Name: Isolamento de Murino vasculares coronários células musculares lisas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 24 s
Description: Aprenda a isolar células musculares lisas vasculares coronárias de camundongo para estudos cardiovasculares. Este método fornece uma população pura de células primárias para ensaios de cultura in vitro.

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Este trabalho foi financiado pelos Institutos Nacionais de Saúde (R01HL056046 para PAL e K99HL116769 para AJT) e do Instituto de Pesquisa do Hospital Infantil Nationwide (para PAL e AJT).

Declaração de Ética: Este estudo foi realizado de acordo com os Institutos Nacionais de Diretrizes de Saúde, e foi aprovada pelo Animal Care Instituição e do Comitê Use no Hospital Infantil Nationwide. 1. Preparação / Configuração Nota: Esta técnica de isolamento requer duas bobinas de aquecimento de Langendorff posicionados lado-a-lado sobre um suporte anelar, e ligado em paralelo a um banho de água circulante. <ol><li> Ligue banho de água circulante e ajustar a temperatura para alcançar uma temperatura final de 33-34 ° C na ponta da cânula de Langendorff (o banho de água utilizado nesta configuração é definido como 40 ° C devido a uma perda de 6-7 ° C em temperatura entre os tubos). Ligar as bombas de perfusão e definir a taxa de perfusão a 0,5 ml / min. <ol><li> Limpar ambas as bobinas de aquecimento com camisa de água, ligado tubagem 25 e de uma cânula de calibre, através de lavagem, cada um com 50 ml de etanol a 70%, seguido de 100 ml de água ultrapura esterilizada. </li><li> Limpar as bobinas de aquecimentoempurrando o ar com uma seringa e lava-se com 10 ml de Solução Salina Equilibrada de Hank (HBSS) sem vermelho de fenol. Deixar HBSS nas serpentinas de aquecimento e os tubos. </li><li> Anexar uma seringa de 10 ml estéril luer preenchido com temperatura ambiente de HBSS sem vermelho de fenol para o tubo. Certifique-se que não há bolhas de ar presas no interior dos tubos e aquecimento bobinas ao anexar a seringa HBSS-cheia, pois pode provocar embolias de ar durante a digestão para impactar negativamente o isolamento VSMC. </li></ol></li><li> Remover a cânula de calibre 25 a partir das bobinas de aquecimento e em outro lugar estéril seringa de 10 ml cheia com HBSS arrefecido em gelo, sem vermelho de fenol. Tenha isso em gelo até estar pronto para usar. Repita para o outro cânula. </li><li> Preparar solução de digestão enzimática. <ol><li> Pesar colagenase tipo 2 de acordo com o número do lote específico de 75 ml de solução de digestão para atingir uma concentração final de 300 Unidades / ml. </li><li> Dissolve-se a colagenase em 75 ml de HBSS com vermelho de fenol. Em seguida, adicione 1,5 ml de 00,1 mg / mL de inibidor de tripsina de soja e 75 ul de 1 M de CaCl2 para a mistura. </li></ol></li><li> Se utilizar a solução de digestão imediatamente, aquecê-la a 37 ° C. Se não, coloque-o a 4 ° C durante até 6 h. Esta solução deve ser feita diariamente. </li><li> Prepare a mídia de solução de paragem / chapeamento. <ol><li> Adicionam-se 100 ml de FBS inactivado pelo calor, 5 mL de L-glutamina, 5 ml de aminoácidos não essenciais, 5 ml de tampão HEPES, e 1 ml de primocin a 500 ml de alto teor de glucose (4,5 g / L) de DMEM. esterilização por filtração é recomendada. </li><li> Aliquota 6 ml da solução de paragem em cada um de doze tubos de 15 mL cónico, numerados de A1-A6, B1-B6 e, e colocar a 4 ° C. Alíquota de 50 ml de solução de paragem em uma cónico de 50 ml e em lugar 37 ° C incubadora. Nota: Este passo também pode ser preparado no dia antes do isolamento, se necessário. Esta solução de paragem irão ser utilizados como os meios de revestimento seguintes isolamento de células. </li></ol></li><li> Prepare duas seringas de 1 ml equipada com uma agulha de 30 Gcom 100 ul de heparina (1000 unidades / ml). </li><li> Corte um pedaço de 5 cm de 5-0 seda cirúrgico. Dê um nó overhand solto na seda cirúrgico com uma extremidade duas vezes, enquanto a outra. Coloque sobre a cânula de calibre 25, mas não aperte. Repita para o outro 25 G cânula. </li><li> Encher 35 mm quatro placas de Petri estéreis (# 1-4) com 2 ml de solução estéril, arrefecida com gelo, de HBSS sem vermelho de fenol. Manter em gelo. </li></ol> 2. A eutanásia, Isolamento Coração e Canulação <ol><li> Antes de isolamento coração, garantir que a solução de digestão e 50 ml cónico de solução de paragem são quentes. Retire a seringa HBSS-preenchido com anexado 25 G cânula do gelo e coloque em uma bureta grampo (ou braçadeira de suporte de anel) em um suporte de anel. </li><li> Anestesiar ratos usando 3% isoflurano. Confirmar o mouse é anestesiado por um toque do dedo do pé em cada pata traseira. Se as contrações musculares das pernas, o mouse ainda não está anestesiado então espere 1 minuto e repita o toque do dedo do pé. </li><li> Expor a veia jugular através da remoção do pêlo de umND pele na face anterior do pescoço com uma tesoura. Em seguida, utilize uma pinça para remover cuidadosamente qualquer gordura ao redor da veia jugular. Após a remoção de gordura, injectar-se lentamente 100 ul de heparina (1000 unidades / ml). Coloque uma esponja cirúrgica sobre a veia para evitar sangramento excessivo. </li><li> Após 1 min, de peito aberto para expor coração, coração elevador com uma pinça curva e extirpar-lo com uma tesoura, certificando-se de manter a aorta ascendente intacta através do primeiro tronco braquiocefálico. Colocar imediatamente o coração em um prato de 35 mm (# 1) com HBSS arrefecido em gelo, sem vermelho de fenol e enxaguar. Nota: Execute as seguintes 4 etapas usando um escopo de dissecação. </li><li> Posicionar a 25 L de uma cânula que é montado sobre o anel de suporte num ângulo de 45 °, de modo que a ponta está situada logo abaixo da superfície de HBSS arrefecido com gelo no prato # 2 e é claramente visível através do microscópio de dissecção. Transfira o coração para prato # 2. </li><li> Utilizando uma pinça Dumont, expor a aorta, removendo suavemente o excesso de tecido adiposo através de dissecção romba para prevent de perfuração ou ruptura da aorta. Em seguida, utilize uma pinça para deslizar a aorta sobre o G cânula 25. </li><li> Orientar a cânula para baixo através da aorta, perto, mas não além da válvula aórtica, o que irá comprometer a integridade da válvula e, portanto, a perfusão retrógrada. Uma vez que a cânula está no lugar, deslize a seda pré-amarrado sobre a aorta, e aperte. Amarrar um segundo nó para formar um nó quadrado em torno da aorta para proteger o coração. </li><li> Uma vez que a aorta está firmemente amarrado, delicadamente lavar o sangue restante da circulação coronária com o HBSS gelada na seringa anexado ao G cânula 25. Tome cuidado para não apertar demais para evitar a pressão excessiva coronária. Apenas um flush muito lento e suave é necessária para completar o flush. o uso da aorta livre de vazamentos também pode ser observada durante este rubor suave. </li><li> Ligar a bomba de perfusão para iniciar o fluxo de HBSS. Remover a 25 L de uma cânula (com o coração em anexo) a partir da seringa HBSS-cheia, tendo o cuidado demanter o hub cânula preenchido com HBSS, e conecte-o a quente bobinas de aquecimento HBSS-cheia. Comece a perfusão do coração com a bomba de perfusão com um caudal de 0,5 mL / min durante 8 minutos. </li><li> Após o primeiro coração é canulada e está a ser perfundido no sistema, repita os passos de 2,1-2,8 para o segundo coração. Estes isolamentos serão escalonadas, para cada coração, portanto, planejamento e cronograma cuidadoso são necessários. </li></ol> 3. Digestão <ol><li> Após a lavagem com HBSS, alterar a seringa de 10 ml de HBSS actualmente na bomba para uma cheia com 10 ml de solução de digestão de pré-aquecido. Perfundir cada coração com solução de digestão durante 12 min a um caudal de 0,5 mL / min. Não coletar frações decorrentes dessa primeira digestão, pois isso irá conter todo o sangue remanescente e células endoteliais. </li><li> Após 12 min, alterar a taxa de perfusão a 0,4 ml / min, colocar uma cónico de 15 ml (tubo de A1 ou B1, correspondente ao primeiro ou segundo coração para cada digestão) preenchido com solut paragem frioion em um balde de gelo sob o coração, a fim de iniciar a recolha de perfusato enriquecido em VSMC. </li><li> Após 15 min, alterar a recolha cónica para A2 ou B2 e tubo de centrifugação cónico tubo A1 e B1 a 89 xg durante 10 min imediatamente após a recolha de ambas as fracções. Quando a seringa cheia com a solução de digestão na bomba tem menos do que 1 ml de solução, substitua com um recém-cheia seringa de 10 ml da solução de digestão. </li><li> Após centrifugação, Aspirar o sobrenadante de cada tubo de recolha, deixando cerca de 0,5 ml. Ressuspender o sedimento de A1 com 2 mL de solução de paragem quente (ou meios plating). Adicionar a ressuspensão de tubo de A1 para o tubo B1 e tubo lugar no 37 ° C incubadora com a tampa solta. </li><li> Repita os passos 3.3 e 3.4 até que todos os tubos (por meio de A6 e B6) são utilizadas para um tempo total de recolha de 90 min. A 80 min de digestão, cortar abrir o ápice coração para expulsar as células que possam estar presas dentro do ventrículo e recolher essas células em A6 tubo e B6, respectively. Nota: Ocasionalmente, o coração irão cair da cânula antes do ponto de tempo de 90 min. Se isto ocorrer, recuperar o coração e o local em uma estéril 35 milímetros prato de Petri cheio com 2 ml de solução de digestão. Cortar o vértice do coração e lave o coração com solução de digestão. Em seguida, filtra-se os 2 ml de solução de digestão através de um filtro de 100 uM de células estéril para um cónico de 50 ml e adicionar ao tubo A6 ou B6. </li><li> Após cada rodada de tubos subsequentes (A2 e B2), adicione as VSMC ressuspensos às tubo de coleta anterior (combinado A1 e B1). Além disso, tome cuidado para não deixar a solução de digestão na bomba de correr para fora e mudar os 10 ml seringas conforme necessário durante toda a digestão. </li><li> Depois de todos os tubos são combinados, centrifugar a suspensão rica em CMLV a 89 xg durante 10 min. </li><li> Aspirar tanto sobrenadante dos tubos de colheita quanto possível. Ressuspender o sedimento remanescente em 2 ml de meios de comunicação e plaqueamento na placa por um prato de cultura de 35 mm. Lugar cultura prato iN incubadora C 37 ° durante 24 h. </li></ol> Cultura 4. celular Nota: Conclua as etapas restantes no gabinete de biossegurança. <ol><li> Após 24 horas, aspirar cuidadosamente a mídia chapeamento. A cultura terá normalmente uma grande quantidade de detritos. Para lavar as células, adicionar 2 ml de quente, PBS estéril e bata suavemente o prato contra dois dedos durante a rotação no sentido horário. </li><li> Depois de rodar 360 °, aspirar o PBS e repetir uma segunda vez. Aspirar o PBS e adicionar outro 2 ml de estéril, PBS quente. Verifique a placa de cultura sob o microscópio para se certificar de que há pouca ou nenhuma restos no prato. confluência celular também pode ser determinada neste momento. </li><li> Se os restos permanece na placa de cultura, repita o passo 4.2. Se a placa de cultura é livre de detritos, aspirar o PBS e adicionar 2 ml de mídia chapeamento quente. </li><li> Após 24 h, lavar as células novamente com quente, PBS estéril para remover quaisquer detritos final ou células mortas da cultura. Aspirar o PBS e pate mais 2 ml de meio de plaqueamento quente sobre as células. </li><li> Verifique sobre as células a cada dia e alimentar a cada 48 horas com a mídia chapeamento aquecido frescos. Neste ponto, as células podem ser utilizadas para ensaios de cultura de células padrão. As VSMC deve ser de aproximadamente 80% confluentes 4-5 dias após o plaqueamento, embora possa levar até 7 dias, até que o processo é aperfeiçoado. Se a divisão de passagens subsequentes, utilizar uma quantidade máxima de 1: 4 35 mm pratos (ou a uma área comparável de placas de cultura). </li></ol>

<ol><li>Katz, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+arterioles+in+type+2+diabetic+%28db%2Fdb%29+mice+undergo+a+distinct+pattern+of+remodeling+associated+with+decreased+vessel+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Coronary arterioles in type 2 diabetic (db/db) mice undergo a distinct pattern of remodeling associated with decreased vessel stiffness.</a> Basic Res Cardiol. 106 (6), 1123-1134 (2011).</li>
<li>Husarek, K. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+angiotensin+receptor+blocker+losartan+reduces+coronary+arteriole+remodeling+in+type+2+diabetic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Vascul+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">The angiotensin receptor blocker losartan reduces coronary arteriole remodeling in type 2 diabetic mice.</a> Vascul Pharmacol. , (2015).</li>
<li>Teng, B., Ansari, H. R., Oldenburg, P. J., Schnermann, J., Mustafa, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+coronary+endothelial+and+smooth+muscle+cells+from+A1+adenosine+receptor-knockout+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of coronary endothelial and smooth muscle cells from A1 adenosine receptor-knockout mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 290 (4), H1713-H1720 (2006).</li>
<li>Oldenburg, P. J., Wyatt, T. A., Sisson, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+attenuates+contraction+of+primary+cultured+rat+airway+smooth+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Cell+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Ethanol attenuates contraction of primary cultured rat airway smooth muscle cells.</a> Am J Respir Cell Mol Biol. 43 (5), 539-545 (2010).</li>
<li>Xu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+two-phase+Ca2%2B+release+and+apoptosis+controlled+by+TRP-ML1+channel+activity+in+coronary+arterial+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intracellular two-phase Ca2+ release and apoptosis controlled by TRP-ML1 channel activity in coronary arterial myocytes.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 304 (5), C458-C466 (2013).</li>
<li>Skrzypiec-Spring, M., Grotthus, B., Szelag, A., Schulz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolated+heart+perfusion+according+to+Langendorff---still+viable+in+the+new+millennium%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Isolated heart perfusion according to Langendorff---still viable in the new millennium.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 55 (2), 113-126 (2007).</li>
<li>Owens, G. K., Kumar, M. S., Wamhoff, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+regulation+of+vascular+smooth+muscle+cell+differentiation+in+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Molecular regulation of vascular smooth muscle cell differentiation in development and disease.</a> Physiol Rev. 84 (3), 767-801 (2004).</li>
<li>Li, L., Miano, J. M., Cserjesi, P., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SM22+alpha%2C+a+marker+of+adult+smooth+muscle%2C+is+expressed+in+multiple+myogenic+lineages+during+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">SM22 alpha, a marker of adult smooth muscle, is expressed in multiple myogenic lineages during embryogenesis.</a> Circ Res. 78 (2), 188-195 (1996).</li>
<li>Santiago, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+fibroblast+to+myofibroblast+differentiation+in+vivo+and+in+vitro%3A+expression+of+focal+adhesion+components+in+neonatal+and+adult+rat+ventricular+myofibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Cardiac fibroblast to myofibroblast differentiation in vivo and in vitro: expression of focal adhesion components in neonatal and adult rat ventricular myofibroblasts.</a> Dev Dyn. 239 (6), 1573-1584 (2010).</li>
<li>Fisher, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+smooth+muscle+phenotypic+diversity+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Genomics%22%5BJournal%5D)">Vascular smooth muscle phenotypic diversity and function.</a> Physiol Genomics. 42A (3), 169-187 (2010).</li>
<li>Archer, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diversity+of+phenotype+and+function+of+vascular+smooth+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Lab+Clin+Med%22%5BJournal%5D)">Diversity of phenotype and function of vascular smooth muscle cells.</a> J Lab Clin Med. 127 (6), 524-529 (1996).</li>
<li>Souza-Smith, F. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenteric+resistance+arteries+in+type+2+diabetic+db%2Fdb+mice+undergo+outward+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Mesenteric resistance arteries in type 2 diabetic db/db mice undergo outward remodeling.</a> PLoS One. 6 (8), e23337(2011).</li>
<li>Thuroff, J. W., Hort, W., Lichti, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diameter+of+coronary+arteries+in+36+species+of+mammalian+from+mouse+to+giraffe%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Diameter of coronary arteries in 36 species of mammalian from mouse to giraffe.</a> Basic Res Cardiol. 79 (2), 199-206 (1984).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

O objetivo deste estudo foi adaptar protocolos de isolamento de células existentes para aumentar o rendimento de vascular coronariana suave de corações de ratinho. A maior parte do trabalho pioneiro na biologia do músculo liso vascular foi realizada com células de músculo liso de aorta de rato cultivadas. Estes estudos deram conhecimento fundamental dos mecanismos moleculares que controlam o crescimento VSMC, migração e hipertrofia 7. No entanto, como o campo progrediu, tornou-se evidente que VSMC fenótipo e ...

O objectivo deste método é isolar as células musculares lisas vasculares (VSMCs) a partir da circulação coronária murino para uso em cultura de células e ensaios de cultura de células padrão. Nós desenvolvemos esta técnica para avaliar os mecanismos moleculares da remodelação vascular na diabetes. Temos relatado anteriormente para dentro remodelação hipertrófica nas arteríolas coronárias septais no modelo de camundongo db / db de diabetes 1. Devido à quantidade limitada de tecido encontrado nas coronárias septais de murino, as técnicas experimentais padrão investigaram as alterações da proteína (por exemplo, transferência de Western) em ratinhos db / db e de controlo são difíceis na melhor das hipóteses. Além disso, temos mostrado previamente que o bloqueador do receptor de angiotensina (BRA) losartan reduz a remodelação observada em ratinhos db / db 2. Por conseguinte, o isolamento de VSMCs de primários a partir da circulação coronária nos permite investigar mudanças em CMLV fenótipo ou vias de sinalização activadas em ratos diabéticos, que podem ser contriting para adversa remodelação das arteríolas coronárias. Numerosos estudos têm elucidado vias de sinalização que utilizam canónicos VSMCs isoladas a partir da aorta de roedores, em vez de em cada leito vascular específico. No entanto, nós demonstramos vascular-cama remodelação específica em coronárias, aorta, e circulações mesentéricas de ratinhos db / db 1, sugerindo que os VSMCs em cada leito vascular pode ser diferente. Por conseguinte, é necessário isolar a partir de VSMCs de cada leito vascular, a fim de melhor compreender as alterações patológicas que ocorrem em cada conjunto de VSMC. Há uma infinidade de diferentes métodos para o isolamento e cultura de VSMCs de aorta. No entanto, actualmente, há apenas um estudo que foi publicada no isolamento de VSMCs de rato a circulação coronária 3. Teng et ai. foi o primeiro a relatar um método para o isolamento de VSMCs de rato a circulação coronária; no entanto, temos alterado o protocolo significativamente como eles também isolado cel endotelialls. Outros laboratórios também têm utilizado o protocolo de Teng et al. Isolar miócitos arteriais coronárias e das vias aéreas células musculares lisas 4,5. As alterações que tenham incorporado irá produzir uma população de células altamente enriquecidas em VSMC da circulação coronária. A perfusão retrógrada do coração dos mamíferos isolado, ou técnica de Langendorff, foi criada em 1897, 6 por Oscar Langendorff e ainda hoje é amplamente utilizado para o isolamento de células cardiovasculares. A técnica aqui apresentada, juntamente com o avanço das modificações genéticas modernas de murino, proporciona uma valiosa ferramenta para investigação mais detalhada do comportamento molecular de VSMC da circulação coronária.

<table><tbody><tr><td>Soro fetal bovino</td><td>Life Technologies</td><td>16140-071</td><td></td></tr><tr><td>Solução HEPES 1 M</td><td>Fisher</td><td>MT-25-060</td><td></td></tr><tr><td>Primocin - 20 ml</td><td>Invivogen</td><td>ant-pm-2</td><td></td></tr><tr><td>DMEM (Alta Glicose, Piruvato de Sódio, L-Glutamina)&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>11995-065</td><td></td></tr><tr><td>MEM NEAA 10 mM 100x</td><td>Life Technologies</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>L-Glut 200 mM - Gibco</td><td>Life Technologies</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>Filtro de Células Estéreis 100 &micro; m malha de nylon</td><td>Fisher</td><td>22363549</td><td></td></tr><tr><td>Nunclon Prato de poliestireno com tampa, estéril, 35 mm</td><td>Fisher</td><td>12-565-91</td><td></td></tr><tr><td>Harvard Apparatus sutura de seda preta 5-0</td><td>Fisher</td><td>14-516-124</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase Tipo-2&nbsp;</td><td>Worthington Biochemical</td><td>LS004176</td><td></td></tr><tr><td>Inibidor de Tripsina de Soja 25 mg</td><td>Sigma</td><td>T6522</td><td></td></tr><tr><td>Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) (1x), líquido (transparente)</td><td>Life Technologies</td><td>14175-103</td><td></td></tr><tr><td>Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) (1x), líquido (vermelho de fenol)</td><td>Life Technologies</td><td>14170-161</td><td></td></tr><tr><td>Serpentina de aquecimento de 5,0 ml com coletor de bolhas de desgaseificação</td><td>Bomba de</td> água aquecida <td></td> de circulação Radnoti 158830 <td></td></tr><tr><td>11 plus</td><td>Harvard Apparatus</td><td>70-2208</td><td></td></tr><tr><td>Qualquer</td><td>marca funcionará</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento de murino vasculares coronários células musculares lisas

Isolation of Murine Coronary Vascular Smooth Muscle Cells

Embora o isolamento e cultura de células de músculo liso vascular (VSMCs) a partir dos navios de grande porte está bem estabelecida, procurou-se isolar e cultivar as VSMCs da circulação coronária. Corações com arcos aórticos intactos foram removidos e perfundidos através de Langendorff com solução de digestão retrógrada contendo 300 unidades / mL de colagenase tipo II, 0,1 mg / mL de inibidor de tripsina de soja e 1 M de CaCl2. Os perfusatos foram recolhidas a intervalos de 15 minutos durante 90 minutos, sedimentadas por centrifugação, ressuspensas em meio de plaqueamento, plaqueadas e em placas de cultura de tecidos. As VSMC foram caracterizados pela presença de SM22α, α-SMA, e vimentina. Uma das principais vantagens da utilização desta técnica é a capacidade de isolar VSMCs da circulação coronária de ratos. Embora o pequeno número de células obtidas podem limitar algumas das aplicações para as quais as células podem ser utilizados, VSMCs coronárias isoladas podem ser utilizadas em uma variedade de técnicas de cultura de células bem estabelecidos e assays. Estudos investigando VSMC de camundongos geneticamente modificados pode fornecer mais informações sobre a estrutura-função e os processos de sinalização associados com patologias vasculares.

Devido ao aspecto inovador da nossa técnica de isolamento de VSMC coronária, procurou-se determinar a pureza do isolamento de células. As VSMC coronárias de rato foram identificados com base na sua morfologia e coloração de imunofluorescência até passagem 2. Com base na morfologia das células em cultura após a primeira lavagem, o procedimento de isolamento remove eficazmente os miócitos cardíacos e células endoteliais. As VSMCs de reter a sua morfologia até passagem 2 (Figura 1)....

O objectivo deste protocolo é demonstrar as técnicas de isolamento e cultivo de células musculares murino primários liso vascular (VSMC) da circulação coronária. Uma vez que as VSMCs foram isolados, eles podem ser usados ​​para várias técnicas de cultura convencionais.

Isolamento de Murino vasculares coronários células musculares lisas

While the isolation and culture of vascular smooth muscle cells (VSMCs) from large vessels is well established, we sought to isolate and culture VSMCs ...

O objetivo geral deste procedimento é isolar células musculares lisas vasculares da circulação coronariana murina para seu cultivo e uso em ensaios padrão de cultura celular. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área cardiovascular, como quais mecanismos-chave de doença estão envolvidos no comportamento das células musculares lisas vasculares coronarianas primárias murinas. A principal vantagem desta técnica é que ela fornece uma população predominantemente pura de células musculares lisas vasculares coronarianas primárias de camundongo.Antes de iniciar o procedimento, acople uma seringa estéril de 10 mililitros com conexão Leur Lock, preenchida com HBSS à temperatura ambiente sem vermelho de fenol, ao tubo da bomba de perfusão. Em seguida, transfira cada uma das cânulas de 25 gauge das bobinas de aquecimento para seringas individuais de 10 mililitros preenchidas com HBSS gelado sem vermelho de fenol. Coloque as seringas sobre gelo.Em seguida, faça nós soltos simples em cada um dos dois pedaços de fio de seda de cinco centímetros, com uma extremidade duas vezes mais longa que a outra. Coloque um nó em cada uma das cânulas de 25 mm de diâmetro sem apertar e

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Os cordões umbilicais são usados ​​para isolar as células do músculo liso por caminhos diferentes. Neste trabalho utilizou-se o tratamento enzimático de células musculares lisas isoladas.

Isolamento da Human Umbilical células musculares arteriais (HUASMC)

Nós apresentamos uma preparação para a visualização e manipulação de sinalização do cálcio em nativa, endotélio microvascular intacta. Tubos endoteliais recém isolado das artérias de resistência do mouse fornecendo músculo esquelético manter vivo na morfologia e sinalização dinâmica dentro e entre as células vizinhas. Tubos endoteliais pode ser preparado a partir de microvasos de outros tecidos e órgãos.

Isolamento de tubos endoteliais microvasculares de Artérias Rato Resistência

Desenvolvemos um novo e reprodutível técnica para isolar culturas primárias de células do músculo liso da artéria pulmonar (PASMC), a partir de ratinhos jovens como P7, permitindo assim um melhor estudo das vias de sinalização celular envolvidas na contracção do músculo liso neonatal e relaxamento.

Isolamento de artéria pulmonar células musculares lisas de camundongos recém-nascidos

A capacidade de isolar células endoteliais da válvula cardíaca (VECs) é fundamental para a compreensão dos mecanismos de desenvolvimento, manutenção e doença da válvula.  Aqui descrevemos o isolamento de VECs de camundongos Tie2-GFP embrionários e adultos usando FACS que permitirá estudos determinando a contribuição de VECs em processos de desenvolvimento e doença.

O isolamento de células endoteliais de Murino Válvula

Este protocolo está preparado para compartilhar nosso método de isolamento de células endoteliais coronárias de camundongos para fins de imagem ou para conduzir experimentos biológicos moleculares.

Isolamento de células de camundongo Coronária endoteliais

Células endoteliais microvasculares dos músculos esqueléticos (MMEC) forma a parede interna dos capilares musculares e regular a ambos, troca de fluidos/moléculas e migração de células (imunes) entre o tecido muscular e sangue. Isolamento de MMEC murino primário, conforme descrito aqui, permite investigações in vitro abrangentes da unidade"myovascular".

Isolamento de células endoteliais Microvascular do principal músculo esquelético murino

Nós otimizamos um protocolo para isolar e purificar pericitos cardíacos murinos para pesquisa básica e investigação de sua biologia e potencial terapêutico.

Isolamento e purificação de Pericytes cardíacos murinos

Modelos murinos permitem estudar os principais mecanismos da arritmogênese. Para isso, cardiomiócitos de alta qualidade são necessários para a realização de medidas de patch-clamp. Aqui, é descrito um método para isolar miócitos murinos atriais e ventriculares via perfusão retrógrada de Langendorff baseada em enzimas, que permite medidas simultâneas de transientes de cálcio e corrente de cálcio tipo L.

Isolamento de miócitos murinos atrial e ventricular de alta qualidade para medidas simultâneas de Ca2+ transitórios e corrente de cálcio tipo L

Apresentamos um método para isolar células e núcleos endoteliais do lúmen de artérias carótidas de camundongos expostas a condições de fluxo estáveis ou perturbadas para a realização de experimentos ômicos unicelulares.

Isolamento de células endoteliais do lúmen de artérias carótidas de camundongos para experimentos multi-ômicos unicelulares

As respostas vasculares da circulação arterial pulmonar podem ser exploradas usando a artéria intrapulmonar (AIP) e as células musculares lisas vasculares (CMVS). O presente estudo descreve detalhadamente o isolamento da AFI e os protocolos utilizados para investigar o vasorelaxamento em resposta a estímulos fisiológicos.

Isolamento da artéria intrapulmonar e das células musculares lisas para investigar as respostas vasculares

Este estudo estabeleceu um método estável e eficiente para o isolamento, cultura e determinação funcional de células-tronco CD34+ residentes na parede vascular (CD34+ VW-SCs). Este método de isolamento fácil de seguir e eficaz em termos de tempo pode ser utilizado por outros investigadores para estudar os mecanismos potenciais envolvidos nas doenças cardiovasculares.

Isolamento imunomagnético das células-tronco CD34+ residentes na parede vascular de camundongos

Aprenda a isolar células musculares lisas vasculares coronárias de camundongo para estudos cardiovasculares. Este método fornece uma população pura de células primárias para ensaios de cultura in vitro.

Isolamento de Murino vasculares coronários células musculares lisas

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