September 18th, 2015
O uso de vários ângulos para cortar o cérebro do rato filhote, podemos melhorar em cima de uma fatia cerebral aguda anteriormente descrito que captura as conexões entre a maioria dos principais mesencéfalo e prosencéfalo estruturas auditivas.
O objetivo geral deste procedimento é preparar o corte cortical de Calot Thal com quatro estruturas auditivas principais, o colo inferior, o tálamo auditivo, a porção auditiva do núcleo reticular talâmico e o córtex auditivo. Isso é feito removendo primeiro o cérebro do mouse. O segundo passo é bloquear o cérebro em preparação para o corte.
Em seguida, corte o cérebro para obter fatias contendo a conexão cortical Calot thal. A etapa final é usar imagens de flavoproteínas para avaliar a conectividade. Em última análise, a fatia do cérebro contendo a conexão cortical carotal pode ser usada para uma variedade de experimentos para entender melhor o processamento de informações nas regiões auditivas do cérebro médio e quatro A demonstração visual desse método é crítica, pois as etapas para bloquear o cérebro antes do corte são difíceis de aprender porque requer um corte complexo de ângulo duplo, que é a chave para obter projeções intactas.
Demonstrando a técnica estará BJ Slater, um estudante de pós-graduação em meu laboratório, Para preparar o estágio de corte para fatiar, corte um pequeno pedaço de 3% de aproximadamente um centímetro cúbico para ser usado como um batente para o cérebro, e outro pedaço de 1,5 centímetro por 1,5 milímetro por três milímetros para ser usado como uma protuberância para apoiar o colículo inferior. Em seguida, cole o recuo no palco com adesivo de cianoacrilato e, em seguida, cole a saliência no lado direito do recuo de modo que forme um ângulo de 80 graus em um slide marcado com duas linhas a 90 graus e uma linha diagonal a 17 graus do canto superior esquerdo para o canto inferior direito, coloque o lado dorsal do cérebro para cima no ponto de interseção das duas linhas. Usando uma lâmina de barbear, remova de dois a quatro milímetros da extremidade rostral do cérebro para criar uma superfície plana.
Em seguida, coloque o cérebro com o lado do mimo para cima na superfície plana recém-criada. Alinhe a superfície dorsal do cérebro com uma linha horizontal e a linha média do cérebro com uma linha vertical marcada no slide. Em seguida, alinhe a lâmina de barbear com uma linha de 17 graus.
Incline a navalha em um ângulo de 30 graus e remova aproximadamente três milímetros do córtex direito em um corte diagonal duplo para montar o cérebro no estágio de vibrato. Coloque um pequeno pedaço de papel de filtro no lado ventral do cérebro de modo que a dimensão longa fique perpendicular à linha média. Aplique cuidadosamente uma pequena quantidade de adesivo de cianoacrilato na área em frente ao batente traseiro e à esquerda da saliência.
Em seguida, coloque o lado do cérebro cortado diagonalmente na cola de modo que a parte do cérebro e o cérebro posterior fiquem apoiados na protuberância e o lado direito do cérebro fique contra o recuo. Neste procedimento, coloque rapidamente o estágio de corte no vibrato, construa um estágio com solução de corte. Em seguida, alinhe a lâmina com a parte superior do cérebro.
Remova de um a 1,5 milímetros da parte superior do cérebro. Em seguida, corte e remova mais fatias de 300 a 500 micrômetros enquanto se aprofunda. Quando o colículo inferior, o corpo medial e o núcleo lateral da ICT são visíveis, o giro dentado deve aparecer em forma de C e a estrutura deve estar alinhada.
Obtenha cerca de duas fatias de 600 micrômetros. Estas são as fatias corticais carotais. Depois disso, transfira-os para a câmara de retenção de 32 graus Celsius.
Para adquirir a imagem de autofluorescência de flavoproteínas, colete as imagens a quatro hertz por 105 segundos. Ilumine o tecido com luz azul de 470 a 490 nanômetros e capture acima de 515 nanômetros, garantindo que a imagem não fique muito escura nem estourada. Em seguida, use a estimulação elétrica para ativar o tecido para adquirir uma imagem de cálcio.
Colete imagens a 10 hertz por 25 segundos. Ilumine o tecido com luz de 365 nanômetros e capture a fluorescência acima de 510 nanômetros. Novamente, garantindo que a imagem não esteja muito escura nem estourada.
Em seguida, use estimulação elétrica para ativar as células. Esta imagem mostra a confirmação da conexão cortical carotal na fatia do cérebro por autofluorescência de flavoproteínas. A estimulação elétrica dada a 0,05 hertz para o cólus inferior foi fotografada em quatro hertz e quatro a processada para mostrar a potência nessa estimulação.
Frequência, o tálamo auditivo, o tálamo, reticular, núcleo e córtex auditivo são ativados sinapticamente. Aqui está uma fatia desconectada. A estimulação elétrica do cólico inferior com ativação foi observada apenas no tálamo auditivo.
Todo o caminho não foi capturado, provavelmente devido a um dos cortes estar ligeiramente fora do plano. Com projeções corticais de Alam. Esta imagem mostra a ativação atípica do córtex auditivo.
A estimulação elétrica do cólon inferior ativou o córtex auditivo sem sinal visível. No tálamo auditivo, é provável que o tálamo ainda estivesse ativado, mas não na superfície da imagem. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como obter a fatia cortical talâmica AAL e avaliar sua conectividade.
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Este artigo apresenta um método para preparar a fatia cortical de Calot Thal, focando em estruturas auditivas principais no cérebro do rato. A técnica melhora a compreensão da conectividade em regiões auditivas.
Preserving colliculo-thalamocortical connectivity in mouse brain slices enables rigorous interrogation of auditory information processing across multiple brain regions. This approach supports predictive confidence in mechanistic studies by maintaining both ascending and descending pathways, critical for target validation and pathway de-risking in early discovery. The integration of 3-D printed chamber components and multi-scale optical imaging enhances reproducibility and cross-study comparability, strengthening portfolio decision-making.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling multi-scale analysis of auditory circuits from single-slice preparations. It supports workflows from hypothesis testing to lead identification and mechanistic validation.