></tr><tr><td>Anti Oct4 mIgG2b (usado na diluição 1:200)</td><td>O lote Santa Cruz</td><td>sc-5279</td><td>deve ser testado</td></tr><tr><td>Material/Equipamento:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fibroblastos embrionários de camundongo (7 milhões de células/frasco)</td><td>GlobalStem</td><td>GSC-6105M</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultura de células: placas de 10 cm e 15 cm, tubos de centrífuga, tubos FACS,&nbsp; pipetas, pipeta dicas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hematocitômetro</td><td></td><td></td><td></td>de vidro</tr><tr><td>Centrífuga</td><td></td><td></td><td></td>para cultura</tr><tr><td>de células Incubadora de cultura de células (CO2, umidade e temperatura controladas)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Capa de fluxo laminar de cultura de células com microscópio</td><td></td><td></td><td></td>embutido</tr><tr><td>Capuz</td><td></td><td></td> <td>de biossegurança para cultura de células</td></tr><tr><td>Máquina de classificação de células, i.e. MoFlo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscópio</td><td></td><td></td><td></td>invertido</tr><tr><td>Seringa TB de 1 ml 27Gx1/2</td><td>BD Biosciences</td><td>309623</td><td></td></tr><tr><td>Elevador de células Polietileno</td><td>Corning Incorporated</td><td>3008</td><td></td></tr></tbody></table>

derivação sem alimentador de células da crista neural progenitoras pluripotentes humanas de células-tronco

Feeder-free Derivation of Neural Crest Progenitor Cells from Human Pluripotent Stem Cells

Células-tronco pluripotentes humanas (hPSCs) têm um grande potencial para o estudo do desenvolvimento embrionário humano, para a modelagem de doenças humanas no prato e como fonte de células para transplante para aplicações regenerativas após doença ou acidentes. Células da crista neural (NF) são os precursores para uma grande variedade de células somáticas adultas, tais como células do sistema nervoso periférico e as células gliais, os melanócitos e células mesenquimais. Eles são uma valiosa fonte de células para estudar aspectos do desenvolvimento embrionário humano, incluindo a especificação destino e migração celular. Além disso a diferenciação de células progenitoras NC em tipos de células diferenciados terminalmente oferece a possibilidade de modelar doenças humanas in vitro, investigar os mecanismos da doença e para gerar células medicina regenerativa. Este artigo apresenta a adaptação de um protocolo atualmente disponível em vitro de diferenciação para a derivação de células a partir de NC hPSCs. Este novo protocolo requer 18 dias de diferentiation, é, facilmente escalável e altamente reprodutível entre (hiPSC) linhas humana (hESC) linhas de células estaminais embrionárias, bem como humana induzida de células-tronco pluripotentes sem alimentador. Ambos os antigos e novos protocolos de produzir células NC de igual identidade.

As duas melhorias mais importantes do protocolo R-NC sobre o protocolo MS5-R NC-11, são as condições de diferenciação definidos isentos de alimentação e a redução global do requisito de tempo. Células alimentadoras MS5 13 são da medula óssea células estromais derivadas de ratinho que foram mostrados para apoiar a diferenciação neural de hESCs 14. HESCs cultivadas em células alimentadoras MS5 em estruturas de baixa densidade forma epiteliais e rosetas neurais 15, na periferia d...

Crista neural (CN), as células derivadas de células-tronco pluripotentes humanas (HPSC) tem um grande potencial para a modelagem de desenvolvimento humano e de doenças e para terapias de substituição celular. Aqui, uma adaptação livre de alimentador do atualmente utilizado<em&gt; In vitro</em&gt; Protocolo de diferenciação para a derivação de células da CN de hPSCs é apresentado.

Derivação sem alimentador de células da crista neural progenitoras pluripotentes humanas de células-tronco

Human pluripotent stem cells (hPSCs) have great potential for studying human embryonic development, for modeling human diseases in the dish and as a ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar células progenitoras de crista neural a partir de células-tronco pluripotentes humanas por meio de um protocolo definido, reprodutível e rápido. Essas células podem então ser utilizadas para o estudo de doenças relacionadas à crista neural in vitro ou para a diferenciação contínua dessas células em células derivadas. Isso é realizado inicialmente por meio do plaqueamento de uma alta densidade de células-tronco pluripotentes humanas em monocamada sobre matrigel.O segundo passo consiste em diferenciar as células em células neuroepiteliais utilizando uma sequência e combinação definidas de moléculas pequenas que afetam vias de sinalização-chave. Em seguida, as células neuroepiteliais são replatadas e diferenciadas ainda mais em células precursoras da crista neural. O passo final é isolar as células da crista neural por meio de triagem celular ativada por fluorescência.No final, ensaios de imunofluorescência e funcionais, como a capacidade da célula de migrar, são utilizados para demonstrar que células da crista neural adequadas foram geradas. A principal vantagem desta técnica em relação aos protocolos existentes para a derivação de células

feeder-free-derivation-neural-crest-progenitor-cells-from-human

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Para cultivar células-tronco da crista neural (NCSC) in vitro, um meio especial (NCSCM) é necessária. Parte essencial da NCSCM é extrair pinto embrião (CEE). Nós aqui descrever as técnicas precisas para produzir uma quantidade maximizada de puro e de alta qualidade CEE, incluindo detalhes como o isolamento, maceração, centrifugação, filtração e processos.

Produção de Extrato de embrião de galinha para o cultivo de células-tronco neurais murino Crest

Nós estabelecemos um protocolo para indução de neuroblastos direta de pluripotentes células estaminais embrionárias humanas mantidas sob condições definidas com pequenas moléculas, que permite a derivação de uma grande oferta de recursos humanos progenitores neurais e células neuronais tipos no desenvolvimento neural do SNC para reparação.

Derivação eficiente dos recursos humanos Progenitores Neuronal e Neurônios de pluripotentes células estaminais embrionárias humanas com a indução de moléculas pequenas

Isolamento de crista neural embrionário a partir do tubo neural facilita o uso...

Isolamento e cultivo de células da crista neural do tubo neural embrionário murino

Os protocolos para a diferenciação neuronal de células pluripotentes estaminais humanas (hPSCs) são muitas vezes demorado e requer habilidades substanciais cultura de células. Aqui, nós adaptamos um procedimento de diferenciação pequena molécula baseada em um formato de placa de multititre, permitindo a geração de simples, rápido e eficiente de neurônios humanos de uma maneira controlada.

Geração rápida e eficiente de neurônios a partir de células-tronco pluripotentes humanas, em um formato de placa Multititre

Células-tronco pluripotentes, tanto as células-tronco embrionárias ou pluripotentes induzidas (iPS), constituem uma valiosa fonte de células diferenciadas humanos, incluindo os cardiomiócitos. Aqui, vamos nos concentrar na indução cardíaco de células iPS, mostrando como usá-los para obter os cardiomiócitos humanos funcionais através de um protocolo de corpos baseada embryoid.

Geração de cardiomiócitos Humanos: Um Protocolo de Diferenciação de Feeder livres Humanos células-tronco pluripotentes induzidas

Geração de células estaminais pluripotentes induzidas proporciona perspectivas fascinantes para a derivação de transplantes autólogos. No entanto, a progressão através de um estado pluripotente e trabalhoso re-diferenciação ainda dificulta a tradução clínica. Aqui nós descrevemos a derivação de fibroblastos humanos adultos ea sua conversão direta em células progenitoras neurais induzidos ea subsequente diferenciação em linhagens neuronais.

Derivação de adultos fibroblastos humanos e sua conversão direta em Expansível Neural células progenitoras

Este trabalho descreve um protocolo in vitro de diferenciação para produzir pigmentadas, melanócitos maduros a partir de células-tronco pluripotentes humanas através de uma crista neural e melanoblasto estágio intermediário usando um protocolo sem alimentador de 25 dias.

Derivação sem alimentador de melanócitos a partir de células-tronco pluripotentes humanas

Aqui, nós apresentamos um protocolo para formar precisamente o endotélio hemogenic das pilhas de haste pluripotentes humanas em uma condição do alimentador-e do Xeno-livre. Este método terá amplas aplicações na modelagem de doenças e triagem para compostos terapêuticos.

Diferenciação do endotélio hemogênico de células-tronco pluripotentes humanas em um alimentador-e condição definida livre de Xeno

Neste protocolo, descrevemos uma estratégia de diferenciação estável e altamente eficiente para a geração de neurônios simpáticos pós-ganglionários a partir de células-tronco pluripotentes humanas. Este modelo disponibilizará neurônios para o uso de estudos de múltiplos distúrbios autônomos.

Diferenciação eficiente de neurônios simpáticos pós-ganglionários usando células-tronco pluripotentes humanas em condições de cultura sem alimentadores e quimicamente definidas

Apresentamos um protocolo de diferenciação in vitro tridimensional (3D) gerando neuroesferas de tamanho reprodutível para produzir células da crista neural craniana a partir de células-tronco embrionárias de camundongos. Mostramos que essa metodologia reduz a variabilidade em comparação com os protocolos anteriores e como ela pode ser usada para ensaios multiplexados para estudar o desenvolvimento das células da crista neural craniana.

Células de crista neural craniana tridimensionais in vitro protocolo de diferenciação para ensaio multiplexado

Aprenda a derivar células progenitoras da crista neural a partir de células-tronco pluripotentes humanas usando um protocolo definido sem camada de alimentação. Este método de 18 dias permite estudar doenças relacionadas à crista neural e diferenciar células em linhagens específicas.

Derivação sem alimentador de células da crista neural progenitoras pluripotentes humanas de células-tronco

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