Name: Avaliação da morfológicas e funcionais cardíacas Mudanças no Modelo rato de Transverse aórtica constrição por ecocardiográfica de imagem (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 5 s
Description: Aprenda a avaliar mudanças estruturais e funcionais cardíacas em modelo murino de constrição aórtica transversa por ecocardiografia. Este método não invasivo permite monitorar a progressão da doença cardíaca ao longo do tempo.

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Os autores não têm nada a divulgar.

O protocolo segue as orientações do Comité de Conservação e Uso Institucional animal da Universidade de Washington. 1. Procedimento Cirúrgico e Preparação para criação de imagens <ol><li> Objecto ratinhos C57BL / 6 a TAC ou cirurgia simulada como previamente descrito 10. </li><li> Uma semana após a cirurgia simulada ou TAC, anestesiar o rato na câmara de indução com 2% de isoflurano misturado com 1 L / min de O2. Confirmar anesthetization adequado por falta de resposta aos pés ou beliscar a cauda. Use pomada veterinária nos olhos para evitar a secura e sob anestesia. Remova o cabelo no peito, aplicando creme de depilação. Desinfectar a pele do rato com etanol 70%. </li><li> Fixe o mouse para uma plataforma de tratamento de animais em decúbito dorsal. Para manter um nível constante de anestesia, utilizar um cone de nariz para proporcionar 0,5-1% de isoflurano misturado com 1 L / min de O2. </li><li> Aplique gel eletrodo para as patas do mouse e gravá-los para o bloco de eletrodo. </li><li> Inserir uma sonda retal para monitorar a temperatura do corpo. Manter a temperatura do corpo a 37 ° C através de uma almofada de aquecimento ou lâmpada. </li><li> Aplicar uma camada de gel de ultra-som pré-aquecido para o peito do rato, essencialmente a área que cobre o coração. Nota: remover o gel de ultra-som e secar o mouse com gaze estéril após o procedimento de imagem. </li></ol> 2. No Arco Aórtico View, Use B-mode e Doppler Imaging para avaliar transversal aórtica constrição <ol><li> Use a configuração do modo B para obter a aorta vista arco, a fim de visualizar a aorta, principais ramos arteriais, eo site constrição. <ol><li> Incline o lado esquerdo da plataforma para cima, tanto quanto possível para girar o mouse para a posição de decúbito esquerda. Segure o transdutor de ultra-som por stand em posição vertical e coloque-o no peito ao longo da linha paraesternal direita, com o apontador entalhe em direção ao queixo do mouse. Nota: Não comprimir o tórax do rato, quando baixar o transducer; é necessária uma quantidade mínima de pressão. </li><li> Incline o transdutor até ao nível da escápula e gire ligeiramente no sentido horário até o arco aórtico vem na vista. Observar o local de constrição da aorta transversal, que está localizado entre a ramificação da artéria inominada (IA) e artéria carótida comum esquerda (LCCA) (Figura 1). Nota: Não constrição é detectado em ratos sham-operados. </li></ol></li><li> Clique no botão &quot;color Doppler&quot; na estação de trabalho para mudar para o modo Doppler colorido para monitorar direcionalidade e velocidade do fluxo sanguíneo em todo o site constrição. Adquirir e armazenar imagens, clicando no botão &quot;loja de cine&quot;. </li><li> Clique no botão &quot;PW Doppler&quot; para mudar a pulsar modo de onda Doppler, e volume de amostra lugar (a caixa cursor tracejada) imediatamente distal ao local de constrição para procurar o jato estenótica com a maior velocidade, em seguida, clique no botão &quot;PW Doppler&quot; para se obter formas de onda de fl aórticapico de velocidade ow e medir (Figura 2). </li><li> Calcule gradiente de pressão através do site de constrição usando o modificada de Bernoulli equação: gradiente de pressão = 4 x V max 2. incluir apenas ratos com um gradiente de pressão que varia de 40 a 80 mmHg para posterior análise. </li></ol> 3. Na paraesternal eixo longo vista, utilize B-mode e modo-M na avaliação do cardíacas dimensões e contratilidade <ol><li> Com o mouse deitado em decúbito dorsal na plataforma, segurar o transdutor de forma vertical com o entalhe apontando para a cabeça do rato. Diminuir o transdutor sobre o tórax paralela à linha-esternal esquerda e rodar 30 ° no sentido anti- horário. </li><li> Use imagens em modo B para obter um eixo longo completo &quot;sagital&quot; do coração. Ajustar o ângulo do transdutor e concentrar para visualizar a profundidade do ventrículo esquerdo, a parede do septo interventricular, e uma pequena porção da parede ventricular direita. Save as imagens para medições posteriores da espessura da parede cardíaca e dimensão da câmara. Usando o &quot;pacote cardíaca&quot;, selecione parâmetros como IVS ou LVAW, LVID e VEPP, em seguida, clique sobre a imagem para desenhar linhas correspondentes para cada parâmetro para obter as medições. </li><li> Observar os padrões de movimento da parede cardíaca e verificar a existência de possíveis anormalidades de movimento, incluindo acinesia, hipocinesia, e assincronia. Nota: A acinesia e hipocinesia denotam perda completa ou parcial de movimento da parede cardíaca, respectivamente. Assincronia denota irregular movimento da parede, descoordenada cardíaca. </li><li> Alternar para o modo-M, local cursor do modo M perpendicular às paredes do VE ao nível do músculo papilar, e adquirir imagens para posterior medição das dimensões cardíacas e fração de encurtamento (Figura 3). </li></ol> 4. No eixo paraesternal curtos, utilize B-mode e modo-M na avaliação do Cardiac morfologia e função <ol><li> from a vista eixo longo paraesternal, obter-esternal eixo curto girando o transdutor de 90 ° no sentido horário. Ajuste o transdutor para dar uma vista horizontal em corte transversal &quot;transversal&quot; do coração em modo-B, com ambos os músculos papilares claramente visíveis e localizado para a direita (na posição 2 e 4 horas). </li><li> Alternar para o modo-M e coloque o eixo do modo M no nível médio do ventrículo esquerdo. Adquirir e armazenar imagens para medições posteriores de espessura cardíaca parede, dimensão câmara, e fração de encurtamento (Figura 4). Usando o &quot;pacote cardíaca&quot;, selecione os parâmetros em SAX (eixo curto), incluindo IVS ou LVAW, LVID e VEPP, e clique na imagem para desenhar linhas correspondentes para cada parâmetro para obter as medições. Nota: As medições obtidas aqui deve correlacionar estreitamente aos obtidos no paresternal vista eixo de comprimento (Figura 5). </li></ol> 5. Na Vista apical de quatro câmaras, UseDoppler Imaging para avaliar função sistólica e diastólica <ol><li> Obter a vista apical quatro câmaras para visualizar ventrículos esquerda e à direita com os átrios na parte inferior da tela. No modo B, a partir do eixo curto, incline o canto superior esquerdo da plataforma para o ângulo da cabeça do rato para baixo e orientar o transdutor em direção ao ombro direito do mouse. Esta é, essencialmente, para alcançar uma visão &quot;coronal&quot; do coração olhando para cima em direção ao ápice. </li><li> Visualize a válvula mitral em modo-B, e mudar para o modo Doppler colorido, colocando o volume da amostra (a caixa cursor tracejada) na ponta da válvula mitral. </li><li> Alternar para o modo PW Doppler para avaliar os padrões de fluxo através da válvula mitral. Alinhar a sonda Doppler cursor paralelo à direcção do fluxo sanguíneo mitral. Usar uma sonda ângulo inferior a 20 ° para determinar a velocidade de pico (Figura 6). </li><li> Salve as imagens para medições posteriores. Use &quot;pacote cardíaca&quot; e selecione &quot;fluxo MV. &quot;Clique em cada parâmetro e desenhar linhas correspondente para obter as medições de medições disponíveis incluem:. Pico da velocidade E (enchimento precoce com relaxamento ventricular ativo), um pico de velocidade (final de enchimento com contração atrial), relaxamento isovolumétrico mitral e tempos de contração (IVRT e TCIV respectivamente), e o tempo de ejecção (ET). </li><li> Calcular o índice de performance miocárdica (MPI) pelo MPI = (IVCT + TRIV) / ET. </li></ol> Tratamento 6. pós-procedimento de animal <ol><li> Proporcionar analgesia e / ou soro fisiológico estéril por via intraperitoneal a animais cirúrgicos quando necessário. </li><li> Permitir que o animal se recuperar em uma almofada de aquecimento na posição prona. Não deixe um animal sem supervisão até que tenha recuperado a consciência suficiente para manter decúbito esternal. Não devolva um animal que foi submetido ao procedimento para a companhia de outros animais até que esteja totalmente recuperado. </li></ol>

<ol><li>Rockman, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+atrial-specific+and+inducible+expression+of+an+atrial+natriuretic+factor+transgene+in+an+in+vivo+murine+model+of+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 88 (18), 8277-8281 (1991).</li>
<li>Tanaka, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transthoracic+echocardiography+in+models+of+cardiac+disease+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Transthoracic echocardiography in models of cardiac disease in the mouse.</a> Circulation. 94 (5), 1109-1117 (1996).</li>
<li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+models+of+heart+failure%3A+development+of+novel+therapies%2C+past+and+present%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2 (2), 138-144 (2009).</li>
<li>Heineke, J., Molkentin, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+cardiac+hypertrophy+by+intracellular+signalling+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Regulation of cardiac hypertrophy by intracellular signalling pathways.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7 (8), 589-600 (2006).</li>
<li>Oka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac-specific+deletion+of+Gata4+reveals+its+requirement+for+hypertrophy%2C+compensation%2C+and+myocyte+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Cardiac-specific deletion of Gata4 reveals its requirement for hypertrophy, compensation, and myocyte viability.</a> Circ Res. 98 (6), 837-845 (2006).</li>
<li>Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+assessment+of+left+ventricular+mass+and+systolic+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic assessment of left ventricular mass and systolic function in mice.</a> Circ Res. 76 (5), 907-914 (1995).</li>
<li>Respress, J. L., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transthoracic+echocardiography+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transthoracic echocardiography in mice.</a> J Vis Exp. (39), e1738(2010).</li>
<li>Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+echocardiography+and+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Murine echocardiography and ultrasound imaging.</a> J Vis Exp. (42), e2100(2010).</li>
<li>Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+pulse+wave+and+color+flow+Doppler+echocardiography+in+mouse+models+of+human+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease.</a> J Am Soc Echocardiogr. 15 (7), 708-714 (2002).</li>
<li>deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transverse+aortic+constriction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. (38), e1729(2010).</li>
<li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Bátkai, S., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nat Protoc. 3 (9), 1422-1434 (2008).</li>
<li>Larsen, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+working+mouse+heart%3A+methodological+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">The isolated working mouse heart: methodological considerations.</a> Pflugers Arch. 437 (6), 979-985 (1999).</li>
<li>Roth, D. M., Swaney, J. S., Dalton, N. D., Gilpin, E. A., Ross, J. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+anesthesia+on+cardiac+function+during+echocardiography+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Impact of anesthesia on cardiac function during echocardiography in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 282 (6), H2134-H2140 (2002).</li>
<li>Pearlman, A. S., Stevenson, J. G., Baker, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+echocardiography%3A+applications%2C+limitations+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Doppler echocardiography: applications, limitations and future directions.</a> Am J Cardiol. 46 (7), 1256-1262 (1980).</li>
<li>Bauer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+speckle-tracking+based+strain+imaging+for+rapid+cardiovascular+phenotyping+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic speckle-tracking based strain imaging for rapid cardiovascular phenotyping in mice.</a> Circ Res. 108 (8), 908-916 (2011).</li>
</ol>

Este trabalho foi apoiado em parte por bolsas do NIH / NHLBI R00HL0908076 e R01HL116507 (para QL).

A ecocardiografia tem sido amplamente utilizada para avaliar a função cardíaca em modelos de roedores de 2,6 a doença cardíaca. Em comparação com metodologias invasivas ou terminais, tais como pressão-volume ponto de medição 11 e ex vivo trabalhando coração 12, ecocardiografia fornece uma ferramenta poderosa e não invasiva para avaliar as alterações cardíacas estruturais e funcionais em curso em animais vivos. Para obter dados fiáveis, é importante para manter a temperatura corp...

Modelos de doenças cardíacas em camundongos, como TAC e infarto do miocárdio (IM), provaram ser valiosos para estudar os mecanismos da doença, bem como para desenvolver novas estratégias terapêuticas3. A TAC inicialmente induz hipertrofia compensatória, mas a sobrecarga pressórica prolongada leva à dilatação cardíaca e insuficiência cardíaca4. A rigidez da constrição aórtica determina diretamente o grau de hipertrofia cardíaca e sua transição para insuficiência cardíaca. A medição não invasiva e confiável do gradiente de pressão através da constrição aórtica é essencial para o sucesso desses estudos. A imagem Doppler tem sido usada para avaliar o gradiente de pressão produzido pelo TAC5, que é uma alternativa não invasiva para a medição da pressão baseada em cateter.
A ecocardiografia tem sido amplamente utilizada para medir de forma não invasiva a morfologia cardíaca, bem como a função sistólica e diastólica em camundongos6-8. A imagem bidimensional do modo B é usada para detectar movimentos anormais ou alterações estruturais do coração. A imagem unidimensional do modo M é usada para quantificação das dimensões cardíacas e da contratilidade. A imagem Doppler colorida e PW tem sido recentemente usada na ultrassonografia de roedores, que tem amplas aplicações para ecocardiografia, incluindo medição da direcionalidade e velocidade do fluxo, bem como desempenho sistólico e diastólico9. 
O monitoramento longitudinal em tempo real da função cardíaca usando ecocardiografia no modo B, modo M, cor e modo PW Doppler fornece uma avaliação abrangente da estrutura e função cardíaca em camundongos sob condições fisiológicas e patológicas. Aqui, fornecemos uma descrição detalhada do uso de imagens ecocardiográficas para monitorar alterações morfológicas e funcionais cardíacas dinâmicas em camundongos após TAC ou cirurgia simulada.

<table><tbody><tr><td>Equipamento de anestesia</td><td>Harvard Apparatus, 84 October Hill Road Holliston, MA</td><td>723015</td><td></td></tr><tr><td>Vevo 2100 Imaging System</td><td>VisualSonics Inc., 3080 Yonge Street Suite 6100, Box 66, Toronto, Ontário, Canadá</td><td>Vevo 2100</td><td></td></tr><tr><td>Aquasonic ultrasound gel</td><td>Parker Laboratories, 286 Eldridge Rd, Fairfield, NJ&nbsp;</td><td>03-50</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Piramal Healthcare, Inc, 3950 Schelden Circle Bethlehem, PA&nbsp;</td><td>NDC 66794-017-25</td><td></td></tr><tr><td>Unidade de filtro de gás de anestesia F / ar</td><td>AM Bickford, Inc, 12318 Big Tree Rd, Wales Center, NY&nbsp;</td><td>Rolamento 80120</td><td></td></tr></tbody></table>

avaliação da morfológicas e funcionais cardíacas mudanças no modelo rato de transverse aórtica constrição por ecocardiográfica de imagem

Assessment of Cardiac Morphological and Functional Changes in Mouse Model of Transverse Aortic Constriction by Echocardiographic Imaging

A constrição aórtica transversa (TAC) em camundongos tem sido usada como um modelo valioso para estudar mecanismos de hipertrofia cardíaca e insuficiência cardíaca1. Um método não invasivo confiável é essencial para avaliar em tempo real as alterações morfológicas e funcionais cardíacas em modelos animais de cardiopatia. A ecocardiografia transtorácica representa uma importante ferramenta para avaliação não invasiva da estrutura e funçãocardíaca2. Aqui, usamos um sistema de imagem de ultrassom de alta resolução para monitorar a remodelação do miocárdio e a progressão da insuficiência cardíaca ao longo do tempo em um modelo de camundongo de TAC. As imagens de modo B, modo M e Doppler foram usadas para avaliar com precisão a hipertrofia cardíaca, dilatação ventricular e deterioração funcional em camundongos após TAC. A imagem Doppler de onda colorida e de pulso (PW) foi usada para medir de forma não invasiva o gradiente de pressão através da constrição aórtica criada pelo TAC e para avaliar o fluxo sanguíneo transmitral em camundongos. Assim, a imagem ecocardiográfica transtorácica fornece medições abrangentes e não invasivas das dimensões e funções cardíacas em modelos de camundongos com doenças cardíacas.

A Figura 1 mostra imagens em modo B da aorta vista arco do coração de rato submetido a sham (Figura 1A) ou cirurgia TAC (Figura 1B). O arco aórtico, artéria inominada, artéria carótida comum esquerda e artéria subclávia esquerda são mostrados. Note-se que a constrição aórtica é claramente visível no TAC, mas não sham coração. Imagens Doppler colorido de vista da aorta são mostrados na Figura 2A. As formas de onda de flux...

O objetivo deste protocolo é avaliar de forma não invasiva alterações cardíacas estruturais e funcionais em um rato modelo da doença de coração criado por constrição aórtica transversal, usando B e M-mode ecocardiografia e cor / impulso de imagem onda Doppler.

Avaliação da morfológicas e funcionais cardíacas Mudanças no Modelo rato de Transverse aórtica constrição por ecocardiográfica de imagem

Transverse aortic constriction (TAC) in mice has been used as a valuable model to study mechanisms of cardiac hypertrophy and heart failure1. A reliable ...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar a estrutura e a função cardíacas utilizando imagem ecocardiográfica em um modelo murino de doença cardíaca induzida por constrição aórtica transversa, ou TAC. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de pesquisa cardiovascular sobre as imagens de doenças cardíacas em modelos animais. A principal vantagem desta técnica é que ela pode ser usada para monitorar de forma confiável a progressão da doença cardíaca ao longo do tempo de maneira não invasiva.De modo geral, introduzir este método é realmente difícil, porque a aquisição de imagens e medições ecocardiográficas é desafiadora sem uma demonstração prática. Antes de iniciar a aquisição de imagens, aplique gel eletrolítico nas patas do camundongo com constrição aórtica transversa e fixe as patas a uma placa de eletrodos. Em seguida, insira uma sonda retal para monitorar a temperatura corporal durante o procedimento.Quando o animal estiver pronto, configure o aparelho de imagem no modo B e incline o lado esquerdo da plataforma para cima o máximo possível para posicionar o camundongo em decúbito lateral esquerdo. Segurando o transdutor de ultrassom pelo suporte na

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Constrição aórtica transversal (TAC) no rato é um modelo experimental comumente usado para estudar os mecanismos subjacentes a hipertrofia cardíaca eo desenvolvimento de insuficiência cardíaca. Aqui, descrevemos os procedimentos a constrição da aorta para criar um grau reprodutível de hipertrofia cardíaca em camundongos.

Constrição aórtica transversais em ratos

O ecocardiograma transtorácico oferece um método não invasivo para a avaliação da função cardíaca em camundongos. A combinação de ultra-som Doppler e modalidades podem ser usadas para obter medições dimensionais do coração eo fluxo sangüíneo intracardíaco, que juntos fornecem uma avaliação da pressão arterial sistólica cardíaca diastólica e desempenho.

Ecocardiografia transtorácica em Ratos

Este vídeo demonstra o uso de um trilho montado de alta freqüência da sonda de ultra-som para realizar ecocardiografia de um rato anestesiado. Os métodos de descrever ambas as medições convencionais bidimensional e modo-M da função cardíaca, além de mais novos, ferramentas mais poderosas, como a cor Doppler, análise de tensão, bem como imagens de contraste gerais e específicas.

Ecocardiografia murino e ultra-sonografia

Este vídeo descreve um protocolo para realizar ecocardiografia em um camundongo de laboratório.

Ecocardiografia de camundongos: uma técnica não invasiva para avaliar a morfologia cardíaca

Ventrículo direito (VD) disfunção é fundamental para a patogênese da doença cardiovascular, ainda metodologias limitados estão disponíveis para a sua avaliação. Recentes avanços em ultra-sonografia fornecer uma opção não invasiva e precisas para o estudo RV longitudinal. Aqui, temos um método ecocardiográfico passo-a-passo através de um modelo murino de sobrecarga de pressão RV detalhes.

Avaliação da Estrutura e Função do Ventrículo Direito em modelo de camundongo Pulmonary Artery constrição por Ecocardiografia transtorácica

Este protocolo fornece uma descrição detalhada da abordagem ecocardiográfica para fenotipagem abrangente do coração e da função da válvula cardíaca em camundongos.

Abordagens ecocardiograma e protocolos de Comprehensive Caracterização fenotípica de doença cardíaca valvular em ratos

Minimamente invasiva constrição aórtica transversal (MTAC) conserva o essencial da constrição aórtica transversal regulares (TAC), eliminando o uso de um ventilador com intubação traqueal. Ele revela-se um método altamente desejável para os estudos de alto rendimento sobre a sobrecarga do ventrículo esquerdo, particularmente em estudos translacionais.

Minimamente Invasiva transversal aórtica constrição em Ratos

Exame ecocardiográfico é frequentemente usada em ratos. Aparelhos de ultra-som de alta resolução caro foram desenvolvidos para esta finalidade. Este protocolo descreve um procedimento ecocardiográfico acessível, combinado com análises morfométricas histológica para determinar a morfologia cardíaca.

Exame ecocardiográfico e histológico da morfologia cardíaca no Mouse

O presente protocolo descreve uma técnica modificada e simplificada com procedimento minimamente invasivo de constrição transversa da aorta (TAC) utilizando um afastador de fabricação própria. Esse procedimento pode ser realizado sem ventilador ou microscópio e introduz sobrecarga pressórica, eventualmente levando à hipertrofia cardíaca ou insuficiência cardíaca.

Técnica Modificada para Constrição Aórtica Transversa em Camundongos

Este artigo fornece um protocolo para a avaliação ecocardiográfica do tamanho do ventrículo direito e hipertensão pulmonar em camundongos. As aplicações incluem a determinação do fenótipo e avaliação de série em modelos de ratos transgênicos e induzida por toxinas de miocardiopatia e doença vascular pulmonar.

Avaliação ecocardiográfica do coração direito em Ratos

Aprenda a avaliar mudanças estruturais e funcionais cardíacas em modelo murino de constrição aórtica transversa por ecocardiografia. Este método não invasivo permite monitorar a progressão da doença cardíaca ao longo do tempo.

Avaliação da morfológicas e funcionais cardíacas Mudanças no Modelo rato de Transverse aórtica constrição por ecocardiográfica de imagem (Vídeo) | JoVE Journal

Avaliação da morfológicas e funcionais cardíacas Mudanças no Modelo rato de Transverse aórtica constrição por ecocardiográfica de imagem

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