Name: A Formação Ensaio macio Agar Colony (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: Aprenda o ensaio de formação de colônias em ágar mole para quantificar o crescimento independente de ancoragem em células transformadas. Este método avalia o potencial tumorigênico e os efeitos de proteínas supressoras de tumor.

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Este estudo foi apoiado por um Prêmio de Mérito do Departamento de Assuntos de Veteranos dos EUA e uma bolsa do NIH R01CA1385282522717 para RW.

1. Preparação de Materiais e Reagentes <ol><li> Rotular cada poço de uma cultura de tecido de 6 poços tratados placa de forma adequada para cada linha de célula ou condição a ser investigada. </li><li> Prepare meio de cultura de células 2x por dissolução de 1 g de meio em pó e 0,2 g de bicarbonato de sódio em água desionizada até um volume final de 50 ml. </li><li> Passa este meio através de um filtro de 0,2 um para esterilizar. </li><li> Adicionar os componentes adicionais necessários para a cultura normal da linha celular de interesse. Por exemplo, crescer CMT linha 167 das células em meio RPMI 1640 suplementado com 10% FBS e 1% de penicilina / estreptomicina solução. Aquece-se a média de 37 ° C em banho de água quente antes de ser utilizado. </li><li> Prepare meio de cultura celular 1x separadamente, como você faria para cultura de células normais da linha de células de interesse. </li><li> Prepare 1% de agar nobre por adição de 1 g de agar nobre a 100 ml de água desionizada. NOTA: ágar Noble não se dissolverá completamente com agitação só. </li><li> Preparar0,6% de agar nobre por adição de 0,6 g de agar nobre a 100 ml de água desionizada. Ambas as soluções de agar podem ser feitas em garrafas de 100 ml de vidro com tampas que podem ser fechadas para armazenagem a longo prazo. </li><li> Autoclave as misturas de agar nobres para esterilizar. Estas misturas podem ser feitas com antecedência e guardadas a 4 ° C, mas deve ser aquecido novamente no momento do experimento de agar até se ter dissolvido completamente. </li><li> Preparar a solução de cloreto de tetrazólio nitroazul, fazendo uma solução mãe de 1 mg / ml em 1x PBS (8 g de NaCl, 0,2 g de KCl, 1,44 g de Na 2 HPO 4, e 0,24 g de KH 2 PO 4 em H2O para volume final de 1000 ml ). Isto irá ser utilizado no final da experiência para corar as colónias. </li></ol> 2. chapeamento de camada inferior de Agar <ol><li> Solte a tampa na garrafa de 1% agar nobre e micro-ondas por cerca de 1-2 min. Durante o aquecimento no microondas, monitorar de perto a solução para evitar a ferver. Continuar o aquecimento, enquanto se mistura intermitentemente,ágar até estar completamente dissolvido e a solução é clara. NOTA: Use luvas resistentes ao calor para lidar com frasco após o aquecimento. Não fazer isso pode causar queimaduras ou ferimentos graves. </li><li> Coloque solução agar derretido e pré-aquecido meio de cultura 2x em um balde de gelo cheia de água quente da torneira (42 ° C). Também se coloca um tubo cónico de 50 ml num suporte de tubos no balde de gelo com água quente. Balde para capa de cultura de células de transferência para as etapas subseqüentes. </li><li> Para a camada inferior de agar, vai precisar de 1,5 ml de uma mistura de agar e meio por poço de uma placa de 6 poços. </li><li> Para garantir uma quantidade adequada da mistura, preparar um total de 12 ml para cada placa de 6 poços. </li><li> Comece por adição de 6 ml de meio de cultura para o tubo de 50 ml e em seguida 6 ml de solução de agar nobre a 1%. </li><li> Inverter o tubo cónico várias vezes para misturar. Trabalhando em um ritmo acelerado irá prevenir o endurecimento prematuro do agar macio. </li><li> Elaborar cerca de 5,5 ml de mistura em um 5 ml pi sorológicapette. </li><li> Permitir que as bolhas de ar a subir para o topo da coluna antes de depositar pipeta 1,5 ml desta mistura para cada poço. Tenha cuidado para evitar a deposição de quaisquer bolhas de ar nos poços da placa. </li><li> Cobrir as placas e permitir uma mistura de agar a solidificar à temperatura ambiente, na capa de cultura de células, durante 30 min. </li></ol> 3. chapeamento camada superior do agar contendo células <ol><li> Uma vez que a camada inferior de agar ter solidificado, começar a preparação da camada superior. </li><li> Em primeiro lugar, as células de colheita por tripsinização e diluí-los 1: 5 em meio de cultura (por exemplo, para 1 ml de tripsina, adicionar 4 ml de meio) num tubo de 15 ml. </li><li> Contagem de células e calcular o número de células por poço necessários para preparar uma suspensão de células final neste momento. Este número irá variar dependendo do tipo de célula. Use 5.000 células / poço como ponto de partida e ajustar, conforme necessário. Para este número de celular, você iria preparar uma suspensão de células de 6.667 células / ml (ou seja, cada poçol receberão 0,75 mL desta suspensão e 0,75 ml de ágar para um volume total de 1,5 ml; a concentração de células também será diluído 1: 2 para uma contagem de células total final de 5000). </li><li> O volume de suspensão de células por poço necessária de uma placa de 6 poços irá novamente ser de 1,5 ml. Prepare suspensão de células adicional totalizando 12 ml por 6 poços. </li><li> Derreter solução de agar a 0,6% em um micro-ondas como acima e colocar em balde de gelo contendo água quente juntamente com um tubo de 50 ml num suporte de tubos e a suspensão celular final do Passo 3.3. </li><li> Transfira o balde de gelo derretido com 0,6% de agar para capa de cultura de células para as etapas subseqüentes. </li><li> Misture 0,6% de agar e suspensão de células numa proporção de 1: 1, preparando-se um volume total de 12 ml por placa de 6 poços. 1,5 ml vai ser necessária por poço mas extra deve ser feita como acima. </li><li> Pipetar 6 ml de suspensão de células para o tubo de 50 ml. </li><li> Em seguida, adicionar 6 mL de 0,6% de agar para o tubo. NOTA: A temperatura desta mistura deve sermantido em torno de 42 ° C para evitar o endurecimento prematuro e para maximizar a sobrevivência celular. </li><li> Trabalhando rapidamente, pipeta esta mistura 2-3x para distribuir células, em seguida, elaborar 5,5 ml de mistura em uma pipeta de 5 ml sorológica. </li><li> Permitir que as bolhas de ar a subir para o topo da coluna antes de depositar pipeta 1,5 ml desta mistura para cada poço. Tenha cuidado para evitar a deposição de quaisquer bolhas de ar nos poços da placa. </li><li> Permitir mistura de células / agar para solidificar à temperatura ambiente, na capa de cultura de células, durante 30 minutos antes de colocar um 37 ° C humidificado incubadora de cultura de células. </li><li> O tempo necessário para a formação de colónias adequada varia para cada linha celular, tipicamente cerca de 21 dias. </li><li> Uma camada de meio de crescimento deve ser mantido ao longo da camada superior de ágar-ágar para evitar a dessecação. 100 ul de meio adicionado duas vezes por semana é suficiente para esta finalidade. </li></ol> 4. coloração das placas e contagem de colônias <ol><li> Células Stain, adicionando 200 _6; l de solução de cloreto de tetrazólio nitroazul por cavidade e incubando as placas durante a noite a 37 ° C. </li><li> Uma vez que as colônias estão manchadas, tirar fotografias de poços utilizando um gerador de imagens e contagem das colónias, usando software de análise de imagem. </li></ol>

<ol><li>Puck, T. T., Marcus, P. I., Cieciura, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+growth+of+mammalian+cells+in+vitro%3B+growth+characteristics+of+colonies+from+single+HeLa+cells+with+and+without+a+feeder+layer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Clonal growth of mammalian cells in vitro; growth characteristics of colonies from single HeLa cells with and without a feeder layer.</a> J Exp Med. 103, 273-283 (1956).</li>
<li>Taddei, M. L., Giannoni, E., Fiaschi, T., Chiarugi, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anoikis%3A+an+emerging+hallmark+in+health+and+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+pathology%22%5BJournal%5D)">Anoikis: an emerging hallmark in health and diseases.</a> The Journal of pathology. 226, 380-393 (2012).</li>
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<li>Takahashi-Yanaga, F., Kahn, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+Wnt+signaling%3A+can+we+safely+eradicate+cancer+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Targeting Wnt signaling: can we safely eradicate cancer stem cells.</a> Clin Cancer Res. 16, 3153-3162 (2010).</li>
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<li>Winn, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antitumorigenic+effect+of+Wnt+7a+and+Fzd+9+in+non-small+cell+lung+cancer+cells+is+mediated+through+ERK-5-dependent+activation+of+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Antitumorigenic effect of Wnt 7a and Fzd 9 in non-small cell lung cancer cells is mediated through ERK-5-dependent activation of peroxisome proliferator-activated receptor gamma.</a> J Biol Chem. 281, 26943-26950 (2006).</li>
<li>Tennis, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sprouty-4+inhibits+transformed+cell+growth%2C+migration+and+invasion%2C+and+epithelial-mesenchymal+transition%2C+and+is+regulated+by+Wnt7A+through+PPARgamma+in+non-small+cell+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Sprouty-4 inhibits transformed cell growth, migration and invasion, and epithelial-mesenchymal transition, and is regulated by Wnt7A through PPARgamma in non-small cell lung cancer.</a> Mol Cancer Res. 8, 833-843 (2010).</li>
<li>Steele, J. G., Rowlatt, C., Sandall, J. K., Franks, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+surface+properties+of+high-+and+low-metastatic+cell+lines+selected+from+a+spontaneous+mouse+lung+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Cell surface properties of high- and low-metastatic cell lines selected from a spontaneous mouse lung carcinoma.</a> Int J Cancer. 32, 769-779 (1983).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Em confirmação vitro da função supressora tumoral de proteínas de sinalização é difícil. Um dos ensaios mais rigorosos disponíveis para investigar essa propriedade é o ensaio de formação de colônia agar macio. Aqui, ilustramos o ensaio de formação de colónia em agar macio, utilizando uma linha de células de carcinoma de pulmão de murino que sobre-expressa de forma estável e Wnt7a Fzd9 em comparação com a sua linha de células parental CMT167. Há vários pontos importantes a c...

O ensaio de formação de colónia em agar mole é uma técnica amplamente utilizada para avaliar a transformação celular in vitro. Historicamente, um outro ensaio, o ensaio clonogénico, descrito por Puck et al., Em 1956, foi utilizado para avaliar a capacidade das células para formarem colónias 1. Nesta técnica, as células foram dispersas numa placa de cultura e cultivadas na presença de células &quot;alimentadoras&quot; ou meio condicionado para fornecer factores de crescimento necessários. A limitação dessa técnica é que ele só forneceu informações sobre a formação de colônias. As células normais são impedidas de crescimento independente de ancoragem, devido a um determinado tipo de morte apoptótica, chamado anoikis 2. No entanto, as células transformadas têm a capacidade de crescer e dividir-se sem se ligar a um substrato. Para capitalizar sobre este conceito, os pesquisadores desenvolveram o ensaio de formação de colônia agar macio. O ensaio de formação de colónia em agar mole foi modificado desde que, nos anos mais recentes, para tratar spnecessidades ecific. Uma variação envolve a incorporação de corante fluorométrico para permitir a high-throughput contagem de colónias. Outra variação envolve a utilização de solução de agar especializada para permitir a recuperação de células viáveis ​​após a formação de colónias quando são necessárias amostras de proteína ou de ADN. No ensaio de formação de colónia em agar mole tradicional, as células são cultivadas numa camada de agar mole misturado com meio de cultura de células que repousa sobre uma outra camada de agar mole, também misturado com meio de cultura celular, mas que contém uma maior concentração de ágar. Isto impede que as células adiram à placa de cultura, ainda permite células transformadas de modo a formar colónias visíveis. O raciocínio por detrás desta técnica é que as células normais de células dependem de contacto de matriz extracelular para ser capaz de crescer e dividir. Por outro lado, as células transformadas têm a capacidade de crescer e dividir independentemente do seu ambiente circundante. Portanto, as células capazes de formar colónias de uma forma independente de ancoragem foram cConsiderado para ser transformada e carcinogénico. O objetivo geral deste método é medir essa capacidade das células de uma forma semi-quantitativa e rigorosa. A via de sinalização Wnt é essencial na embriogênese e muitas vezes de-regulada na tumorigênese 3-6. Existem vários caminhos associados à sinalização Wnt. A via de sinalização Wnt canônica envolve e regulação da transcrição de genes a jusante através de seus efeitos sobre o coactivator transcricional beta-catenina. Wnts também sinalizar através de várias vias não canónicos, por exemplo, a via planar polaridade celular, que regula os elementos envolvidos na estrutura do citoesqueleto 7, e da via Wnt-cálcio, que regula a libertação de cálcio do retículo endoplasmático 8. Ligantes Wnt exercer a sua actividade através de receptores Frizzled obrigatório. Embora vários Wnts foram mostrados para ser regulada positivamente em cancro do pulmão, Wnt7a demonstrou ser regulada para baixo em não-smalcâncer de pulmão de células l através metilação do promotor 9. Wnt7a se liga Fzd9 e actua como um supressor de tumor através de uma via não-canónica. Restauração de Wnt-7a e FZD-9 inibe o crescimento de células não-pequenas de cancro do pulmão de células 10. Os efeitos da Wnt7a / Fzd9 são mediados através da activação de ERK-5, que por sua vez, activa γ do receptor activado por proliferador de peroxissoma (PPARy) 11,12. Aqui, mostramos que a sobre-expressão de Wnt7a e Fzd9 resulta na supressão do crescimento independente de ancoragem de uma linha de células de carcinoma de pulmão de murino. CMT167 células de ratinho foram derivadas de um carcinoma do pulmão em ratos C57BL / 13 e lcrf ratinhos foram estavelmente transfectadas com Wnt7a e Fzd9. A sobre-expressão de Wnt7a e Fzd9 foram confirmados por PCR quantitativo e em (Q-PCR) e a funcionalidade de Wnt7a e Fzd9 superexpressão foi confirmada através da activação de PPARy jusante.

<table><tbody><tr><td>Linha de Células Cancerígenas de Interesse</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10032302</td><td>CMT-167 Células</td></tr><tr><td>em Pó RPMI 1640 Medium</td><td>Gibco</td><td>31800-089</td><td>Usado para preparar 2x meio de cultura de células.</td></tr><tr><td>Líquido RPMI 1650 Medium</td><td>Cellgro</td><td>10-040-CV</td><td>Referido como 1x meio de cultura de células.</td></tr><tr><td>HyClone de soro</td> <td>bovino fetal</td><td>SH30910.03</td><td>Usado para suplementar o meio de cultura de células.</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>CellGro</td><td>30-002-Cl</td><td>Usado em meio de cultura celular.</td></tr><tr><td>Difco Noble Agar</td><td>BD Biosciences</td><td>214230</td><td>Usado para preparar ágar 1,0% e 0,6%.</td></tr><tr><td>Bicarbonato de sódio</td><td>Fisher</td><td>BP-328-1</td><td>Usado em meio de cultura de células 2x.</td></tr>Filtros de Garrafa Estéreis <tr><td>Trypsin</td><td>Cellgro</td><td>25-050-Cl</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Fisher</td><td>09-761-126</td><td>Usado para filtro estéril 2x meio.</td></tr><tr><td>Reagente de lipofectamina</td><td>Invitrogen</td><td>18324-020</td><td>Usado no ensaio de luciferase PPAR-RE.</td></tr><tr><td>Placas de 6 poços tratadas</td><td></td><td></td><td></td>com cultura de tecidos</tr><tr><td>37 &#176; C/5% CO2 Incubadora</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chemi-Doc Imager</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Usado para tirar fotos de colônias.</td></tr><tr><td>Quantidade Um Software</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Usado para contar colônias de células.</td></tr><tr><td>Tubos cônicos de</td><td></td><td></td><td></td>15 ml</tr><tr><td>Tubos cônicos de 50 ml Frascos</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Erlenmeyer de 250 ml</td></tr><tr><td>Microondas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipetas</td><td></td><td></td><td></td>sorológicas de 5 ml</tr><tr><td>Auxiliar</td><td></td><td></td><td></td>de pipeta</tr><tr><td>Micropipeta</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hemacitômetro c/ tampa </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pontas</td><td></td><td></td><td></td>de pipeta</tr><tr><td>deslizantes Microscópio de luz</td><td></td><td></td><td></td>invertida</tr><tr><td>Centrífuga</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Luvas resistentes</td><td></td><td></td><td></td>ao calor</tr><tr><td>Saran Wrap</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Balde</td><td></td><td></td><td></td> de gelo</tr></tbody></table>

a formação ensaio macio agar colony

The Soft Agar Colony Formation Assay

O crescimento independente de ancoragem é a capacidade das células transformadas de crescer independentemente de uma superfície sólida e é uma marca registrada da carcinogênese. O ensaio de formação de colônias de ágar mole é um método bem estabelecido para caracterizar essa capacidade in vitro e é considerado um dos testes mais rigorosos para transformação maligna em células. Este ensaio também permite a avaliação semiquantitativa dessa capacidade em resposta a várias condições de tratamento. Aqui, demonstraremos o ensaio de formação de colônias de ágar mole usando uma linhagem celular de carcinoma de pulmão murino, CMT167, para demonstrar os efeitos supressores de tumor de dois membros da via de sinalização Wnt, Wnt7A e Frizzled-9 (Fzd-9). A superexpressão simultânea de Wnt7a e Fzd-9 causou uma inibição da formação de colônias em células CMT167. Isso mostra que a expressão do ligante Wnt7a e seu receptor Frizzled-9 é suficiente para suprimir o crescimento do tumor em um modelo de carcinoma de pulmão murino.

A expressão de Wnt7a e Fzd9 em CMT167 células é eficaz na supressão de tumores, como ilustrado pelo nosso ensaio de formação de colónia em agar mole. Preliminarmente, utilizou-Q-PCR para mostrar que Wnt7a Fzd9 ARNm e são expressos em níveis baixos em células CMT167. CMT167 células mostraram níveis baixos de Wnt7a endógena e Fzd9 quando comparado com células MLE-12, uma linha de células epiteliais de pulmão de murino transformadas com SV40 (Figura 1). Em seguida, transfectadas CMT167 células com dois vet...

O ensaio de formação de colônias de ágar mole é um método usado para confirmar o crescimento independente da ancoragem celular in vitro. O objetivo deste protocolo é ilustrar um método rigoroso para a detecção do potencial tumorigênico de células transformadas e os efeitos supressores tumorais de proteínas em células transformadas.

A Formação Ensaio macio Agar Colony

Anchorage-independent growth is the ability of transformed cells to grow independently of a solid surface, and is a hallmark of carcinogenesis. The soft ...

O objetivo geral deste procedimento é quantificar o crescimento independente da ancoragem celular. Isso é feito primeiro colocando uma camada de ágar na placa de cultura de células e permitindo que ela endureça. O segundo passo é colocar uma mistura de células em ágar por cima da camada de ágar anterior.Em seguida, as células podem formar colônias durante um período de algumas semanas. A etapa final é a coloração das colônias para visualização e quantificação. Em última análise, o ensaio de formação de colônias de ágar mole é usado para mostrar o crescimento independente de Anchorage como uma indicação de transformação celular.A principal vantagem desta técnica sobre outros métodos, como o ensaio gênico Clon, é que o ensaio de formação de colônias de ágar mole requer que as células formem colônias de maneira independente de Anchorage. Comece o procedimento rotulando cada poço de uma cultura de tecidos tratada. Placa de seis poços apropriadamente para cada linha celular ou condição que está sendo investigada.Em seguida, prepare dois meios de cultura Xcel dissolvendo um grama de meio em pó e 0,2 gramas de bicarbonato de sódio na água deionizada até um volume final de 50 mililitros. Passe este meio por um filtro de 0,2 mícron. Adicionar componentes adicionais necessários para a cultura normal da linhagem celular de interesse.Por exemplo, cultive a linhagem celular CMT 1 67 em meio RPMI 1640 suplementado com 10% de FBS e 1% de solução de estreptomicina de penicilina. Aqueça médio a 37 graus Celsius em banho-maria quente antes de usar. Agora prepare um meio de cultura Xcel.Em seguida, prepare o ágar 1% nobre adicionando um grama de ágar nobre a 100 mililitros de água deionizada. Depois disso, prepare 0,6% de ágar nobre adicionando 0,6 gramas de ágar nobre a 100 mililitros de água deionizada. Em seguida, autoclave as misturas de ágar nobre.Em seguida, fazer uma solução de estoque de cloreto de tetra oleum azul nitro de um miligrama por mililitro em um XPBS com o objetivo de colorir as colônias. Neste procedimento, leve ao micro-ondas a garrafa de ágar 1% nobre por cerca de um a dois minutos enquanto aquece no micro-ondas. Monitore a solução de perto para evitar transbordar.Em seguida, continue aquecendo e misturando intermitentemente até que o ágar-ágar esteja completamente dissolvido e a solução límpida. Depois disso, coloque a solução de ágar derretido e o meio de cultura pré-aquecido dois x em um balde de gelo cheio de 42 graus Celsius. Água da torneira.Além disso, coloque um tubo cônico de 50 mililitros em um suporte de tubo no balde de gelo com água quente. Em seguida, transfira o balde para a capa de cultura de células. Em seguida, adicione seis mililitros de meio de cultura e seis mililitros da solução de ágar 1% nobre ao tubo cônico de 50 mililitros.Pipete para cima e para baixo várias vezes para misturar. Trabalhar em um ritmo acelerado evitará o endurecimento prematuro do ágar macio. Em seguida, retirar cerca de 5,5 ml da mistura com uma pipeta serológica de cinco ml.Deixe as bolhas de ar subirem até o topo da coluna da pipeta. Em seguida, deposite 1,5 mililitros da mistura em cada poço e evite a deposição de bolhas de ar. Cubra a placa e deixe a mistura de ágar-ágar solidificar na capela de cultura de células à temperatura ambiente por 30 minutos.Primeiro, colha as células por tripsina e dilua-as de um a cinco em cultura, meio em um tubo cônico de 15 mililitros. Conte as células e calcule o número de células necessárias por poço para preparar uma suspensão celular final neste momento. Em seguida, derreta a solução de ágar 0,6% no micro-ondas.Coloque-o em um balde de gelo contendo água quente junto com um tubo cônico de 50 mililitros em um suporte de tubo e a suspensão final da célula. Em seguida, transfira o balde de gelo com 0,6% de ágar derretido para a coifa de cultura de células para as etapas subsequentes. Para preparar um volume total de 12 mililitros de suspensão celular para uma placa de seis poços, primeiro pipete seis mililitros de suspensão celular no tubo cônico de 50 mililitros.Em seguida, adicione seis mililitros de 0,6% de ágar ao tubo. Mantenha a mistura a 42 graus Celsius para evitar o endurecimento prematuro e maximizar a sobrevivência celular. Depois, pipete a mistura rapidamente, duas a três vezes para distribuir as células.Retire 5,5 mililitros da mistura com uma pipeta sorológica de cinco mililitros e deixe as bolhas de ar subirem até o topo da coluna de pipeta. Em seguida, deposite 1,5 mililitros da mistura em cada um. Bem, permita que a mistura de ágar celular solidifique à temperatura ambiente na capa de cultura de células por 30 minutos antes de colocá-la em uma incubadora de cultura de células umidificada a 37 graus Celsius.Adicione 100 microlitros de meio de crescimento sobre a camada superior de ágar duas vezes por semana para evitar a dessecação e aguarde cerca de 21 dias para a formação adequada da colônia. Para corar as células, adicione 200 microlitros de solução de cloreto de tetra oleum nitro blue a cada poço e incube a placa durante a noite a 37 graus Celsius. Depois que as colônias estiverem coradas, tire fotos dos poços usando o gerador de imagens e conte as colônias usando um software de análise de imagem.Aqui é mostrado o ensaio de formação de colônias de ágar mole do vetor que expressa células CMT 1 67 LNCX LPC X e CMT 1 67 LL foi sete a nove frisados sobre células de expressão. O vetor que expressa células CMT 1 67 L e CXL PC X e CMT 1 67 LL ficou sete vezes frisado. Nove células superexpressivas foram plaqueadas em um ensaio de formação de colônias de ágar mole CMT 1 67 LL foi sete células frisadas nove mostraram uma diminuição acentuada na formação de colônias após seu desenvolvimento.Essa técnica abriu caminho para pesquisadores no campo da pesquisa do câncer explorarem a transformação celular in vitro. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como avaliar as células para o crescimento independente de Anchorage.

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

A aplicabilidade do ensaio clonogênica na avaliação de viabilidade reprodutiva foi estabelecida há mais de 50 anos. Aqui demonstramos o procedimento geral para a realização do teste clonogênica com células aderentes.

Clonogênica Ensaio: células aderentes

Quando se trabalha com meios de comunicação e dos reagentes utilizados para os microorganismos de cultura, uma técnica asséptica deve ser praticado para assegurar a contaminação é minimizado. Uma variedade de métodos de revestimento são rotineiramente utilizados para isolar, propagar ou bactérias enumerar e de fagos, os quais incorporam os procedimentos que mantêm a esterilidade de materiais experimentais.

Assépticas Técnicas de Laboratório: Métodos Plating

Este vídeo descreve um ensaio de formação de colônias de ágar mole para testar os efeitos de um inibidor da enzima PADI e BB-Cl-amidina na tumorigenicidade do câncer de mama in vitro. Este ensaio também permite a avaliação quantitativa do potencial de transformação celular no contexto de perturbações genéticas.

Ensaio de formação de colônias de ágar mole: um método para testar os efeitos de novos compostos na proliferação de células cancerígenas

Este vídeo descreve o ensaio de formação de colônias, que ajuda a determinar a capacidade das células de câncer de pulmão de proliferar indefinidamente e formar colônias individuais. Podemos analisar o efeito de um agente anticancerígeno nas células formadoras de colônias, analisando as mudanças no número e / ou tamanho das colônias resultantes.

Ensaio de formação de colônias: avaliando a eficácia de agentes anticancerígenos em células de câncer de pulmão formadoras de colônias

Fonte: Cayron, J., e Lesterlin, C. Análise Multiescala do Crescimento Bacteriano Sob Tratamentos de Estresse. J. Vis. Exp. (2019)Este vídeo demonstra o procedimento para avaliar a filamentação de E. coli e a replicação do DNA sob tratamento antibiótico inibidor da divisão celular usando placas para medir a viabilidade e citometria de fluxo para analisar o tamanho da célula e o conteúdo de DNA.

Avaliação da filamentação induzida por antibióticos em E. coli usando ensaio de plaqueamento e citometria de fluxo

Fonte: Temkin, M. I. et al. Ensaios de Cocultura de Alto Rendimento para a Investigação de Interações Microbianas. J. Vis. Exp. (2019)Este vídeo demonstra um ensaio in vitro para estudar interações microbianas entre Corynebacterium propinquum e Staphylococcus em uma cocultura.

Um ensaio in vitro para estudar interações microbianas em co-cultura

As proteínas interagem entre si e essas interações determinam em grande parte suas funções. Os parceiros de interação proteica podem ser identificados em alto rendimento in vivo usando um ensaio de aptidão de levedura baseado no ensaio de complementação de fragmentos de proteína diidrofolato redutase (DHFR-PCA).

Genome-wide proteína-proteína Interaction Triagem por proteína-fragmento de Complementação Assay (PCA) em células vivas

Aqui, documentamos o uso do ensaio de formação de colônias de ágar mole para testar os efeitos de um inibidor da enzima peptidilarginina deiminase (PADI), BB-Cl-amidina, na tumorigenicidade do câncer de mama in vitro.

Utilização do ensaio de formação de colónia agar mole para identificar inibidores de tumorigenicidade em células de cancro da mama

Fenótipos de crescimento de leveduras são precisamente medidos através de imagens de lapso de tempo altamente paralelas de células imobilizadas crescendo em microcolônias. Simultaneamente, a tolerância ao estresse, a expressão proteica e a localização da proteína podem ser monitoradas, gerando conjuntos de dados integrados para estudar como as diferenças ambientais e genéticas, bem como a heterogeneidade de expressão genética entre as células isogênicas, modulam o crescimento.

Imagem ao vivo de alta taxa de microcolônias para medir heterogeneidade no crescimento e expressão genética

Este método quantifica a abundância microbiana usando um formato de placa de 96 poços para unidades formadoras de colônias de placas (UFCs) e é aplicado ao microbioma Drosophila em amostras inteiras de homogeneização de moscas. As CFUs são contadas com um software automatizado de análise de imagens fornecido aqui.

Contagem rápida de unidades formadoras de colônias em formato de placa de 96 poços aplicada ao microbioma de Drosophila

Um protocolo é descrito para a preparação de um ecossistema modelo simples que recria o contragradiente metano-oxigênio encontrado no habitat natural de bactérias oxidantes aeróbicas de metano, permitindo o estudo de sua fisiologia em um contexto espacialmente resolvido. Modificações em ensaios bioquímicos comuns para uso com o ecossistema modelo baseado em agarose também são descritas.

Ecossistema modelo baseado em agarose para cultivo de metanotróficos em um gradiente de contador de metano-oxigênio

Aprenda o ensaio de formação de colônias em ágar mole para quantificar o crescimento independente de ancoragem em células transformadas. Este método avalia o potencial tumorigênico e os efeitos de proteínas supressoras de tumor.

A Formação Ensaio macio Agar Colony

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