Name: Geração de Transgênicos Hydra Por microinjeção de embriões (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 10 s
Description: Aprenda a gerar linhagens transgênicas de Hydra por microinjeção de DNA plasmidial em embriões. Este método permite estudar função gênica, dinâmica celular e expressão de genes em biologia do desenvolvimento.

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Este trabalho foi apoiado por uma G. Harold &amp; Leila Y. Mathers Award para HL e uma subvenção NIH (R24 GM080527) para RESCEJ foi um NRSA Pós-Doutorado (NIH F32GM9037222) e está apoiada por uma Scientist Award Desenvolvimento Mentored Pesquisa da National Instituto do Envelhecimento (K01AG04435). Gostaríamos de agradecer aos revisores pelos comentários úteis.

1 Preparação de plasmídeo de DNA, agulhas e injeção Pratos <ol><li> Prepare o DNA de plasmídeo utilizando um kit de alta velocidade ou Maxi Midi e concentra-se o ADN para 2,5 mg / ml usando a precipitação com etanol. O sedimento de DNA deve ser dissolvido em água livre de nuclease desionizada. Armazenar o ADN em 10-20 mL alíquotas a -20 ° C. (Ver Quadro Suplementar 1 para uma lista de vetores disponíveis) </li><li> Faça um prato de injeção utilizando agarose para construir uma calha para a realização de embriões em uma placa de Petri de 100 x 15 mm. <ol><li> Coloque uma lâmina de microscópio de vidro de 75 x 50 em um 100 x 15 mm numa caixa de Petri com um ângulo. Despeje a cerca de 50 ml de 2% de agarose em forma derretida Hidra 24 para a placa de Petri. Alternativamente, despeje a agarose para o prato primeiro e flutuar um &quot;molde microinjeção Fish&quot; no topo. </li><li> Após o ágar ter solidificado, remover a lâmina de vidro, ou o molde. Se foi usada uma lâmina de vidro, corte o excesso de agarose com um bla navalhade formar uma parede. Despeje meio Hydra no prato e usá-lo imediatamente ou armazená-lo a 4 ° C até ser necessário. Nota: pratos de injecção pode ser reutilizado se for armazenado a 4 ° C entre as utilizações. </li></ol></li><li> Puxar agulhas capilares de vidro de borossilicato com um filamento no puxador de micropipeta usando as seguintes condições: 525 aquecer, puxar 75, a velocidade de 100, o tempo da loja 50. as agulhas, pressionando-os para uma estreita faixa de argila, em uma placa de Petri de tal modo que eles são mantida paralelamente ao fundo do prato. </li><li> Para preparar a solução para injecção, combinar 3 uL de solução de ADN de plasmídeo de 2,5 mg / mL com 2 mL de 10% de vermelho de fenol. Vortex a solução brevemente e em seguida girar durante 10 minutos à velocidade máxima numa microcentrífuga para remover quaisquer partículas que podem entupir a agulha. </li><li> Sob um microscópio de dissecação, o clipe de agulha alguns milímetros da ponta com uma pinça para criar uma pequena abertura. Nota: Existe uma certa flexibilidade no tamanho adequado do abertoing porque a pressão pode ser ajustada na etapa 3.3 para acomodar esta variação. </li><li> Colocar a placa de Petri de modo a que é segura a agulha na posição vertical, com a ponta para baixo. Coloque a agulha com cerca de 0,5 ml de solução de injecção por pipetagem do líquido para dentro da extremidade posterior da agulha. Permitir uma acção capilar para puxar a solução para dentro da ponta da agulha. </li></ol> 2 Preparação de embriões para Injeção <ol><li> Em uma base diária digitalizar a cultura tensão Hydra AEP para pólipos produtoras de ovos. Colete estes pólipos e retirá-las em um prato de cultura independente. Observe estes pólipos cada poucas horas durante o dia para monitorar o progresso de formação do ovo. Quando os ovos quebram através do ectoderma e sentar-se em um anel de células ectodérmicas retraídos eles estão prontos para a injeção 25. Colocar estes pólipos em um prato com vários hidra que têm testículos durante pelo menos 1 hora antes da injecção para permitir a fertilização. Hidra &lt;/ Em&gt; machos vai liberar esperma sem qualquer manipulação especial. </li><li> Se as fêmeas são encontrados na colónia AEP com ovos completamente formados, que são aproximadamente de 400 um de diâmetro de 25, ou de 1 a 8, embriões nos estágios de células, também recolher estes injectável. Injetar imediatamente embriões que começaram clivagem. Nota: Não é possível dizer a diferença entre os ovos totalmente formadas e zigotos unicelulares, portanto, estes devem ser incubadas com os homens antes da injeção. </li><li> Antes da injecção, remover a maior parte do tecido parental acima e abaixo do embrião utilizando um bisturi, com uma lâmina de # 15. Deixar apenas o embrião com um pequeno pedaço de coluna corpo ligado, para ser utilizada para manipular o embrião com uma pinça, se necessário. Nota: O tecido que é dissecado a partir do embrião irá regenerar e deve ser guardada para assegurar que permanecem fêmeas na colónia Hidra. </li><li> Utilizando uma pipeta de Pasteur, mover os embriões para o prato de injecção, dispondo-os em paralelo à parede docalha de agarose. </li></ol> 3. microinjecção de ADN do plasmídeo <ol><li> Monte o microinjetor em um suporte magnético que fica em uma chapa de ferro. Montar o suporte da injecção, que é a parte da microinjector que prende a agulha, em um micromanipulador joystick. Monte o manipulador joystick para a chapa de ferro, com um suporte magnético. Coloque esta todo o conjunto para cima no lado direito de um microscópio de dissecção e posiciona o porta-injecção de modo que seja visível no campo de observação. </li><li> Coloque o prato de injecção com embriões sob o microscópio de dissecação, orientada de tal modo que a parede vertical da calha de agarose é para a esquerda. Inserir a agulha no suporte de injecção e diminuir a ponta da agulha para o meio de Hidra no prato. </li><li> Lentamente, rodar o botão da seringa na direcção dos ponteiros do relógio até que o óleo mineral preenche a parte superior da agulha e um fluxo constante de solução de injecção é observado sai da agulha no hidrum meio. Se o fluxo é muito forte, diminuir a pressão, girando o botão para a esquerda. Praticar este passo para obter rotineiramente uma pressão adequada, o que depende do tamanho da abertura da agulha (ou seja, a forma como a agulha foi cortado no passo 1.5). Nota: Se a corrente é muito forte, o embrião não irá sobreviver a injeção. </li><li> Durante a visualização através de um microscópio de dissecação, movimentar o prato de injecção de modo a que o primeiro embrião está no centro do campo. Mover a agulha de modo que ela está a tocar que embrião. Usar o micromanipulador para perfurar o embrião com a agulha. Nota: A parede vertical da calha agarose vai manter o embrião do que está sendo deixado de lado pela agulha. </li><li> Permitir que a solução de injeção a fluir para o embrião 1 ou 2 segundos e, em seguida, remover a agulha rapidamente. Se o embrião tem mais de uma célula, injectar cada célula individual. Use uma pinça para reorientar o embrião para alinhar a célula seguinte, com a ponta da agulha. </li><li> Após o primeiro embryo é injectado, movimentar o prato de modo a que o lado do embrião está na posição de injecção e repetir o procedimento; continuar até que todos os embriões foram injectados. </li></ol> 4 A cultura ea eclosão dos embriões <ol><li> Mover todos os embriões injectados em um prato com algumas hidra que têm testículos (isto é para assegurar que todos os embriões são fertilizados). Incubar os embriões em um 18 ° C incubadora, enquanto eles continuam a embriogênese. </li><li> Uma vez que a fase de cutícula é atingido, mover cada embrião injectado para um poço individual de uma placa de 24 poços cheios com meio de hidra. </li><li> Incubar os embriões injectados durante 2 semanas no escuro a 18 ° C. </li><li> Após o período de incubação duas semanas, verifique cada embrião injetado sob o microscópio de dissecação. Observe quaisquer casos em que o embrião cutícula estágio se soltou do pequeno pedaço de tecido parental eo tecido dos pais tenha regenerado. Remover este pólipo regenerado imediatamente para que ele não é mistaken de um novo filhote. </li><li> Mova o prato de embriões injetados sob a luz do aquário à temperatura ambiente. Verifique as placas de cada dia e recolher filhotes. Novos filhotes será branco porque a cor-de-rosa típico de pólipos Hydra vem da Artemia eles comem. </li><li> Observe os filhotes debaixo de um microscópio de fluorescência para detectar a expressão do transgene. </li></ol>

<ol><li>Wittlieb, J., Khalturin, K., Lohmann, J. U., Anton-Erxleben, F., Bosch, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+Hydra+allow+in+vivo+tracking+of+individual+stem+cells+during+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Transgenic Hydra allow in vivo tracking of individual stem cells during morphogenesis.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 6208-6211 (2006).</li>
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<li>Holstein, T. W., Hobmayer, E., David, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pattern+of+epithelial+cell+cycling+in+hydra%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Pattern of epithelial cell cycling in hydra.</a> Dev Biol. 148, 602-611 (1991).</li>
<li>Dubel, S., Hoffmeister, S. A., Schaller, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+pathways+of+ectodermal+epithelial+cells+in+hydra%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%22%5BJournal%5D)">Differentiation pathways of ectodermal epithelial cells in hydra.</a> Differentiation. 35, 181-189 (1987).</li>
<li>Khalturin, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+stem+cells+in+Hydra+reveal+an+early+evolutionary+origin+for+key+elements+controlling+self-renewal+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Transgenic stem cells in Hydra reveal an early evolutionary origin for key elements controlling self-renewal and differentiation.</a> Dev Biol. 309, 32-44 (2007).</li>
<li>Bosch, T., David, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+Cells+of+Hydra+magnipapillata+can+differentiate+into+somatic+cells+and+germ+line+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Stem Cells of Hydra magnipapillata can differentiate into somatic cells and germ line cells.</a> Dev Biol. 121, 182-191 (1987).</li>
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<li>Glauber, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+small+molecule+screen+identifies+a+novel+compound+that+induces+a+homeotic+transformation+in+Hydra%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A small molecule screen identifies a novel compound that induces a homeotic transformation in Hydra.</a> Development. 140, 4788-4796 (2013).</li>
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<li>Juliano, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PIWI+proteins+and+PIWI-interacting+RNAs+function+in+Hydra+somatic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">PIWI proteins and PIWI-interacting RNAs function in Hydra somatic stem cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 337-342 (2014).</li>
<li>Nishimiya-Fujisawa, C., Kobayashi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Germline+stem+cells+and+sex+determination+in+Hydra%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Germline stem cells and sex determination in Hydra.</a> Int J Dev Biol. 56, 499-508 (2012).</li>
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<li>Nakamura, Y., Tsiairis, C. D., Ozbek, S., Holstein, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoregulatory+and+repressive+inputs+localize+Hydra+Wnt3+to+the+head+organizer%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Autoregulatory and repressive inputs localize Hydra Wnt3 to the head organizer.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 9137-9142 (2011).</li>
<li>Gee, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((beta-catenin+plays+a+central+role+in+setting+up+the+head+organizer+in+hydra%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">beta-catenin plays a central role in setting up the head organizer in hydra.</a> Dev Biol. 340, 116-124 (2010).</li>
<li>Fraune, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+an+early+branching+metazoan%2C+bacterial+colonization+of+the+embryo+is+controlled+by+maternal+antimicrobial+peptides%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">In an early branching metazoan, bacterial colonization of the embryo is controlled by maternal antimicrobial peptides.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 18067-18072 (2010).</li>
<li>Bridge, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FoxO+and+stress+responses+in+the+cnidarian+Hydra+vulgaris%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">FoxO and stress responses in the cnidarian Hydra vulgaris.</a> PLoS One. 5, e11686(2010).</li>
<li>Boehm, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FoxO+is+a+critical+regulator+of+stem+cell+maintenance+in+immortal+Hydra%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">FoxO is a critical regulator of stem cell maintenance in immortal Hydra.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 19697-19702 (2012).</li>
<li>Franzenburg, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MyD88-deficient+Hydra+reveal+an+ancient+function+of+TLR+signaling+in+sensing+bacterial+colonizers%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">MyD88-deficient Hydra reveal an ancient function of TLR signaling in sensing bacterial colonizers.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 19374-19379 (2012).</li>
<li>Dana, C. E., Glauber, K. M., Chan, T. A., Bridge, D. M., Steele, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incorporation+of+a+horizontally+transferred+gene+into+an+operon+during+cnidarian+evolution%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Incorporation of a horizontally transferred gene into an operon during cnidarian evolution.</a> PLoS One. 7, e31643(2012).</li>
<li>Lenhoff, H. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLenhoff%2C+HM+%22Hydra%3A+Research+Methods%22">Hydra: Research Methods</a>. Lenhoff, H. M. , Plenum Press. Ch. 4 29-34 (1983).</li>
<li>Miller, M. A., Technau, U., Smith, K. M., Steele, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oocyte+development+in+Hydra+involves+selection+from+competent+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Oocyte development in Hydra involves selection from competent precursor cells.</a> Dev Biol. 224, 326-338 (2000).</li>
<li>Lenhoff, H. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLenhoff%2C+HM+%22Hydra%3A+Research+Methods%22">Hydra: Research Methods</a>. Lenhoff, H. M. , Plenum Press. Ch. 8 53-62 (1983).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar

Hydra rotineiramente reproduz de forma assexuada, mas requer estímulos ambientais para começar gametas produtores. Esses estímulos não são bem definidos para a maioria das espécies de Hydra e podem variar de estirpe para estirpe. Um obstáculo significativo para a produção de Hidra transgénico é a obtenção de embriões numa base regular porque pode ser difícil num ambiente laboratorial para induzir a tornar-se Hydra sexual. A estirpe AEP 25, no entanto, produz gâmetas prontam...

Hydra foi usado para estudar a regeneração, formação de padrões, e as células-tronco para cerca de 250 anos 2 Hydra tem um plano corporal simples, que consiste de três linhagens de células:. Epitelial ectodérmica, endodérmica epitelial e intersticial. O corpo tubular é formado por o ectodérmico e linhagens epiteliais da endoderme, cada um dos quais é uma camada única de células. Todas as células epiteliais no corpo da coluna são mitótico. Quando as células epiteliais são deslocados para as extremidades 3, a cabeça (boca e tentáculos) na extremidade bucal ou do pé (disco basal) na extremidade aboral, eles prendem na fase G2 do ciclo celular e alterar o destino da célula 4. As células da linhagem intersticial residem dentro dos interstícios entre as células epiteliais. Esta linhagem é apoiada por células-tronco multipotentes que estão localizados na camada epitelial ectodérmica da coluna corpo 5. As células estaminais intersticiais dar origem a três cel somáticatipos l (nervos, células glandulares, e nematocytes) e as células germinativas 6,7. Como um membro do filo Cnidaria, o grupo irmão de todos os bilaterians, Hydra pode lançar luz sobre os processos biológicos fundamentais compartilhados entre os animais multicelulares. Até recentemente, esses esforços foram impedidos pela falta de métodos confiáveis ​​para a perturbação da função dos genes. No entanto, com o desenvolvimento de metodologia transgênico 1, somos agora capazes de tirar o máximo proveito de Hydra para obter uma melhor compreensão dos mecanismos básicos comuns a animais multicelulares, como a função de células-tronco, regeneração e padronização. Linhas Transgénicas Hydra são estabelecidos por injecção de plasmídeo de ADN em embriões, o que resulta na integração aleatória e expressão quimérico com uma frequência significativa de filhotes. Uma linha com expressão uniforme numa linhagem particular pode ser estabelecida por propagação vegetativa. A capacidade de propagar clonalmente transgenic Hidra linhas é uma vantagem sobre a maioria dos modelos de animais, que pode ser propagado somente por reprodução sexuada. Além disso, as células transgénicas podem ser facilmente rastreados in vivo, devido à transparência do animal e a ausência de proteínas fluorescentes endógenos 8. Nos sete anos desde as primeiras linhas Hydra transgênicas foram feitas 1, essas linhas foram usados ​​para uma variedade de aplicações. Expressão de proteínas fluorescentes em diferentes tipos de células tornou possível controlar o movimento celular, observar as alterações na forma da célula, e rastrear destinos celulares, tanto em condições de tipo selvagem e depois perturbação química 1,5,9-12. Além disso, a expressão de proteínas fluorescentes diferentes nas diversas linhagens de FACS permite o isolamento de populações de células específicas. Esta técnica tem sido utilizada para o seqüenciamento de mRNAs específicos de células-tronco e de linhagem específica pequenos RNAs 13,14. Enquanto o promotor deum dos dois genes da actina Hidra tem sido mais amplamente utilizado, a poucos tipos de células-promotores específicos foram identificados e utilizados para dirigir a expressão da GFP em Hydra 9,11,15,16 transgénico. No futuro, os promotores específicos do tipo de célula irá permitir a observação e recolha de qualquer tipo de célula específico. Além disso, uma abordagem transgénica foi utilizado com sucesso para definir os elementos reguladores que actuam em cis do promotor Wnt3 17. O desenvolvimento de métodos transgênicos em Hydra oferece uma abordagem robusta para testar a função dos genes pela expressão ectópica, superexpressão e knockdown. Os animais transgénicos que foram feitos expressar as proteínas marcadas com fluorescência, de modo a examinar tanto a função e localização celular de 18-20. Além disso, a expressão de ARN de gancho de cabelo na 3&#39;UTR de um transgene GFP leva a knockdown de genes alvo 21,22. Nessas abordagens GFP é necessário para identificare rastrear o tecido transgénico durante a criação da linha transgénica. No entanto, é provável que, em alguns casos, a molécula GFP iria interferir com a função da proteína etiquetada. Um estudo recente demonstra que os genes Hydra podem ser dispostas numa configuração operão, por exemplo, transcrições policistrónico são feitos, os quais são então separados por adição líder trans-splicing e traduzidos em separado 23. Ao colocar um gene que codifica uma proteína ou um gancho de cabelo de ARN na posição a montante de um operão e um gene de proteína fluorescente na posição de jusante, pode-se controlar o tecido transgénico sem ter que marcar o gene que codifica a proteína ou RNA hairpin. Este método tem sido utilizado para expressar um gancho de cabelo de ARN de um operão com DsRed2 configuração, a fim de alcançar gene knockdown 14.

<table><tbody><tr><td>AEP Hydra Strain</td><td></td><td></td><td>E-mail: Celina Juliano na celina.juliano@yale.edu ou Hiroshi Shimizu bubuchin2006@yahoo.co.jp</td></tr><tr><td>Kit Maxi de Alta Velocidade</td><td>Qiagen</td><td>12662</td><td></td></tr><tr><td>100 x 15 mm Placas de Petri</td><td>BD Falcon</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>75 x 50 mm Microscópio de Vidro Slide</td><td>Sigma</td><td>CLS294775X50</td><td></td></tr><tr><td>Microinjeção Molde de Peixe</td><td>IBI Scientific</td><td>FM-600</td><td></td></tr><tr><td>Vidro de Borosilicato com Filamento</td><td>Sutter Instrumento</td><td>BF100-50-10</td><td>O.D.: 1,0 mm, I.D.: 0,50 mm, 10 cm de comprimento</td></tr><tr><td>Extrator de Micropipeta Flamejante/Marrom</td><td>Sutter Instrumento</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>Fenol Vermelho</td><td>Sigma</td><td>P3532</td><td></td></tr><tr><td>Pinça de Joalheiro, Durmont #</td>5 <td>Sigma</td><td>F6521</td><td></td></tr><tr><td>Lâmina de Bisturi #15</td><td>Fisher</td><td>50-822-421</td><td></td></tr><tr><td>Óleo mineral</td><td>Sigma</td><td>M8410-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Microinjetor</td><td>Narishige</td><td>IM-9B</td><td></td></tr><tr><td>Suporte magnético</td><td>Narishige</td><td>GJ-1</td><td></td></tr><tr><td>Placa de ferro</td><td>Narishige</td><td>IP</td><td></td></tr><tr><td>Joystick Micromanipulador</td><td>Narishige</td><td>MN-151</td><td></td></tr></tbody></table>

geração de transgênicos hydra por microinjeção de embriões

Generation of Transgenic Hydra by Embryo Microinjection

Como membro do filo Cnidaria, o grupo irmão de todos os bilaterianos, Hydra pode lançar luz sobre os processos biológicos fundamentais compartilhados entre animais multicelulares. Hydra é usado como modelo para o estudo da regeneração, formação de padrões e células-tronco. No entanto, os esforços de pesquisa foram prejudicados pela falta de um método confiável para perturbações genéticas para estudar a função molecular. O desenvolvimento de métodos transgênicos revitalizou o estudo da biologia da Hidra 1. A Hydra transgênica permite o rastreamento de células vivas, classificação para produzir populações de células puras para análise bioquímica, manipulação da função gênica por knockdown e superexpressão e análise da função promotora. O DNA do plasmídeo injetado em embriões em estágio inicial se integra aleatoriamente ao genoma no início do desenvolvimento. Isso resulta em filhotes que expressam transgenes em manchas de tecido em uma ou mais das três linhagens (epitelial ectodérmico, epitelial endodérmico ou intersticial). A taxa de sucesso na obtenção de um filhote com tecido transgênico está entre 10% e 20%. A propagação assexuada do filhote transgênico é usada para estabelecer uma linhagem uniformemente transgênica em uma linhagem particular. A geração de Hydra transgênica é surpreendentemente simples e robusta, e aqui descrevemos um protocolo que pode ser facilmente implementado a baixo custo.

Estabelecer linhas de Hydra transgênicos Alimentar filhotes transgênicas a cada 2-3 dias com náuplios de Artemia. Os filhotes, por vezes, não comer por um ou dois dias após a eclosão. Alguns novos filhotes nunca vai comer, e, portanto, não vai sobreviver. Se o filhote é transgénicos quer na ectodérmica (Figura 1A) ou o tecido epitelial endodérmica, permitir que o animal a germinar e recolher as gemas que têm a maioria dos tecidos transgénicos (Figura 1...

Hydra transgênica estável são feitas por microinjeção de DNA de plasmídeo em embriões, seguida de integração genômica aleatória e propagação assexuada para estabelecer uma linha uniforme. Transgenic Hydra é usado para rastrear movimentos celulares, superexpressar genes, estudar a função do promotor ou derrubar a expressão gênica usando RNAi.

Geração de Transgênicos Hydra Por microinjeção de embriões

As a member of the phylum Cnidaria, the sister group to all bilaterians, Hydra can shed light on fundamental biological processes shared among ...

O objetivo geral deste procedimento é microinjetar DNA plasmático em embriões de hidra para produzir linhas transgênicas. Isso é feito primeiro preparando uma solução de DNA de plasma e carregando-a em uma agulha de injeção. Em seguida, a solução de DNA plasmático é injetada em embriões de hidra entre os estágios de uma e oito células.Em seguida, os embriões de hidra podem se desenvolver e eclodir e os juvenis com tecido transgênico são selecionados. A etapa final é produzir uma linhagem transgênica uniforme por brotamento assexuado do animal transgênico original. Em última análise, a microscopia de fluorescência é usada para visualizar a expressão transgênica na hidra.Este método foi projetado para pesquisadores que desejam fazer linhas hidrelétricas transgênicas a baixo custo, permitindo assim uma aplicação mais ampla dessa tecnologia útil, tanto para os pesquisadores hídricos atuais, mas também para aqueles que desejam apenas começar a usar este modelo. As hidras transgênicas são usadas para estudar a dinâmica dos tecidos, a função gênica de localização de proteínas por knockdown e superexpressão e também a função promotora. Depois de preparar o DNA plasmático de acordo com o pr

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Neste vídeo, Nijole Jasinskiene demonstra a metodologia utilizada para gerar transgênicos mosquitos Aedes aegypti, que são vetores da dengue. As técnicas para preparar corretamente agulhas microinjeção, os embriões desidratantes, e realizando microinjeção são demonstradas.

Microinjeção de embriões A. aegypti obter mosquitos transgênicos

A expressão ectópica é uma técnica para elucidar o papel microRNAs no desenvolvimento do cérebro. No entanto, em áreas específicas usando a eletroporação in ovo é um desafio. Aqui, vamos mostrar uma maneira eficiente para regiões do mesencéfalo ventral e dorsal seletiva electroporate.

Em Expression in ovo de microRNA em Ventral Pintinho Midbrain

Estudar os primeiros eventos de progressão de células pré-neoplásicas e interação célula imune inato é fundamental para compreender e tratar o câncer. Aqui nós descrevemos um método para induzir condicionalmente transformações de células epiteliais e do subsequente imagens ao vivo de interação célula imune inato com HRAS G12V expressando células da pele em larvas do peixe.

Imagens ao vivo da imunológica inata e pré-neoplásicas Interações de células utilizando um / UAS Expression System Inducible Gal4 em larvas de peixe-zebra da pele

acompanhamento ao vivo de células progenitoras da retina WT individuais em fundos genéticos distintos permite a avaliação da contribuição das células de sinalização não autónomo durante a neurogênese. Aqui, uma combinação de silenciamento de genes, através de transplante de geração quimera embrião e na imagiologia de lapso de tempo in vivo confocal foi utilizada para este propósito.

In vivo de imagens de Gene Transgenic Expressão em Individual Retinal Progenitores em embriões Zebrafish Quimérico para estudar celular Influências não-autônomos

Microinjeção de Nasonia vitripennis embriões é um método essencial para gerar modificações hereditárias do genoma. Aqui descrito é um procedimento detalhado para microinjeção e transplante de embriões Nasonia vitripennis , que facilitará grandemente a manipulação futura do genoma deste organismo.

Microinjeção de embrião e a técnica de transplante para manipulação de genoma Nasonia vitripennis

Utilizando um Cas9 preassembled ribonucleoprotein complexo (RNP) é um método poderoso para edição de genoma preciso e eficiente. Aqui, destacamos a sua utilidade em uma ampla variedade de células e organismos, incluindo células humanas primárias e os dois clássicos e emergentes organismos modelo.

Maior genoma edição com Cas9 Ribonucleoprotein em diversas células e organismos

Aqui nós apresentamos protocolos para coletando e microinjecting precellular milho ocidental embriões repele com a finalidade de realizar ensaios funcionais-genômica como germline transformação e edição de CRISPR/Cas9-genoma.

Microinjeção de Western milho repele, Diabrotica virgifera virgifera, embriões de transformação da linha germinal, ou edição de genoma CRISPR/Cas9

Este protocolo descreve procedimentos de microinjeção para embriões culex quinquefasciatus que são otimizados para trabalhar com ferramentas de edição de genes CRISPR/Cas9. Esta técnica pode gerar eficientemente mutações de germes específicas, hereditárias e germinais que podem ser usadas para a construção de tecnologias genéticas neste vetor de doença subestudado.

Técnicas de microinjeção de embriões para mutagênese específica do local eficiente em Culex quinquefasciatus

Muitas características da eussocialidade dos insetos dependem da comunicação dentro da colônia e da divisão do trabalho. A manipulação genética de genes-chave reguladores em embriões de formigas via microinjeção e mutagênese mediada por CRISPR fornece insights sobre a natureza do comportamento altruísta em insetos eussociais.

Injeções embrionárias para mutagênese mediada por CRISPR no saltador de formigas Harpegnathos

Neste protocolo, descrevemos como injetar a cavidade amniótica do camundongo no E7.5 com lentivírus, levando à transdução uniforme de toda a placa neural, com efeitos mínimos prejudiciais sobre a sobrevivência ou desenvolvimento embrionário.

Placa neural de Murine Alvo por In Utero Nano-Injection (NEPTUNE) no Dia Embrionário 7.5

Este artigo toma como exemplo a transgênese mediada por integrase phiC31 em Drosophila e apresenta um protocolo otimizado para microinjeção de embriões, uma etapa crucial para a criação de moscas transgênicas.

Microinjeção de embriões para transgênese em Drosophila

Aprenda a gerar linhagens transgênicas de Hydra por microinjeção de DNA plasmidial em embriões. Este método permite estudar função gênica, dinâmica celular e expressão de genes em biologia do desenvolvimento.

Geração de Transgênicos Hydra Por microinjeção de embriões

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