Name: Produção de Nurr-1 policlonal específico Anticorpos Livre de reactividade cruzada contra o seu próximo homólogos, NOR1 e Nur77 (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 30 s
Description: Aprenda a aumentar a especificidade de anticorpos policlonais contra proteínas homólogas utilizando cromatografia de afinidade com domínios divergentes. Este método remove anticorpos reativos cruzados mantendo alta afinidade pelo alvo desejado.

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Este trabalho foi apoiado por bolsas do NIH (NS070577 e NS084869).

Nota: A composição de todas as soluções a seguir indicadas podem ser encontrados na Tabela Materiais / Equipamento. 1. Proteína A coluna de anticorpo Purificação <ol><li> Equilibrar a coluna de proteína A rotação e todos os tampões necessários à temperatura ambiente durante 15 min antes de iniciar o procedimento. </li><li> Diluir o soro imune 1: 1 com a proteína A de IgG Binding Buffer. (5 ml de soro é recomendado). </li><li> Bata levemente uma coluna de proteína rodada na bancada para desalojar qualquer resina que pode ser apresentado na tampa. Remova a tampa superior e encaixe delicadamente fora do fecho da parte inferior. Inserir a coluna no tubo de recolha de 15 ml de solução de armazenamento e permitir o seu escoamento. </li><li> Adicionar 5 ml de Proteína A IgG tampão de ligação e permitir que a solução escorra. </li><li> Aplicar o soro imune diluído para a coluna e recolher o fluxo de passagem. Para melhores resultados, adicionar um volume de amostra que contém uma concentração de anticorpos menos de 80% da ligação do anticorpo-capacit da colunay. </li><li> Lava-se a coluna com 15 ml de Proteína A IgG Binding Buffer ou até a absorvância a 280 nm é inferior a 0,1. </li><li> Adicione 100 ml de Neutralização Buffer para cinco tubos de coleta marcadas. </li><li> Adicionar 5 ml de tampão de eluição de IgG ao da Proteína A coluna e recolher fracções de 1 ml em cada um dos tubos contendo 100 ul de tampão de neutralização. </li><li> Medir a absorção de cada fração de 280 fracções nm e piscina com uma absorvância superior a 0,5. Mantenha as fracções reunidas em gelo até estar pronto para diálise. </li><li> Regenerar a coluna por adição de 8 ml de tampão de eluição de IgG e permitir que a solução flui através da coluna. </li><li> Lavar a coluna com solução de ligação a IgG da Proteína A, até os retornos eluente de pH para 7,4. </li><li> Armazenar a coluna através da adição de 5 ml de solução de armazenamento (azida de sódio a 0,02% em PBS). Quando cerca de 3 ml permanecem na coluna, tampa inferior e prenda a tampa superior. Armazenar a coluna a 4 ° C. </li><li> Determinar o comprimento Of tubagem de diálise necessária de acordo com as instruções do fabricante. Usando tubagem plana 16 milímetros de diâmetro utilizar 5,47 centímetro de comprimento do tubo por ml de solução a ser dialisado. Cortar o tubo e enxaguar com PBS pH 7,4 durante 15 a 30 min. </li><li> Dobrar e cortar uma extremidade do tubo de diálise, a transferência de IgG reunida continha as fracções para tubo de diálise equilibrada em PBS pH 7,4 e fechar a outra extremidade. </li><li> Dialisar à temperatura ambiente contra 200 volumes de PBS, pH 7,4 durante 2 horas. </li><li> Mudar o tampão de diálise (PBS fresco pH 7,4) e dializar durante mais 2 horas à temperatura ambiente. </li><li> Mudar o tampão de diálise (PBS fresco pH 7,4) e diálise durante a noite a 4 ° C. </li><li> Manter a solução de anticorpo dialisado a 4 ° C até estar pronto para prosseguir com outros passos de purificação. </li><li> Avaliar a concentração de anticorpo utilizando a sua absorvância a 280 nm, e o coeficiente de absorção molar de anticorpos a 280 nm de 210,000 M-1 cm-1 12. </li></ol> 2. Acoplamento de proteínas LBD para Aminolink Resina Acoplamento <ol><li> Prepare duas colunas, uma para a outra e NOR1 para Nur77. Seguir o mesmo protocolo para ambas as proteínas. </li><li> Descongelar a proteína a ser acoplada à resina em gelo. Determinar a concentração de proteína utilizando o seu coeficiente de extinção molar e a sua absorvância a 280 nm de 12. <ol><li> Em alternativa, usar um ensaio de determinação de proteínas, tais como o ensaio de ácido bicinconínico 13. Se a proteína é dissolvida num tampão de diálise de troca contendo amina ou tampão contra a atrelagem. Se a proteína é de um tampão adequado (não há aminas livres) dilua 4 vezes em tampão de acoplamento. </li></ol></li><li> Utilizar 2 ml de resina por 2 mg de proteína. Todos os passos que se seguem são para a resina de 2 ml numa coluna de 10 ml. Até 10 mg de proteína pode ser ligado por 1 ml de resina (2 ml de 1: 1) pasta. </li><li> Prepara-se uma coluna de 10 ml por meio de uma frita de empurrar para o fundo e rodando PBS pH 7,4 através dele. Cap tele parte inferior da coluna e adicionar 2 ml de tampão de acoplamento. </li><li> Adicionar o volume pretendido de suspensão (4 ml para se obter 2 ml de resina) para a coluna, remover a tampa de fundo e deixar a coluna de drenagem. Lavar a coluna com um total de 6 ml (volume de leito de resina 3) de atrelagem e permite que a coluna para drenar. Depois que o tampão de acoplamento tenha escorrido, recoloque a tampa inferior. </li><li> Adicionar 2-4 ml de proteína suspensa em tampão de acoplamento para a coluna (manter-se uma alíquota da solução de proteína para avaliar a eficiência de acoplamento por comparação da concentração de proteína do eluato na etapa 2.11 usando a absorvância a 280 nm ou o ensaio de ácido bicinconínico) . Tampa e misture sobre a extremidade final para ter uma solução homogénea. </li><li> Pesar um tubo de microcentrífuga de 1,8 ml vazio e passar para a capela. Transferir cuidadosamente NaCNBH3 (cerca de 0,05 g) no tubo pré-pesado. Fechar o tubo e pesar o tubo contendo NaCNBH3. Não abra o tubo fora do capô. </li><li> Com base no peso deNaCNBH3 transferida para o tubo, fazer uma solução 5 M por adição de NaOH 1 M. O peso molecular de NaCNBH3, por conseguinte, é 62,84 g 0,05 g é igual a (0,05 / 62,84 = 7,96 x 10 -4 mol) 7,96 x 10 -4 mol. Para fazer uma solução 5 M de suplemento (7,96 x 10 -4 / 5) 159 ul de NaOH 1 M. </li><li> Medir o volume total da reacção de tomar o volume de resina em consideração. Adicionar 10 ul de 5 M NaCNBH3 por ml de reacção. <ol><li> Por exemplo: para um volume de reacção 4 ml de adicionar 40 ul de 5 M de NaCNBH3. Para 1 mL de resina e 3 ml de proteína adicionado, o volume total é de 4 ml. </li></ol></li><li> Tampe a coluna e misturar sobre a extremidade final. Fixar a coluna num rotor tubo e deixar a reacção prosseguir durante a noite a 4 ° C. </li><li> Na parte da manhã, trazer a coluna para a capa química e retire cuidadosamente a tampa como um pouco de gás pode ter se formado. Drenar a coluna para um tubo limpo e guardar o eluato para medir a proteína concentração usando a absorvância a 280 nm, método 12 ou o ensaio de ácido bicinconínico e compará-la com a concentração de proteínas a partir de passo 2.6. </li><li> Lavou-se a resina com 4 ml de tampão de acoplamento e deixar a coluna de drenagem. </li></ol> 3. Bloqueio restante Sites <ol><li> Lavou-se a resina com 4 ml de tampão de têmpera. Escorra e coloque a tampa inferior. Adicionar 2 ml de tampão de têmpera e suspender a resina. </li><li> Avaliar o volume total da reacção por medição do volume de resina e do volume de tampão de têmpera, em seguida, adicionar 10 ul de 5 M de NaCNBH3 por ml de volume de reacção. </li><li> Misturar suavemente à temperatura ambiente durante 30 min-extremidade sobre extremidade. Depois de 30 minutos, trazer a coluna no exaustor de fumos. Remova cuidadosamente a parte superior e, em seguida, retire a tampa do fundo e deixar o dreno coluna em um tubo de resíduos. </li><li> Lavar a coluna com 5 volumes de resina de solução de lavagem. Monitorizar as lavagens para a presença de proteínas residuais medindo abso do eluatorbance a 280 nm. Proteínas desacoplados são lavados para fora pela concentração elevada de sal. </li><li> Lavou-se a resina com 6 ml de PBS desgaseificado pH 7,4 contendo azida de sódio a 0,02%. Manter a coluna a 4 ° C até ser necessário. </li></ol> 4. Purificação de anticorpos específicos Nurr1 <ol><li> Lavar a coluna acoplada Nur77 LBD com 10 ml de PBS pH 7,4 e deixa a coluna de drenagem. Tapar o fundo da coluna e colocar a coluna acoplada Nur77 LBD drenada em 15 ml de um novo tubo de recolha. </li><li> Adicionam-se 5 ml de proteína A anticorpos anti-Nurr1 purificados, tampão da coluna e lugar num agitador rotativo a 4 ° C durante 1 h. Remova as tampas superior e inferior e recolher o fluxo através. Separe em gelo até estar pronto para adicionar à coluna acoplada NOR1 LBD. </li><li> Lavar a coluna acoplada NOR1 LBD com 10 ml de PBS pH 7,4 e deixa a coluna de drenagem. Tapar o fundo da coluna e colocar o NOR1 LBD coluna acoplada em um tubo de recolha de 15 ml. </li><li> Adicionar o fluxo através do golpe Nur77 LBDlevou coluna, tampão da coluna e lugar num agitador rotativo a 4 ° C durante 1 hora. Remova as tampas superior e inferior e recolher o fluxo através. </li><li> Medir a concentração de anticorpos através da medição da absorvância a 280 nm. </li></ol> Análise baseada em ELISA de 5. purificada Anticorpo Anti-Nurr1 <ol><li> Adicionar 100 ul de proteína (2,5 ug / ml) aos poços de uma placa de 96 poços. Se testar três diferentes proteínas, adicione 100 ml de proteína de 1 a poços A1 a H4, 100 l de proteína 2, a Wells A5 para H8 e 100 l de proteína 3 a poços A9 para H12. Cobrir a placa e incubar durante a noite a 4 ° C. </li><li> Lavar os poços revestidos duas vezes com 300 ul por poço de PBS, pH 7,4 e adicionar 300 ul de tampão de bloqueio de ELISA para os antigénios inteiros poços revestidos e incubar 2 horas à temperatura ambiente. </li><li> Enquanto o prato está a bloquear preparar uma diluição de partida desejado purificado do anticorpo anti-Nurr1 (variando de 10 a 100 ug / ml) em tampão de bloqueamento de ELISA. </li><li> Após 2 horas de bloqueio, substitua o buffer do bloco de ELISA com 100 ul de tampão de bloqueio fresco ELISA para todos os poços. </li><li> Adiciona-se 100 ul de anticorpo purificado anti-Nurr1 diluída a todos os poços em linha em série A. diluir os anticorpos por transferência de 100 ul de solução da linha A para a linha B em poços seguidos por transferência de 100 ul de solução de linha B para a linha C continuando até a linha G. Depois de misturar as soluções em poços na fileira G descartar as extra de 100 mL. Wells em linha H só recebem os primeiros 100 ml de tampão de bloqueio. Incubar à temperatura ambiente durante 1 h. </li><li> Lava-se a placa três (3) vezes com 300 ul por cavidade de 0,05% de Tween 20 em PBS pH 7,4 e seque a placa para remover o excesso de tampão de lavagem. </li><li> Adicionar 100 ul de peroxidase de rábano (HRP) conjugado de cabra anti-IgG de coelho diluído em tampão de bloqueio de ELISA (1: 8000 de diluição, a gama típica é de 1: 5000 a 1: 25.000). Incubar à temperatura ambiente durante 1 h. </li><li> Lavar as th placaree (3) vezes, como descrito em 5.6. Lave todos os poços, preenchendo-os com 300 mL de água deionizada. Remova o excesso de água invertendo a placa sobre papel absorvente. </li><li> Adicionar 100 ul de 3, 3 &#39;, 5, 5&#39; tetrametilbenzidina (aquecida até à temperatura ambiente) a todos os poços e incubar 15 a 30 min no escuro à temperatura ambiente. </li><li> Parar a reacção por adição de 50 ul de 2 NH 2 SO 4. </li><li> Ler a absorvância a 450 nm subtraindo fundo a 650 nm. </li></ol>

<ol><li>Hawk, J. D., Abel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+NR4A+transcription+factors+in+memory+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res.+Bull%22%5BJournal%5D)">The role of NR4A transcription factors in memory formation.</a> Brain Res. Bull. 85 (1-2), 21-29 (2011).</li>
<li>Law, S. W., Conneely, O. M., DeMayo, F. J., O'Malley, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+new+brain-specific+transcription+factor%2C+NURR1%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Identification of a new brain-specific transcription factor, NURR1.</a> Mol. Endocrinol. 6 (12), 2129-2135 (1992).</li>
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<li>Decressac, M., Volakakis, N., Björklund, A., Perlmann, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NURR1+in+Parkinson+disease--from+pathogenesis+to+therapeutic+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurol%22%5BJournal%5D)">NURR1 in Parkinson disease--from pathogenesis to therapeutic potential.</a> Nat Rev Neurol. 9 (11), 629-636 (2013).</li>
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<li>Vecsey, C. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histone+deacetylase+inhibitors+enhance+memory+and+synaptic+plasticity+via+CREB%3ACBP-dependent+transcriptional+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Histone deacetylase inhibitors enhance memory and synaptic plasticity via CREB:CBP-dependent transcriptional activation.</a> J. Neurosci. 27 (23), 6128-6140 (2007).</li>
<li>Colón-Cesario, W. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Knockdown+of+Nurr1+in+the+rat+hippocampus%3A+implications+to+spatial+discrimination+learning+and+memory%5BTitle%5D)+AND+%22Learn+Mem%22%5BJournal%5D)">Knockdown of Nurr1 in the rat hippocampus: implications to spatial discrimination learning and memory.</a> Learn Mem. 13 (6), 734-744 (2006).</li>
<li>McQuown, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HDAC3+is+a+critical+negative+regulator+of+long-term+memory+formation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">HDAC3 is a critical negative regulator of long-term memory formation.</a> J. Neurosci. 31 (2), 764-774 (2011).</li>
<li>Hawk, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NR4A+nuclear+receptors+support+memory+enhancement+by+histone+deacetylase+inhibitors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">NR4A nuclear receptors support memory enhancement by histone deacetylase inhibitors.</a> J. Clin. Invest. 122 (10), 3593-3602 (2012).</li>
<li>Bridi, M. S., Abel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+NR4A+orphan+nuclear+receptors+mediate+transcription-dependent+hippocampal+synaptic+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Learn+Mem%22%5BJournal%5D)">The NR4A orphan nuclear receptors mediate transcription-dependent hippocampal synaptic plasticity.</a> Neurobiol Learn Mem. 105, 151-158 (2013).</li>
<li>Gill, S. C., von Hippel, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calculation+of+protein+extinction+coefficients+from+amino+acid+sequence+data%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Calculation of protein extinction coefficients from amino acid sequence data.</a> Anal. Biochem. 182 (2), 319-326 (1989).</li>
<li>Smith, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+protein+using+bicinchoninic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Measurement of protein using bicinchoninic acid.</a> Anal. Biochem. 150 (1), 76-85 (1985).</li>
<li>Zetterström, R. H., Williams, R., Perlmann, T., Olson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+expression+of+the+immediate+early+transcription+factors+Nurr1+and+NGFI-B+suggests+a+gene+regulatory+role+in+several+brain+regions+including+the+nigrostriatal+dopamine+system%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res.+Mol.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular expression of the immediate early transcription factors Nurr1 and NGFI-B suggests a gene regulatory role in several brain regions including the nigrostriatal dopamine system.</a> Brain Res. Mol. Brain Res. 41 (1-2), 111-120 (1996).</li>
<li>Xiao, Q., Castillo, S. O., Nikodem, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+of+messenger+RNAs+for+the+orphan+nuclear+receptors+Nurr1+and+Nur77+%28NGFI-B%29+in+adult+rat+brain+using+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Distribution of messenger RNAs for the orphan nuclear receptors Nurr1 and Nur77 (NGFI-B) in adult rat brain using in situ hybridization.</a> Neuroscience. 75 (1), 221-230 (1996).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

O sucesso deste protocolo baseia-se na disponibilidade de proteínas puras para a caracterização dos anticorpos criados contra um membro específico da família de proteínas de interesse. Não há necessidade de purificar os anticorpos utilizando proteína A / G até que seja claramente estabelecido que existem significativas reacções cruzadas por ELISA e Western blot. Conforme indicado no texto, é importante para evitar a suspensão de proteína (s) a ser reticulado à coluna num tampão contendo amin...

O factor de transcrição e os seus homólogos de Nurr1 (Nur77 e NOR1) pertencem à subfamília de receptores nucleares 4A (NR4A) 1. Eles também são receptores órfãos porque seus ligantes endógenos ainda não foram identificados. Nurr1 foi primeiro clonado em 1992 e, embora conhecido por ser expresso no cérebro 2, o seu papel essencial para o desenvolvimento e manutenção de neurónios dopaminérgicos do mesencéfalo foi revelado por estudos de ratinho knockout 3. Além disso, o seu importante papel para a manutenção dos neurônios de dopamina do mesencéfalo foi recentemente demonstrado por um estudo nocaute condicional 4. Devido a estes estudos elegantes mostrando papéis críticos do Nurr1 para os neurônios de dopamina do mesencéfalo, muitos estudos subsequentes em grande parte focado no neurônios de dopamina e de doenças neurodegenerativas relacionadas com a dopamina do mesencéfalo, doença de Parkinson (DP) 5. Notavelmente, Nurr1 se expressa não apenas nos neurônios de dopamina do mesencéfalo (MDA), mas também em diáreas cerebrais verso 2, sugerindo que ele pode ter papéis funcionais em muitas áreas não-Da, que é fortemente apoiada por estudos mais recentes que mostram que Nurr1 desempenha papéis importantes em várias funções cerebrais. Por exemplo, demonstrou-se que as actividades de memória induzir tal como a aprendizagem, ou outras tarefas hipocampo-dependentes resultar em aumento da regulação da expressão no hipocampo Nurr1 6,7. Além disso, derrubar Nurr1 de expressão no hipocampo foi suficiente para prejudicar a memória a longo prazo e / ou a plasticidade sináptica 8-11, sugerindo fortemente que Nurr1 desempenha diversos papéis em muitas áreas do cérebro. Assim, para melhor compreender a expressão específica do tipo celular e subcelular de Nurr1, é desejável a utilização de anticorpos específicos de Nurr1, que não apresentam qualquer reactividade cruzada com os seus homólogos Nur77 ou NOR1. Este documento descreve um protocolo de pré-adsorção para gerar anticorpos específicos de Nurr1 e apresentar dados adicionais mostrando a sua especificidade.

<table><tbody><tr><td>Domínio de ligação de ligante purificado de Nurr1, Nor 1 e Nur77</td><td></td><td></td><td>Solução de armazenamento de coluna</td></tr><tr><td>Resina e kit de acoplamento AminoLink</td><td>Thermo Scientific</td><td>44890</td><td></td></tr><tr><td>Coluna de rotação da proteína A</td><td>Thermo Scientific</td><td>89978</td><td></td></tr><tr><td>Solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco</td><td>Corning</td><td>21-031-CV</td><td></td></tr><tr><td>96 poços Placas de fundo de ardósia, flange alta, 330 &mu; l</td><td>Thermo Scientific</td><td>3455</td><td></td></tr><tr><td>10% Soro de Cabra Normal</td><td>KPL</td><td>50-675-69</td><td></td></tr><tr><td>Diluente/ Concentrado de Bloqueio&nbsp;</td><td>KPL</td><td>50-82-01</td><td></td></tr><tr><td>Tampão de eluição</td><td>IgG Thermo Scientific</td><td>21004</td><td></td></tr><tr><td>Kit de ensaio de proteína micro BCA</td><td>Thermo Scientific</td><td>23235</td><td></td></tr><tr><td>Cabra conjugada com Peroxidase de rabanete de cavalo anti-coelho IgG (H+L)</td><td>Thermo Scientific</td><td>31460</td><td></td></tr><tr><td>Resina Ni-NTA</td><td>Thermo Scientific</td><td>88221</td><td></td></tr><tr><td>3, 3', 5, 5' Tetrametilbenzidina</td><td>Thermo Scientific</td><td>34028</td><td></td></tr><tr><td>2N H2SO4</td><td>Macron Fine Chemicals</td><td>H381-05</td><td></td></tr><tr><td>Proteína A Tampão de ligação IgG</td><td>Thermo Scientific</td><td>21001</td><td></td></tr><tr><td>Tampão de eluição IgG</td><td>Thermo Scientific</td><td>21004</td><td></td></tr><tr><td>Solução</td><td></td><td></td> de armazenamento de coluna <td>tamponada com fosfato Solução salina contendo 0,02% de azida sódica</td></tr><tr><td>Tubo de diálise pré-tratado Spectra/Por 7 Spectrum</td><td>Labs</td><td>132128</td><td></td></tr><tr><td>10 ml Colunas descartáveis</td><td>Thermo Scientific</td><td>29924</td><td></td></tr><tr><td>Tampão</td><td></td><td></td> de acoplamento AminoLink <td>0,1M fosfato de sódio, 0,05% NaN3, pH 7,0</td></tr><tr><td>Tampão</td><td></td><td></td> de têmpera <td>1M Tris. HCI, 0,05% NaN3, pH 7,4</td></tr><tr><td>Solução</td><td></td><td></td> de Lavagem <td>1M NaCl, 0,05% NaN3</td></tr><tr><td>ELISA Tampão de bloqueio</td><td>1% Soro de cavalo normal (NHS), 1% Soro de cabra normal (NGS) em diluente de leite 1X KPL</td>Solução de armazenamento PBS pH 7,4 contendo 0,02% de azida de sódio Micropipetas: 10 &mu;<td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> l; 20 &mu; l; 200 &mu; l; 1000 &mu; l</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

produção de nurr-1 policlonal específico anticorpos livre de reactividade cruzada contra o seu próximo homólogos, nor1 e nur77

Production of Nurr-1 Specific Polyclonal Antibodies Free of Cross-reactivity Against Its Close Homologs, Nor1 and Nur77

A subfamília de receptores nucleares 4 (NR4A) é composta por 3 proteínas relacionadas que compartilham um domínio de ligação ao DNA (DBD) e um domínio de ligação ao ligante (LBD). A proteína 1 relacionada ao receptor nuclear (Nurr1 ou NR4A2) desempenha um papel fundamental na manutenção do sistema dopaminérgico. As disfunções da dopamina associadas ao gene Nurr1 incluem doença de Parkinson, esquizofrenia e depressão maníaca, entre outras. Além disso, evidências recentes indicam que o Nurr1 também é expresso em outras áreas do cérebro, como o hipocampo, e desempenha papéis críticos para o aprendizado e a memória. Os outros membros da família são o fator de crescimento nervoso IB (Nur77 ou NR4A1) e o receptor órfão derivado de neurônios 1 (NOR1 ou NR4A3). Para ajudar a investigar os papéis funcionais precisos de Nurr1 em disfunções neuronais dopaminérgicas e outras relacionadas à região cerebral, foram necessários anticorpos desprovidos de reatividades cruzadas contra Nur77 e NOR1. Uma vez que as proteínas são mais divergentes em seus LBDs do que em seus domínios de ligação ao DNA, a imunização com LBDs purificados deve produzir anticorpos específicos para Nurr1 com reatividades mínimas contra Nur77 e/ou NOR1. Embora os anticorpos anti-Nurr1 tenham sido gerados com sucesso, eles mostraram imunorreatividade significativa contra os outros membros da família. A cromatografia de afinidade sobre a proteína A imobilizada, seguida de pré-adsorção contra LBDs Nur77 e NOR1 imobilizados, produziu anticorpos específicos para Nurr1 livres de reatividade cruzada. Aqui, direcionamos seletivamente anticorpos contra um membro específico de uma família de proteínas altamente conservada, imunizando animais com suas regiões mais divergentes, seguido pela remoção de anticorpos de reação cruzada por pré-adsorção. O objetivo do protocolo é aumentar a especificidade dos anticorpos policlonais por meio da pré-adsorção contra antígenos de reação cruzada.

Uma comparação da coluna de proteína A purificada anticorpos específicos para a proteína A Nurr1 com anticorpos anti-Nurr1 purificados seguido por passagem através de colunas Nur77 LBD e NOR1 LBD é mostrado na Figura 1. Tal como pode ser visto, Proteína-A purificada Nurr1 anticorpo exibiram uma forte ligação para Nurr1 LBD. No entanto, também mostraram ligação significativa a Nur77 LBD e NOR1 LBD. Quando os anticorpos Nurr1-A proteína purificada foram ainda purificados contra Nur77 LBD e NOR1 LBD, a afi...

Aqui, direcionamos seletivamente anticorpos contra um membro específico de uma família de proteínas altamente conservadas, imunizando animais com suas regiões mais divergentes, seguido pela remoção de anticorpos de reação cruzada por pré-adsorção.

Produção de Nurr-1 policlonal específico Anticorpos Livre de reactividade cruzada contra o seu próximo homólogos, NOR1 e Nur77

The nuclear receptor subfamily 4 (NR4A) is composed of 3 related proteins sharing a DNA binding domain (DBD) and a ligand-binding domain (LBD). The ...

O objetivo geral deste procedimento é aumentar a especificidade de anticorpos contra proteínas estreitamente relacionadas, removendo anticorpos com reatividade cruzada. Isso é realizado primeiramente identificando os domínios proteicos com maior divergência entre proteínas homólogas. O segundo passo é expressar e purificar esses domínios proteicos.Em seguida, esses domínios proteicos são acoplados via terminal N ou C a uma matriz de cromatografia. Nesta demonstração, utiliza-se o Spheros. O passo final consiste em incubarem-se o soro imune com resinas acopladas a cada domínio cruzadamente reativo.Por fim, ELISA e o Western blot são realizados para avaliar a eficácia do procedimento. A principal vantagem desta técnica em relação aos métodos existentes, como o uso de anticorpos monoclonais ou purificação por afinidade, é que podemos manter a afinidade contra o alvo desejado eliminando ao mesmo tempo os epítopos conhecidos por apresentarem reatividade cruzada. Geralmente, indivíduos novos nesta metodologia enfrentam dificuldades porque a proteína que estão tentando estudar é instável.O Dr. Uri Kim, pesquisador pós-doutorando do nosso laboratório, demonstrará este procedimento. Este estudo requer duas colunas, uma para o receptor órfão derivado de neurônio, ou nor um, e outra para o fator de crescimento de células NER IB ou nor 77. Como o mesmo protocolo se aplica a ambas as proteínas, apenas a preparação de uma coluna será demonstrada.Deixe a proteína a ser ligada à resina descongelar no gelo e, em seguida, determine a concentração proteica utilizando seu coeficiente de extinção molar e sua absorbância a 280 nanômetros. Utilize dois mililitros de resina para dois miligramas de proteína. Todas as etapas a seguir são para dois mililitros de resina.Em uma coluna de 10 mililitros, prepare uma coluna de 10 mililitros empurrando um FR até o fundo e passando PBS pH 7,4 através dela. Tampe a extremidade inferior da coluna e adicione dois mililitros de tampão de acoplamento. Adicione quatro mililitros da suspensão à coluna para obter dois mililitros de resina.Remova a tampa inferior e deixe a coluna escorrer. Lave a coluna com um total de seis mililitros ou três volumes da cama de resina do tampão de acoplamento e permita que a coluna escorra. Após o escoamento do tampão de acoplamento, substitua a tampa inferior.Em seguida, adicione dois a quatro mililitros de proteína suspensa em tampão de acoplamento à coluna. Reserve uma alíquota da solução de proteína para avaliar a eficiência de acoplamento. Posteriormente, tampe a coluna e misture com inversão completa.Para obter uma solução homogênea, meça o volume total das reações, levando em consideração o volume da resina, e adicione 10 microlitros de borohidreto de sódio 5 molar por mililitro de reação. Tampe a coluna e misture de ponta a ponta. Fixe a coluna em um rotador de tubos e deixe a reação prosseguir durante a noite.Aos quatro graus Celsius na manhã seguinte, leve a coluna até a capela química e remova cuidadosamente a tampa, pois algum gás pode ter se formado. Drene a coluna para um tubo limpo e guarde o ilu. A concentração proteica do IIT será medida e comparada com a concentração proteica inicial.Para avaliar a eficiência de acoplamento, lave a resina com quatro mililitros de tampão de acoplamento e deixe a coluna escorrer. Uma vez que o domínio de ligação ao ligante ou LBD tenha sido acoplado à resina, o próximo passo é bloquear os sítios remanescentes. Para iniciar este procedimento, lave a resina com quatro mililitros de tampão de quenching, drene e substitua a tampa inferior.Adicione dois mililitros de tampão de quenching e suspenda a resina. Avalie o volume total da reação medindo o volume da resina e o volume do tampão de quenching. Adicione 10 microlitros de borohidreto de sódio cianeto a cinco molar por mililitro de volume de reação.Agite suavemente à temperatura ambiente por 30 minutos. Após 30 minutos, leve a coluna para a cabine de segurança. Remova cuidadosamente a tampa superior e, em seguida, retire a tampa inferior e deixe a coluna escorrer para um tubo de resíduos.Lave a coluna com cinco volumes da resina da solução de lavagem. Monitore as etapas de lavagem quanto à presença de proteínas residuais medindo a absorbância a 280 nanômetros. As proteínas não conjugadas são removidas pela alta concentração de sal. Por fim, lave a resina com seis mililitros de PBS DGAs contendo 0,02% de azida de sódio e mantenha a coluna a quatro graus Celsius até o uso.Inicie o procedimento para purificar anticorpos específicos contra neuro um lavando a coluna acoplada com NORE 77 LBD com 10 mililitros de PBS e deixando a coluna drenar; tampe a parte inferior da coluna e coloque a coluna acoplada com neuro 77 LBD drenada em um novo tubo de coleta de 15 mililitros. Adicione cinco mililitros da proteína, anticorpos anti-neuro um purificados, à coluna e tampe-a. Coloque a coluna em um rotador a quatro graus Celsius por uma hora.Em seguida, remova as tampas superior e inferior e colete o fluxo que passa. Reserve o fluxo que passa em gelo até o momento de adicioná-lo ao nor. Uma coluna acoplada LBD.Lave a coluna acoplada ao LBD com 10 mililitros de PBS e deixe a coluna escorrer, tampe a parte inferior da coluna e coloque a coluna acoplada ao LBD em um tubo de coleta de 15 mililitros. Adicione o fluxo passante da coluna acoplada ao LBD norte 77. Tampe a coluna e coloque em um rotor a quatro graus Celsius por uma hora.Após uma hora, remova as tampas superior e inferior e colete o fluxo que passou. Meça a concentração do anticorpo determinando a absorbância a 280 nanômetros.O anticorpo anti-nore um purificado é posteriormente analisado por ELISA. Adicione 100 microlitros de proteína aos poços de uma placa de 96 poços. Caso esteja testando três proteínas diferentes, adicione 100 microlitros da proteína um aos poços de A1 a H4, 100 microlitros da proteína dois aos poços de A5 a H8, e 100 microlitros da proteína três aos poços de A9 a H12.Cubra a placa e incube durante a noite a quatro graus Celsius até a manhã seguinte. Lave as poças revestidas duas vezes com 300 microlitros por poça de PBS. Em seguida, adicione 300 microlitros de tampão bloqueador Eliza a todas as poças revestidas com antígeno e incube à temperatura ambiente por duas horas.Após duas horas de bloqueio, substitua o tampão de bloqueio de ELIZA em cada poço por 100 microlitros de tampão de bloqueio de Eliza fresco. Adicione 100 microlitros do anticorpo anti-EU um purificado e diluído a todos os poços da linha A e incube à temperatura ambiente por uma hora após uma hora.Lave a placa três vezes com tween 20 0,05%. Após a terceira lavagem, tampone a placa para remover o excesso de tampão de lavagem. Adicione 100 microlitros de peroxidase do rabo-de-cavalo conjugada com anticorpo de cabra anti-rábica IgG, diluída em tampão bloqueador Eliza, a cada poço e incube à temperatura ambiente por uma hora. Após uma hora, lave a placa três vezes com tween 20 0,05%, conforme indicado anteriormente, após a terceira lavagem.Lave todos os poços preenchendo-os com 300 microlitros de água desionizada, remova o excesso de água invertendo a placa sobre papel absorvente. Adicione 100 microlitros de três três linha, cinco, cinco linha tetraetil benadina, aqueça até a temperatura ambiente em todos os poços e incube por 15 a 30 minutos no escuro à temperatura ambiente. Interrompa a reação adicionando 50 microlitros de ácido sulfúrico 2 N a cada poço.Por fim, leia a absorbância em 450 nanômetros. Subtraindo o fundo em 650 nanômetros, faça uma comparação da proteína. Um anticorpo purificado sem especificidade para uma proteína.Um anticorpo anti-Noro um purificado, seguido por passagem através das colunas LBD de número 77 e LBD de número um, mostra que, embora o anticorpo anti-número um purificado por proteína A tenha exibido ligação forte ao LBD de número um, também demonstrou ligação significativa ao LBD de número 77 e ao LBD de número um. A purificação adicional do anti-número um contra LBD de número 77 e LBD de número um removeu completamente essa reatividade cruzada. Essa especificidade foi ainda demonstrada por análise de Western blot de extratos de células transfectadas com vetores de expressão carregando as proteínas completas marcadas com Mick, nor um, nor um e nor 77. Anticorpos anti-Mick revelaram que cada proteína completa foi expressa em seu peso molecular esperado. O anticorpo anti-nor um purificado por proteína A detectou robustamente a proteína completa nor um, mas também detectou nor um e nor 77, embora com menor eficiência.Em contraste, o anticorpo totalmente purificado contra nor um não exibiu qualquer reatividade cruzada detectável com nor um e nor 77. A análise imuno-histoquímica de neurônios dopaminérgicos do mesencéfalo com o anticorpo totalmente purificado contra nor um confirmou a expressão acentuada de nor um. A imuno-histoquímica utilizando tirosina hidroxilase revelou ainda que neuro um também é expresso exclusivamente no núcleo de neurônios dopaminérgicos do mesencéfalo na área da substância negra. Uma vez dominada, esta técnica pode ser realizada em dois dias, se for executada corretamente. Não se esqueça de que trabalhar com hidreto de sódio pode ser extremamente perigoso, e precauções, como trabalhar em uma capela química, devem ser sempre tomadas ao realizar este procedimento.

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Biologia

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