Name: Um procedimento cirúrgico para ressecção do mouse Rib: Um Modelo de Grande Escala Repair longo osso (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 42 s
Description: Aprenda a realizar ressecção cirúrgica de costela em camundongos para estudar reparação óssea em grande escala. Este modelo permite observar eventos celulares e moleculares durante a regeneração esquelética in vivo.

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Agradecemos aos membros do laboratório Mariani pela leitura crítica do manuscrito. Nossas fontes de financiamento foram: a Baxter Medical Scholar Research Fellowship (para MKS), bolsas de graduação da USC e o Reitor, Dean Joan M. Schaeffer e Rose Hills Fellowships, (para MKS). Também reconhecemos uma bolsa CIRM BRIDGES através do Pasadena City College (para TTT). e o Fundo de Pesquisa e Inovação James H. Zumberge, a Iniciativa de Medicina Regenerativa da USC e o NIAMS NIH sob o Prêmio Número R21AR064462 (para FVM).

NOTA: Todos os procedimentos estão em conformidade com um protocolo de animais aprovado pelo cuidado e uso Comitê de animal Institucional (IACUC) da Universidade do Sul da Califórnia. 1. Preparação para a cirurgia <ol><li> Separe as ferramentas e suprimentos cirúrgicos necessários (esterilizado, itens 1-18 na lista de materiais) e organizar um microscópio de dissecação e uma fibra óptica trans-iluminador em uma capa ou em uma mesa de corrente descendente. </li><li> Coloque um rato sexualmente maduros (20-30 g, 1-3 meses de idade) em uma câmara de indução com 4% de isoflurano para induzir a anestesia. </li><li> Confirme a anestesia com uma pata e / ou teste de cauda pitada. </li><li> Aplicar pomada para os olhos do rato para evitar o ressecamento do olho durante a cirurgia. </li><li> Mova o rato para o estágio do microscópio. Posicione o mouse para dentro do cone do nariz da mangueira de manutenção e posicionar lateralmente. Proporcionar uma bolsa de aquecimento adjacente ao animal para ajudar a manter a temperatura corporal. NÃOE:. Posição do rato é dependente de preferência pessoal e / ou destreza manual do cirurgião, do lado esquerdo ou direito está bem. </li><li> Ajuste isoflurano a 2 - 3% para manutenção, e assistir a freqüência respiratória. </li><li> Injectar buprenorfina (0,05 mg / kg) subcutaneamente (flanco lateral da perna) para a dor pós-operatória com uma agulha 25 G. A perna pode contorcer-se que é uma resposta normal. </li></ol> Incision 2. Abertura <ol><li> Detectar a costela desejado por palpação, e limpar a área de cabelo com uma máquina de barbear. NOTA: Reforços 8-10 são recomendados desde costelas 1-7 estão mais próximos dos pulmões e 11-13 são consideravelmente mais curto. Contando as costelas deve começar com a costela mais rostral como número 1. </li><li> Preparar a área alternando com povidona-iodo e de isopropanol (70%) raspagem (3x é frequentemente recomendada pelos protocolos de utilização de animais). </li><li> Corte de 2 cm da incisão através da pele, directamente por cima e paralela à nervura desejado com uma tesoura de microcirurgia e média dimensão. IncÉe através das camadas musculares e adiposas subjacentes. </li><li> Coloque todos os três camadas (pele, músculo, gordura) em um retractor para expor o local cirúrgico, minimizando o tamanho da incisão. </li></ol> 3. excisão do Rib <ol><li> Corte através dos músculos intercostais que recobrem a seção desejada da costela com um bisturi 5,0 milímetros. Posição esta incisão de cerca de 5 mm proximal à articulação do condrocostais como este é onde a costela não é tão altamente curvado. Separe cuidadosamente o músculo do osso com uma pinça de ponta fina. </li><li> Para criar uma ressecção, mantendo o periósteo no animal, por meio de corte do periósteo, ao longo do comprimento da nervura com um bisturi 5,0 milímetros. Separe cuidadosamente o periósteo do osso subjacente lateralmente com uma pinça de ponta fina. Proceda com cuidado, como o periósteo é muito delicada e tem uma consistência gelatinosa. </li><li> Em seguida, faça um corte transversal através do osso numa extremidade com micro-tesouras finas. Se necessário, medir a ressecção comum retículo no microscópio ou um medidor tipo régua. Em seguida, levantar cuidadosamente o osso para fora do periósteo e cortar na outra extremidade. NOTA: Proceda com cuidado. Esta é a etapa mais delicada, como puxar para cima sem excisão do costela abaixo vai rasgar a membrana pleural e resultar em um pneumotórax. Se a membrana pleural é rasgada este será facilmente evidente como o interior da cavidade torácica, tornam-se visíveis. </li><li> Se o sangramento ocorre como um resultado de corte do osso, aplicar pressão na extremidade de corte com um cotonete para 4-5 segundos para parar a hemorragia. NOTA: Nas raras ocasiões em que o sangramento continua, pode ser necessário parar e sacrificar o animal a perda de sangue tão significativa comprometerá recuperação (sem reposição de líquidos, o volume máximo de sangue que pode ser seguramente ser perdido é de 10% do volume total de sangue ou 7.7 -. 8 mL / g para 25 g um rato, isso é equivalente a cerca de 180-200 mL 9). </li><li> Colocar imediatamente a nervura removido emPFA 4% para análise futura. NOTA: Se a ressecção de ambos os ossos e do periósteo é para ser realizada, omitir o periósteo incisão e separação (passo 3.2). Desde o periósteo é muito bem ligado à membrana pleural proceder com cautela, provocando a costela longe da membrana pleural com uma pinça para evitar rasgos. </li></ol> 4. fechar a incisão <ol><li> Suturar os músculos intercostais ao longo do topo da manga periosteal remanescente com 9-0 suturas (2 suturas são geralmente suficiente). Coloque as suturas diretamente acima das extremidades cortadas do costela, para atuar como indicadores para o local da cirurgia. </li><li> Remover o afastador. Suturar o músculo e gordura sobreposta com 9-0 suturas (3-4 suturas são normalmente suficientes). Em ratinhos com camadas particularmente espessas de músculo e / ou a gordura, suturar cada camada em separado (por exemplo, uma camada de fios de sutura para a camada muscular e uma camada de suturas para a camada de gordura). </li><li> Feche opele com 7-0 (4-5 suturas são normalmente suficientes). </li><li> Fixe a incisão com cola de sutura, apertando as bordas junto com grandes fórceps. </li><li> Lentamente desmamar o mouse para fora isoflurano ajustando primeiro a 1% por alguns minutos e, em seguida, desligue. </li><li> Posicione o mouse sob uma lâmpada de fogo e deixe até que a consciência é recuperada, 5 - 10 min. Depois de consciência é recuperada e durante todo o período de cicatrização, o rato deve mover-se e deambular normalmente e não mostram sinais de angústia. </li></ol> 5. Recuperação e Análise <ol><li> Fornecer o manejo da dor pós-operatória, incluindo a administração de buprenorfina de forma oral de gelatina a 0,5 mg / kg a cada 12 horas para 48 horas. A administração oral não necessita de prender o animal que pode causar dor na região torácica. </li><li> Manter o rato em uma gaiola com livre acesso a comida e água durante o período de cicatrização. Após a incisão é seca, as fêmeas podem ser co-macho alojados enquantos deve permanecer isolada para evitar lutas. </li><li> Após o período de cicatrização, siga o procedimento aprovado para a eutanásia. Retire a caixa torácica para fixação e análise. </li></ol>

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<li>Pelled, G., Gazit, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+using+osteocalcin-luciferase%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+musculoskeletal%22%5BJournal%5D)">Imaging using osteocalcin-luciferase.</a> Journal of musculoskeletal. 4 (4), 362-363 (2004).</li>
<li>Elefteriou, F., Yang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+mouse+models+for+bone+studies--strengths+and+limitations%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Genetic mouse models for bone studies--strengths and limitations.</a> Bone. 49 (6), 1242-1254 (2011).</li>
<li>Srour, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+large-scale+regeneration+of+rib+cartilage+in+a+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bone+Miner%22%5BJournal%5D)">Natural large-scale regeneration of rib cartilage in a mouse.</a> J. Bone Miner. , (2014).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar

Quando aprendendo este protocolo, determinando onde localizar a incisão inicial pode ser um desafio. No entanto, a prática em ratos sacrificados ajuda o cirurgião saber onde colocar a incisão inicial e expor a costela desejado a ser ressecado. Trabalhando em cadáveres também melhora as habilidades motoras fine-necessárias para remover a porção de costela com ou sem o periósteo. Além disso, alguém novo para este procedimento pode encontrar manipular as ferramentas finas e suturas finas para ser difícil. Enquanto amarraçã...

Debilitante lesão esquelética, artrose crônica, e os graves problemas associados com a cirurgia reconstrutiva impactar a produtividade econômica, o bem-estar da família e qualidade de vida. Enquanto pequenas pausas e lesões podem curar razoavelmente bem, os seres humanos não são capazes de reparar defeitos grandes e, portanto, deve contar com procedimentos reconstrutivos para restaurar a estrutura e função. Reconstrução pode envolver transplante alogênico ou heterogeneic, osso morcellized, andaimes implantados, ou distração osteogênica. Infelizmente, não só existem fatores de morbidade persistentes associados a esses tratamentos, mas a força original do osso reparado é raramente alcançada. Assim, são necessárias novas abordagens clínicas. One-way para desenvolver métodos inovadores para o tratamento de defeitos segmentares é estudar as situações em que o reparo em grande escala ocorre naturalmente. Anfíbios famosa pode regenerar elementos esqueléticos, enquanto os mamíferos são considerados limitados em thé a capacidade. No entanto, desde o início do século 20, alguns relatos de regeneração na costela humana foram publicados sugerindo que os humanos não podem ser tão limitado 1-4. Atualmente este fenômeno é mais conhecido por cirurgiões plásticos que utilizam material de costela para queixo, rosto e orelha de reconstrução, mas não é mais amplamente apreciada 5. Para estudar este reparo em mais detalhes, nós desenvolvemos um modelo cirúrgico usando o mouse. Usando este protocolo, os pesquisadores podem identificar os fatores inatos envolvidos e usar essa informação para facilitar a cicatrização óssea em outras localidades. Há muitas vantagens em usar as costelas como um modelo para o estudo de reparação óssea. Em primeiro lugar, as nervuras circundantes proporcionar um fixador naturais (como comparado a ressecção do fémur 6,7). Isso diminui o risco de morbidade de fixadores internos e externos e simplifica o procedimento cirúrgico. Em segundo lugar, as camadas musculares finas dos wa peitovai fornecer para fácil acesso e excelente visibilidade que fazer o ensaio comparável à conveniência de ressecções calota craniana 8. Em terceiro lugar, em contraste com a calvárias que formam por ossificação intramembranosa, a forma de nervuras ossificação endocondral e crescer em comprimento por meio de extensão em placas de crescimento localizadas em cada extremidade de uma diáfise central. Portanto, a reparação das costelas pode ser mais comparável ao reparo dos ossos longos do esqueleto apendicular. Além disso, verificou-se que em comparação com o fémur, no periósteo da nervura é mais espessa e pode ser mais facilmente manipulado. Assim, os investigadores que desejam para ensaiar a reparação óssea com a finalidade de estudar o periósteo ou testar terapias celulares, agentes farmacológicos, e / ou suportes de tecido podem encontrar este modelo cirúrgico útil. Em resumo, este modelo de ressecção de costela fornece um contexto no qual a estudar reparação óssea em grande escala natural em mamíferos como existe tal modelo em uso geral existe atualmente.

<table><tbody><tr><td>Tesoura de micro-dissecação de tamanho médio (Vannas-T&uuml; bingen Spring Scissors 5 mm)</td> <td>Fine Science Tools</td><td>15003-08</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de micro-dissecação fina (Vannas Spring Scissors - 2mm Cutting Edge)</td> <td>Fine Science Tools</td><td>15000-04</td><td>ponta curva é benéfica</td></tr><tr><td>Micro-bisturi 5,0 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>10315-12</td><td>outros bisturis finos podem ser substituídos</td></tr><tr><td>Dumont 55 fórceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11295-51</td><td></td></tr><tr><td>Retrator</td>O ajuste da <td>Fine Science Tools</td><td>17004-05</td><td>é conveniente</td></tr><tr><td>Suportes de micro-agulha</td><td>Fine Science Tools</td><td>12060-01</td><td></td></tr><tr><td>9.0 suturas de nylon (Ethilon), ponto de conicidade melhor</td><td>Ethicon</td><td>2819G ou</td><td>ponto de conicidade semelhante melhor, mas o corte reverso também é bom</td></tr><tr><td>7.0 suturas de prolene (Prolene)</td> <td>Ethicon</td><td>8700H ou similar</td><td>6-0 também pode ser usado, a ponta da agulha pode variar</td></tr><tr><td>Fórceps grandes (Adson Forceps)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11006-12</td><td>outras marcas são finas</td></tr><tr><td>Lubrificante Pomada para os Olhos (Akwa Tears)</td><td>Akorn</td><td>17478-062-35</td><td></td></tr><tr><td>Cola de sutura (GLUture Adesivo de tecido tópico)</td><td>Abbot</td><td>32046-01</td><td>tem excelente tempo</td></tr><tr><td>de trabalho Barbeador</td><td>Wahl</td><td>9918-6171 ou similar</td><td></td></tr><tr><td>Lâmpada de grampo</td><td>Zoo Med</td><td>LF-5</td><td></td></tr><tr><td>Lâmpada Infravermelha, 75W</td><td>Zoo Med</td><td>RS-75</td><td></td></tr><tr><td>RC2 Sistema de Anestesia para Roedores</td><td>VetEquip&nbsp;</td><td>922100</td><td></td></tr><tr><td>IsoFlo (Isoflurano)</td><td>Abbot</td><td>05260-05</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfina (Buprenex)</td><td>Reckitt Benckiser</td><td>12496-0757-1</td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Purdue Frederick</td><td>67618015017</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina Aromatizada, gelatina de framboesa</td><td></td><td>B000E1FYL0</td><td>firme, até a consistência de 'jigglers'</td></tr></tbody></table>

um procedimento cirúrgico para ressecção do mouse rib: um modelo de grande escala repair longo osso

A Surgical Procedure for Resecting the Mouse Rib: A Model for Large-Scale Long Bone Repair

Este protocolo introduz investigadores para um novo modelo de grande escala reparação óssea utilizando a costela mouse. O procedimento detalha o seguinte: preparação do animal para a cirurgia, a abertura da parede torácica corpo, expondo a costela desejado a partir dos músculos intercostais circundantes, extirpando a seção desejada da costela sem induzir um pneumotórax, e fechar as incisões. Em comparação com os ossos do esqueleto apendicular, as nervuras são altamente acessível. Além disso, não fixador interno ou externo é necessário uma vez que as nervuras adjacentes proporcionam uma fixação natural. A cirurgia utiliza comercialmente fornecimentos disponíveis, é fácil de aprender, e bem tolerado pelo animal. O procedimento pode ser realizado com ou sem a remoção do periósteo circundante, e, por conseguinte, a contribuição do periósteo ao reparo pode ser avaliada. Os resultados indicam que, se o periósteo é retida, reparação robusta ocorre em 1-2 meses. Esperamos que o uso deste protocoloestimular a pesquisa em reparação de costela e que os resultados irão facilitar o desenvolvimento de novas formas de estimular a reparação óssea em outras localidades ao redor do corpo.

Animais tipicamente recuperar rapidamente a partir deste procedimento, a incisão cura bem, e os animais exibem comportamento normal. O procedimento utiliza fontes comercialmente disponíveis e após a prática, pode ser concluído em menos de 1 hora. Antes de usar este procedimento para gerar os dados experimentais, é importante analisar a ressecção no dia 0 ponto de tempo para determinar se os fragmentos de ossos grandes pode permanecer na zona de ressecção. Uma forma de avaliar o procedimento adequado é avaliar os animais...

O objetivo geral deste procedimento é ressecar com sucesso uma porção de osso da costela de um camundongo. O procedimento foi desenvolvido como um modelo para estudar o reparo de ossos longos em larga escala.

Um procedimento cirúrgico para ressecção do mouse Rib: Um Modelo de Grande Escala Repair longo osso

This protocol introduces researchers to a new model for large-scale bone repair utilizing the mouse rib. The procedure details the following: preparation ...

O objetivo deste procedimento é criar uma ressecção em larga escala na porção óssea de uma costela como modelo para reparo esquelético. Isso é realizado primeiramente criando e abrindo uma incisão através da pele no lado lateral do animal. O segundo passo é expor o osso da costela que será removido.Em seguida, uma porção do osso do arco costal é removida, seja junto com o invólucro de tecido conjuntivo circundante ou com o periósteo, seja deixando o periósteo para trás. O passo final é fechar as incisões e permitir que o animal se recupere. Em última análise, este modelo de reparação óssea pode ser utilizado para demonstrar os eventos celulares e moleculares que ocorrem durante a reparação esquelética em larga escala.Em um mamífero, a demonstração visual deste método é fundamental, pois manipular os instrumentos cirúrgicos exige precisão e uma cirurgia bem-sucedida depende do conhecimento sobre a localização dos diferentes tecidos. A demonstração do procedimento será realizada por Marissa Roar e Nikita Tripper, ambos estudantes de pós-graduação no meu laboratório. Após preparar a área cirúrgica e os instrumentos e suprimentos estéreis necessários, induza anestesia colocando um camundongo adulto em uma câmara de indução com 4% de isoflurano.Uma vez que o camundongo esteja anestesiado, aplique pomada nos olhos do animal e confirme a profundidade da anestesia. Ao realizar um aperto no dedo do pé, não deve haver nenhuma reação ao estímulo. Posicione o camundongo sobre ou próximo a uma almofada aquecida no suporte de um microscópio estereoscópico, com o cone nasal da mangueira de manutenção da anestesia posicionado sobre o nariz do camundongo.Certifique-se de que o camundongo está em posição lateral. Ajuste o isoflurano para dois a 3% para manutenção e observe a frequência respiratória. Em seguida, injete buprenorfina por via subcutânea usando uma agulha de 25 graus.Para a dor pós-cirúrgica preventiva, a perna pode apresentar espasmos, o que é uma resposta normal. Primeiro, selecione a costela desejada palpando a partir da costela mais rostral, que é contada como número um. Neste vídeo, uma porção da décima costela será removida.Raspe a área sobre a costela e, em seguida, limpe com iodopovidina, seguido de isopropanol três vezes. Após fazer uma incisão de dois centímetros através das camadas de pele, músculo e gordura acima da costela a ser ressecada, posicione as três camadas em um afastador para expor a área cirúrgica, minimizando ao mesmo tempo o tamanho da incisão. Em seguida, use um bisturi de cinco milímetros para cortar os músculos intercostais acima da costela em um local cinco milímetros proximal à articulação chocos, onde a costela não é tão fortemente curvada. Depois, separe cuidadosamente o músculo do osso com pinça de ponta fina.A seguir, para criar uma ressecção mantendo o periósteo no animal, corte o periósteo ao longo do comprimento da costela. Em seguida, use pinças de ponta fina para separar cuidadosamente o periósteo delicado lateralmente do osso subjacente. Se necessário, meça a ressecção com um micrômetro no microscópio ou com um paquímetro tipo régua.Em seguida, utilize uma tesoura microfina para fazer uma seção transversal através do osso. Em uma das extremidades, levante cuidadosamente o osso do periósteo e corte a outra extremidade imediatamente. Coloque a costela removida em paraformaldeído 4% para análise futura.Se ocorrer sangramento em decorrência do corte do osso, aplique pressão na extremidade cortada com um cotonete durante quatro a cinco segundos para interromper o sangramento. Para fechar a incisão, suturar os músculos intercostais sobre a parte superior da bainha periostal remanescente com três ou quatro suturas contínuas 9-0. Posicione as suturas diretamente acima das extremidades cortadas da costela para servirem como indicadores do local da cirurgia.Remova o afastador e, em seguida, feche com pontos contínuos de náilon 9-0 o músculo e a gordura sobrejacentes. Suture cada camada separadamente em camundongos com camadas particularmente espessas de músculo ou gordura. Feche a pele com quatro a cinco pontos 7-0 e, em seguida, fixe a incisão com adesivo tecidual.Pinçando as bordas juntas com pinças grandes. Reduza lentamente a concentração de isoflurano para 1% por alguns minutos e, em seguida, desligue o isoflurano. Coloque o camundongo sob uma lâmpada de aquecimento e mantenha-o até que a consciência seja recuperada.Após a recuperação da consciência e durante todo o período de cicatrização, o camundongo deve se movimentar e ambular normalmente, não apresentando sinais de desconforto. Assim que a incisão estiver seca, acomode o camundongo em uma gaiola limpa com livre acesso a alimento e água. Fêmeas podem ser mantidas em grupo, mas machos devem ser acomodados separadamente para evitar brigas, e deve-se fornecer manejo da dor pós-operatória, incluindo a administração de buprenorfina na forma oral de genina a 0,5 miligramas por quilograma a cada 12 horas durante 48 horas.A administração oral não exige a contenção do animal, o que poderia causar dor na região torácica. Esta imagem mostra uma ressecção de 4,5 milímetros de uma costela coletada imediatamente após a cirurgia. Nenhum fragmento ósseo é deixado para trás.A amostra foi corada com vermelho de zarin e clareada em glicerol 80%. A seta indica a localização das extremidades cortadas. Esta é a porção da costela removida da caixa torácica na imagem anterior, sem o periósteo aderido.A seção histológica corada com hematina e eosina mostrada aqui ilustra que há um mínimo de periósteo aderido ao osso, conforme indicado pela seta amarela à esquerda, e nenhum periósteo à direita. O asterisco amarelo indica a cavidade da medula óssea. Esta imagem mostra um fragmento de costela removido com o periósteo ainda aderido, e esta seção histológica mostra o periósteo intacto sobrepondo o osso, conforme indicado pelo colchete amarelo.O asterisco amarelo indica novamente a cavidade da medula óssea. Esta imagem mostra uma preparação esquelética após dois meses de cicatrização seguinte à ressecção com o periósteo intacto dentro do camundongo, podendo-se observar a reparação completa da região. Esta seção histológica da preparação esquelética recém-mostrada demonstra a restauração das paredes do osso lamelar e da cavidade da medula óssea.Esta imagem mostra uma preparação esquelética após três meses de cicatrização. Após a remoção de uma porção da costela e do periósteo circundante, houve apenas uma reparação mínima na extremidade cortada, mostrada à esquerda do painel. A seta amarela aponta para a articulação chocos.Esta seção histológica do preparado esquelético previamente mostrado revela tecido de granulação, células adiposas e musculares preenchendo o local da ressecção. Uma vez dominada, esta técnica pode ser realizada em menos de uma hora, caso seja executada corretamente seguindo este procedimento. Outros métodos, como criar uma ressecção na porção cartilaginosa da costela, podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como, por exemplo, como ocorre a reparação em larga escala do tecido cartilaginoso?Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como criar uma ressecção na porção óssea da costela para estudar a reparação esquelética.I.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Uma restrição da pesquisa pré-clínica no campo do reparo ósseo é a falta de controle experimental sobre o ambiente mecânico local dentro de uma lesão óssea em cicatrização. Relatamos o projeto e o uso de um fixador externo para reparo ósseo com a capacidade de alterar a rigidez do fixador in vivo.

A rigidez ajustável, Fixador Externo para os Rat Femur Osteotomia e segmentar defeito ósseo Models

Modelos animais são frequentemente empregados para mimetizar lesões ósseas graves em pesquisas biomédicas. Devido ao seu pequeno tamanho, o estabelecimento de lesões ósseas estabilizadas em camundongos está além das capacidades da maioria dos grupos de pesquisa. Aqui, descrevemos um método simples para estabelecer e analisar defeitos femorais experimentais em camundongos.

Um Defeito modelo simples Critical porte Femoral em Ratos

Embora os modelos de camundongos sejam ferramentas inestimáveis para a engenharia de tecidos ósseos, os modelos de defeitos de ossos longos são escassos. Essa necessidade motivou o desenvolvimento do presente protocolo, que utiliza uma placa bloqueada com quatro parafusos e um gabarito dedicado para realizar e estabilizar um defeito reprodutível, femoral, de tamanho crítico e com baixa morbidade.

Estabelecimento de um Defeito Modelo segmentar Femoral Critical-size em Ratos estabilizada por osteossíntese Placa

A avaliação do desenvolvimento do tecido no calo de fratura durante a cicatrização de osso endocondral é essencial para monitorar o processo de cicatrização. Aqui, nós relatamos o uso de uma ressonância magnética (MRI)-fixador externo compatível para o fêmur do mouse para permitir MRI varreduras durante a regeneração óssea em ratos.

Na Vivo Avaliação do desenvolvimento de calo de fratura durante a consolidação óssea em ratos usando um dispositivo de osteossíntese compatível com MRI para o fêmur de Mouse

Este protocolo descreve um modelo do rato de cirurgia ortopédica que tem sido usado para estudar os mecanismos de neuroinflammation pós-operatória e alterações comportamentais e quando combinado com parabiosis, para estudar a regeneração de tecidos durante o envelhecimento.

Um modelo do rato de cirurgia ortopédica para estudar a disfunção cognitiva pós-operatória e regeneração de tecidos

Este protocolo descreve uma técnica de osteossíntese minimamente invasiva usando um parafuso de haste intramedular padronizada estabilização de fraturas de fêmur, o que pode ser usado para analisar endocondral consolidação óssea em ratos.

Um modelo minimamente invasivo para analisar a fratura endocondral cura em ratos sob condições biomecânicas padronizadas

Apresentamos um modelo de osteogênese de distração da tíbia do rato desenvolvido usando um distrator feitos sob medida. O uso de um rato como um alvo de análise é vantajoso para fazer avançar a pesquisa.

Um modelo de osteogênese de distração do rato

O modelo murino fratura fechada do fêmur é uma plataforma poderosa para estudar a consolidação da fratura e novas estratégias terapêuticas para acelerar a regeneração óssea. O objetivo do presente protocolo cirúrgico é gerar fraturas femorais fechadas unilaterais em camundongos, usando uma haste intramedular aço para estabilizar o fêmur.

A geração de fraturas fechadas de fêmur em ratos: um modelo para estudar a consolidação óssea

Este protocolo descreve um método para realizar fraturas em camundongos adultos e monitorar o processo de cura.

Fratura transversa do fêmur do rato com pino estabilizador

Este protocolo descreve um procedimento cirúrgico para o estabelecimento de uma fratura diafisária no fêmur de camundongos, que é estabilizada com um fio intramedular, para estudos de consolidação da fratura.

Estabelecimento de um Modelo de Fratura Diafisária do Fêmur em Camundongos

Este protocolo apresenta um método abrangente e eficiente para análise do reparo ósseo mandibular. Descrevemos uma técnica reprodutível para fratura mandibular não estabilizada em modelo de camundongo, permitindo a análise do processo de reparo ósseo endocondral com mínimo dano tecidual e perda óssea.

Técnica menos invasiva para fratura mandibular não estabilizada em modelos de camundongos

Aprenda a realizar ressecção cirúrgica de costela em camundongos para estudar reparação óssea em grande escala. Este modelo permite observar eventos celulares e moleculares durante a regeneração esquelética in vivo.

Um procedimento cirúrgico para ressecção do mouse Rib: Um Modelo de Grande Escala Repair longo osso

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