Name: Pseudomonas aeruginosa Lesão Pulmonar Induzida Modelo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 24 s
Description: Aprenda a criar um modelo de lesão pulmonar induzida por Pseudomonas aeruginosa em camundongos via injeção intratraqueal. Este método permite estudar inflamação, morte celular e reparo alveolar em lesão pulmonar aguda.

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Este trabalho foi apoiado pelos subsídios do National Institutes of Health HL105947-01 (YL), HL07829-16 (AM), HL090152 (AM).

As experiências com animais foram aprovados pelo Comitê de Cuidados Animal e Comitês de Biossegurança Institucional da Universidade de Illinois, em Chicago. NOTA: Todos os procedimentos que envolvem pseudomonas deve ser realizada com Nível de Biossegurança 2 práticas (BSL2), que incluem mas não estão limitados a: máscara, protecção para os olhos, vestido ou macacão, luvas e duplas. Trabalhar em certificado de Biossegurança Gabinete. Trate instrumentos em contato com bactérias com desinfetante à base de lixívia ou cloro dióxido de carbono. Use uma caixa selada para amostras de transporte. 1. P. aeruginosa Cultura e Crescimento <ol><li> Loja P. aeruginosa PA103 como um estoque bacteriana em uma tampa de rosca frasco de congelação a -80 ° C. </li><li> Colocar o frasco em um rack em uma caixa com 70% de etanol molhada toalhas de papel e levar para o laboratório de Nível de Biossegurança 2 (BSL2). </li><li> Streak as bactérias em placas de agar de sangue de ovelha e crescer a 37 ° C durante ~ 15 horas numa incubadora. </li&gt; <li> Em um capuz BSL2, arranhar as bactérias da placa com bactérias loop e ressuspender em 5 ml de PBS. </li><li> Armazenar o estoque, a 4 ° C por até 3 meses. No entanto, determinar o título de cada 2 semanas. </li><li> Serialmente dilua as bactérias em PBS (geralmente de 1:10 a 1:10 4 7) e para fora da placa de diluição conhecido em placas de agar de sangue de ovelha. </li><li> Incubar as placas durante ~ 15 h. Contagem das colónias e calcular unidade formadora de colônia (UFC) para determinar a concentração de bactérias. </li><li> Ressuspender as concentrações apropriadas (~ 5 x 10 3 CFU / ul) em 0,5 ml de PBS em 1,5 ml estéreis criotubos com tampa de rosca. Vedar as cryovials e colocá-los em um rack cryovial em toalhas de papel carregado desinfetantes em uma caixa de encaixe da tampa. </li><li> Transportar a caixa para BSL2 biotério. Uma vez lá, abra a caixa no armário BSL2. </li></ol> 2. P. aeruginosa instilação <ol><li> Realize assepticamente cirurgia sobrevivência (luvas estéreis, instrumentos esterilizadose as técnicas assépticas). Use um campo estéril para fornecer uma superfície de trabalho para (autoclavados) instrumentos cirúrgicos estéreis. Esterilizar instrumentos usando um esterilizador quente talão entre cada procedimento instilação traqueal. </li><li> Pesar ratinhos antes da anestesia. Anestesiar ratos com cetamina (100 mg / kg), xilazina (5 mg / kg), em 0,1-0,2 ml de PBS por via intraperitoneal (ip). Determinar a eficácia do anestésico por não responsividade ao dedo do pé pitada. Use uma pomada veterinário sobre os olhos para evitar a secura sob anestesia. </li><li> Contenha camundongos em uma placa cirúrgica no gabinete BSL2. </li><li> Identificar a área para o corte para baixo. Raspar nesta área e preparar a pele usando alternando álcool e iodo povidona compressas 3 vezes. </li><li> Trate a área da incisão, com anestesia local (lidocaína), pois esta anestesia é suficiente para uma pequena cirurgia, como uma incisão na pele para acessar a traqueia. </li><li> Adicione uma pequena incisão (aproximadamente 5 mm) na linha média do pescoço, e usar romba forceps para mover suavemente o músculo para o acesso à traquéia. Expor a traquéia por dissecção cirúrgica. </li><li> Desenhe solução bactérias dentro de uma seringa descartável 1 ml com agulha 27 G. Para cada rato, administrar 20-30 ul de bactérias na concentração apropriada (até 10 5 CFU cada ratinho). </li><li> Insira a agulha na traquéia. Injectar solução lentamente na traqueia. </li><li> Assegure-se que os animais suspiros, que normalmente indica que a solução tenha atingido no pulmão. </li><li> Fechar a ferida com suturas de monofilamento estéreis (6-0), sob condições assépticas. </li><li> Use 0,1 mg / kg de buprenorfina por injecção subcutânea como analgesia no pós-operatório para controle da dor pós-cirúrgica. </li><li> Assegure-se que o tempo necessário desde a indução da anestesia inicial à incisão de fecho é inferior a 15 min. </li><li> Após a injeção, descarte de seringas e agulhas em um recipiente de risco biológico farelos apropriado. </li><li> Trate os instrumentos cirúrgicos com DISI base de dióxido de cloronfectant durante 15 minutos, enxaguar e voltar para o laboratório para esterilização e reutilização quando necessário. </li><li> Casa dos ratos individualmente em gaiolas limpas em ambiente quente. </li><li> Confira no animal a cada 30 minutos até que ele recobra a consciência e começa a se mover; e, posteriormente, em intervalos de 12 h para os primeiros 3 dias pós-cirurgia. </li><li> Manter os ratinhos na instalação de BSL2 animais ao longo da experiência. Certifique-se de que somente o tecido contido na caixa selada deixarem a instalação BSL2 animal. Se os ratinhos expressam qualquer um dos comportamentos moribundos (definida como dificuldade respiratória, letargia, insuficiência de deambulação em resposta à estimulação suave) em qualquer momento do estudo, os ratinhos eutanásia por inalação de CO 2 a partir de uma fonte mineral seguido por deslocamento cervical. </li><li> Euthanize o assunto experimental por sangria sob anestesia. <ol><li> Recolhe tecido pulmonar de ratos submetidos a eutanásia. Realizar esses procedimentos em uma capa BSL2. Se necessário, transferir a amostra usando tubos vedados colocados em um rack em toalhas de papel carregado desinfetantes em uma caixa de tampa snap para posterior processo. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Ware, L. B., Matthay, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">The acute respiratory distress syndrome.</a> N Engl J Med. 342, 1334-1349 (2000).</li>
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<li>Kobayashi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+chemokines+in+neutrophil+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci%22%5BJournal%5D)">The role of chemokines in neutrophil biology.</a> Front Biosci. 13, 2400-2407 (2008).</li>
<li>Matute-Bello, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+acute+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Animal models of acute lung injury.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 295, L379-L399 (2008).</li>
<li>Sadikot, R. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+immunomodulation+of+the+nf-kappab+pathway+in+airway+epithelium+impacts+host+defense+against+pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Targeted immunomodulation of the nf-kappab pathway in airway epithelium impacts host defense against pseudomonas aeruginosa.</a> J Immunol. 176, 4923-4930 (2006).</li>
<li>Pinto, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+experimental+model+of+neutrophilic+pulmonary+response+induction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pneumologia%22%5BJournal%5D)">Development of an experimental model of neutrophilic pulmonary response induction in mice.</a> J Pneumologia. 29, 213-214 (2003).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O modelo de lesão pulmonar rato Pseudomonas que descrevemos aqui imita todo o processo de inflamação, lesão pulmonar, reparo e resolução que ocorrem após a lesão pulmonar aguda ou pneumonia. Ele tem vantagens únicas comparando com vários outros modelos de lesão em que é clinicamente relevante e relativamente seguro e fácil de manusear. O passo crítico no processo é que a solução de injecção de bactérias tem de ser muito lento. Se a injecção for demasiado rápido, os ratinhos são propensas a m...

Os pulmões são expostos a agentes patogénicos ambientais e são susceptíveis a inflamação e lesão 1-3. Durante condições patológicas como pneumonia ou Síndrome da Angústia Respiratória Adulto (SARA), patógenos, bem como fatores inflamatórios liberados por leucócitos induzir lesão e morte das células alveolares 1-3. É importante para o desenvolvimento de modelos animais de lesão pulmonar aguda para facilitar o estudo de lesões da patologia, bem como mecanismo de reparação. Atualmente, a maioria das pessoas usam hiperóxia e bleomicina rato induzida modelos de lesão pulmonar 4. No entanto, os mecanismos de hiperoxia causado um prejuízo não são o mesmo que a maioria das lesões pulmonares comuns que ocorrem durante a pneumonia ou ARDS 5. Bleomicina lesão aguda induzida é raro em um contexto clínico 4. Aqui nós relatamos um modelo de lesão pulmonar mouse usando a injeção intra-traqueal de P. aeruginosa 6,7. Este modelo é clinicamente relevante, e imita a processes que acontecem após pneumonia 8. Como um patógeno oportunista, nosocomial de indivíduos imunocomprometidos, P. aeruginosa normalmente infecta o trato pulmonar, urinário, queimaduras, feridas, e também causa outras infecções sanguíneas 6. A bactéria liberta virulência fator exotoxina A, multiplicar e desencadear respostas imunes 6. Administração intra-trachael de P. aeruginosa reflecte a situação em exposição humana para as bactérias que causam a pneumonia e a patologia é provável que seja diferente do modelo de lesão pulmonar induzida por vírus da gripe H1N1 recentemente relatado 9. Desde P. aeruginosa é um agente patogénico oportunista, é relativamente seguro de manusear em comparação com alguns dos agentes patogénicos mais virulentas. Aqui utilizou-se a injecção intra-traqueal para administrar as bactérias porque observou-se que este método introduzido mais bactérias na região distal alvéolos do pulmão em comparação comalguns outros procedimentos, tais como a utilização de um cateter através da boca. Em comparação com outros modelos de lesão pulmonar aguda, o P. aeruginosa modelo descrito é apropriado para o estudo de lesão pulmonar induzida por bactérias e por inflamação excessiva. Ao contrário de outros modelos animais que utilizam P. aeruginosa a indução da sepse 10,11, aqui vamos usar a injeção intra-traqueal destas bactérias para induzir localizada lesão pulmonar aguda.

<table><tbody><tr><td>Anestésico: Cetamina, xilazina, lidocaína, buprenorfina</td><td></td><td></td><td>grau farmacêutico</td></tr><tr><td>27 G</td> seringa <td></td><td>Fisher 1482648</td><td></td></tr><tr><td>seringa</td><td>Fisher</td><td>14823434</td> tesoura de <td>1 ml</td></tr><tr><td>Pinças</td><td>de ferramentas</td><td></td><td></td>Fine Science</tr><tr><td>Sutura</td> de <td>ferramentas</td><td></td><td></td>Fine Science</tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>19-037-526</td><td></td></tr><tr><td>Medidor de olhos, luva, bata</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biossegurança Armário</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>desinfetante</td><td></td><td></td> à base de dióxido de cloro <td>Clidox</td></tr><tr><td>placas de ágar sangue de ovelha&nbsp;</td><td>Fornecimento Medex</td><td>HL-1160</td><td></td></tr></tbody></table>

pseudomonas aeruginosa lesão pulmonar induzida modelo

Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model

A fim de estudar a lesão pulmonar aguda humana e pneumonia, é importante para desenvolver modelos animais para imitar várias características patológicas da doença. Aqui nós desenvolvemos um modelo de lesão pulmonar rato pela injeção intra-traqueal de bactérias Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa ou PA). Utilizando este modelo, fomos capazes de mostrar a inflamação pulmonar na fase inicial da lesão. Além disso, alveolar leakiness barreira epitelial foi observada por análise de lavagem broncoalveolar (BAL); e morte celular alveolar foi observada por ensaio de Tunel usando tecido preparado a partir de pulmões lesionados. Numa fase posterior, após lesão, observou-se proliferação de células necessário para o processo de reparação. A lesão foi resolvida 7 dias a partir do início do P. injecção aeruginosa. Este modelo imita o curso seqüencial de inflamação pulmonar, lesão e reparação durante pneumonia. Este modelo animal clinicamente relevante é adequado para estudar patologia, mecanismo de reparação, fepois lesão pulmonar aguda, e também pode ser utilizado para testar potenciais agentes terapêuticos para esta doença.

A partir 24-72 h pós P. injecção aeruginosa, celularidade aumentada foi observada em secções de pulmão (Figura 1A-D). O pulmão começou a se recuperar a partir de 96 horas pós lesão (Figura 1E). Aos 7 dias pós-P. aeruginosa, alvéolos morfologia normal foi restaurado pela maior parte (Figura 1F). Seções usando pulmonares coloração Tunnel preparado em 24 horas pós P. aeruginosa mostrou a morte celular em células em alvéolos (Figu...

Desenvolvemos um modelo de lesão pulmonar em camundongos por injeção intratraqueal da bactéria Pseudomonas aeruginosa. Este modelo mimetiza a lesão pulmonar durante a pneumonia e é clinicamente relevante.

Pseudomonas aeruginosa Lesão Pulmonar Induzida Modelo

In order to study human acute lung injury and pneumonia, it is important to develop animal models to mimic various pathological features of this disease. ...

O objetivo geral deste procedimento é mimetizar pneumonia, condições de lesão pulmonar no camundongo pela administração de aerógenos pseudomonas. Isso é feito primeiro preparando pseudomonas na concentração apropriada para injeção. Na segunda etapa, a traqueia do camundongo é cuidadosamente exposta e, em seguida, as bactérias são administradas aos pulmões por injeção intratraqueal.Na etapa final, a progressão da doença no camundongo é monitorada cuidadosamente. Em última análise, a inflamação pulmonar, as alterações na morte celular na barreira alveolar e o reparo pulmonar podem ser estudados no pulmão de camundongo injetado com aerógeno de pseudomonas. As implicações dessa técnica se estendem à terapia da lesão pulmonar aguda causada por pneumonia.Como este modelo imita os processos após pneumonia Para criar quats de p Aerogen, PA 1 0 3 para instalação comece transportando um frasco criogênico da bactéria de menos 80 graus Celsius, armazenamento para o nível de biossegurança dois ou BSL dois laboratório em um rack em uma caixa forrada com 70% de etanol toalhas de papel umedecidas. Em seguida, sob uma faixa de capuz BSL dois, o P aerogen PA 1 0 3 colônias bacterianas em placas de ágar sangue de ovelha e cresce as colônias em uma incubadora de 37 graus Celsius. Após aproximadamente 15 horas, use uma alça de bactérias para transferir as colônias em cinco mililitros de PBS.Em seguida, dilua em série as bactérias em mais PBS para um a 10, para quatro, para um a 10 para as sete concentrações para fora da diluição em placas de ágar sangue de ovelha fresco. Então, após cerca de mais 15 horas de incubação, calcule as unidades formadoras de colônias para cada placa para determinar a concentração de bactérias. Em seguida, Eloqua a quantidade apropriada de bactérias em 0,5 mililitros de PBS em frascos criogênicos de 1,5 mililitros, com tampa de rosca estéril e, em seguida, coloque os frascos selados em um rack de frascos criogênicos em toalhas de papel carregadas de desinfetante em uma caixa com tampa de pressão em um armário BSL dois, cubra suavemente os olhos do animal com pomada de veto funcionando.Raspe rapidamente a incisão e limpe a pele usando cotonetes alternados de álcool e iodopovidona três vezes e confirme a sedação pelo dedo do pé. Belisque, prenda o mouse em uma placa cirúrgica após tratar a pele com um anestésico local. Em seguida, faça uma pequena incisão de cinco milímetros na linha média do pescoço do animal e use uma pinça romba para mover suavemente o músculo para acessar a traqueia.Quando a traqueia tiver sido exposta, aspire até uma vez 10 elevado às cinco unidades formadoras de colônias da bactéria em 20 a 30 microlitros de PBS em uma seringa descartável de um mililitro equipada com uma agulha de calibre 27. Em seguida, insira a agulha na traqueia e injete lentamente a solução. Certifique-se de que o animal engasgue, o que geralmente indica que a solução atingiu o pulmão.Agora feche assepticamente a ferida com seis suturas estéreis de monofilamento zero e administre a analgesia pós-operatória. Em seguida, descarte as seringas e agulhas no recipiente apropriado para objetos cortantes de risco biológico após a injeção de cada animal. Como os myers estão sozinhos em gaiolas limpas em um ambiente quente?Verificando os animais a cada 30 minutos até que eles recuperem a consciência e comecem a se mover. Trate os instrumentos cirúrgicos com desinfetante de dióxido de cloro por 15 minutos. Em seguida, enxágue e devolva as ferramentas ao laboratório para esterilização adicional, conforme necessário.Aloje os camundongos na instalação de dois animais BSL durante todo o experimento e, após a exsanguinação sob anestesia, colete o tecido pulmonar de cada animal sob um capuz BSL dois. Finalmente, se desejar processamento adicional, transfira as amostras em tubos selados colocados em um rack em toalhas de papel carregadas de desinfetante em uma caixa com tampa de pressão para a instalação de processamento apropriada. Neste experimento representativo de 24 a 72 horas após a injeção de P aerogênio, um aumento da celularidade pode ser observado nas seções pulmonares.Em 96 horas, o pulmão começou a se recuperar e, em sete dias, a morfologia normal dos alvéolos é amplamente restaurada. A coloração em túnel de seções pulmonares preparadas 24 horas após a instalação do árogênio P exibe morte celular dentro das células dos alvéolos para estudar o processo de reparo. Nesta lesão, o modelo BRDU pode ser injetado nos camundongos três dias após a administração do arógeno p.Conforme ilustrado, os animais tratados com p aerógeno exibem hiperproliferação no tecido pulmonar em comparação com os animais tratados com controle. Para estudar as mudanças na barreira, permeabilidade e inflamação pós-lesão, a lavagem broncoalveolar ou o fluido intestinal podem ser coletados em diferentes momentos. Após a injeção de aerógeno p, por exemplo, a concentração de proteína no intestino aumenta significativamente 48 horas após a instalação bacteriana, indicando vazamento da barreira epitelial do número de células.O intestino também está aumentado significativamente neste momento, sugerindo uma resposta inflamatória quatro a cinco dias após a injeção de P aerogênio, tanto o nível de proteína intestinal quanto o número de células começam a diminuir, sugerindo recuperação. Além disso, um nível de proteína inflamatória de macrófagos dois, uma citocina envolvida na atração de neutrófilos, aumenta significativamente em 48 horas e depois retorna aos níveis basais em 96 horas. Nos lisados pulmonares sem aerógeno p, apenas um pequeno número de monócitos é observado no fluido intestinal.Em contraste, um grande número de neutrófilos está presente no intestino, isolados 48 horas após a injeção. Em 96 horas, a composição celular do intestino retorna aos níveis de controle Após este procedimento. Outros métodos, como coleta histológica, seccionada ou de lavagem broncoalveolar, podem ser realizados para responder a perguntas adicionais, como: quais células ou fatores estão envolvidos na inflamação e reparo após lesão pulmonar aguda?

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Descreve-se o método de ágar-esferas de estabelecer infecção das vias aéreas persistente a longo prazo crônica Pseudomonas aeruginosa no modelo de mouse.

Crônica de Longo Prazo<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; Infecção das vias aéreas em ratos

Descreve-se um método para a indução de inflamação pulmonar neutrofílica desafio por aerossol para lipopolissacarídeo por nebulização, para modelar a lesão pulmonar aguda. Além disso, também são descritas as técnicas cirúrgicas básicas para isolamento pulmonar, intubação traqueal e lavado bronco-alveolar.

Um método para gerar Pulmonar Neutrofilia Usando Aerosolized Lipopolysaccharide

Embora o estudo in vitro das interações patógeno-hospedeiro permita a caracterização de respostas imunes específicas, modelos in vivo são necessários para observar os efeitos de respostas complexas. Usando a exposição a Candida albicans seguida de infecção pulmonar mediada por Pseudomonas aeruginosa, estabelecemos um modelo murino de interações microbianas envolvidas na patogenicidade da pneumonia associada à ventilação mecânica.

Estudar comunidades microbianas<em&gt; In Vivo</em&gt;: Um modelo de interação mediada por anfitrião entre<em&gt; Candida Albicans</em&gt; E<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; Nas Airways

Vários métodos foram descritos na literatura para a modelagem de pneumonia bacteriana em murganhos. Aqui, nós descrevemos um método de baixo custo, rápida não-invasiva para induzir pneumonia por aspiração (isto é, por inalação) de um inoculo bacteriano pipetados para a orofaringe. métodos a jusante para avaliação da resposta imune inata pulmonar também são detalhados.

Um método não-invasivo e tecnicamente não-intensivo para indução e fenotipagem of Experimental pneumonia bacteriana em ratos

Um método para estabelecer infecções pulmonares em roedores imunocompetentes é descrito. Com proficiência, este método pode ser realizado de forma rápida e fácil para induzir infecção estável com muitos isolados de S. pneumoniae, H. influenzae, P. aeruginosa, K. pneumoniae e A. baumannii.

Um Modelo Pneumonia robusta em imunocompetentes Roedores para avaliar antibacteriano Eficácia contra<i&gt; S. pneumoniae</i&gt;,<i&gt; H. influenzae</i&gt;,<i&gt; K. pneumoniae</i&gt;,<em&gt; P. aeruginosa</em&gt; ou<em&gt; A. baumannii</em

Métodos simples são descritos para demonstrar a produção de amiloides citotóxicos após infecção do endotélio pulmonar por Pseudomonas aeruginosa.

Métodos para detecção de citotóxicos amiloides seguir infecção de pulmonar células endoteliais por Pseudomonas aeruginosa

É apresentado aqui um procedimento passo a passo para induzir ferimento de pulmão agudo nos ratos pela instilação intratraqueal direta do lipopolissacarídeo e para executar a análise de FACS de amostras de sangue, de líquido broncoalveolar do lavagem, e de tecido do pulmão. A invasividade mínima, o manuseio simples, a boa reprodutibilidade e a titulação da severidade da doença são vantagens dessa abordagem.

Induzindo lesão pulmonar aguda em camundongos por instilação de lipopolissacárido intratraqueal direto

Descrevemos um protocolo de inoculação atrasado para gerar infecções crônicas de feridas em camundongos imunocompetentes.

Um modelo de inoculação retardada da infecção crônica de pseudomonas aeruginosa ferida

Este manuscrito descreve o estabelecimento de um modelo infeccioso de pneumonia em camundongos e a respectiva caracterização da resolução da lesão juntamente com métodos de crescimento de bactérias e instilação intratraqueal. Uma nova abordagem usando citometria de fluxo de alta dimensão para avaliar a paisagem imune também é descrita.

Modelo experimental para avaliar a resolução da pneumonia

Atualmente, faltam modelos in vivo passíveis de triagem de medicamentos contra infecções bacterianas crônicas. Aqui, descrevemos um protocolo para infecção de ferida por um isolado clínico de Pseudomonas aeruginosa para gerar uma infecção persistente em larvas de peixe-zebra.

Modelagem de infecção persistente por Pseudomonas aeruginosa em larvas de peixe-zebra feridas

Neste estudo, uma técnica não invasiva de instilação endotraqueal demonstrou desenvolver ALI em ratos usando um laringoscópio básico para garantir a entrega precisa de LPS aos pulmões. O LPS é injetado por meio de um tubo endotraqueal usando um laringoscópio. A magnitude da lesão pulmonar é avaliada em vários momentos.

Administração endotraqueal não invasiva de lipopolissacarídeo para induzir lesão pulmonar aguda em roedores

Aprenda a criar um modelo de lesão pulmonar induzida por Pseudomonas aeruginosa em camundongos via injeção intratraqueal. Este método permite estudar inflamação, morte celular e reparo alveolar em lesão pulmonar aguda.

Pseudomonas aeruginosa Lesão Pulmonar Induzida Modelo

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