Name: Totalmente dispositivo automático centrífugo microfluídicos para a detecção de proteínas Ultrasensitive de Sangue Total (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 58 s
Description: Aprenda a detectar proteínas com sensibilidade femtomolar em amostras de sangue total usando nanofibras de dióxido de titânio em plataforma lab-on-a-disc totalmente automatizada. Este método de ELISA integrado oferece análise rápida e precisa para diagnósticos avançados.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabalho foi financiado pela Fundação Nacional de Pesquisa da Coreia (NRF) subvenções (2013R1A2A2A05004314, 2012R1A1A2043747), uma bolsa da Korean Saúde Tecnologia R &amp; D Project, Ministério da Saúde e Bem-Estar (A121994) e IBS-R020-D1 financiado pelo Governo coreano.

NOTA: O sangue foi coletado de indivíduos saudáveis ​​e foi recolhido em um tubo de coleta de sangue. consentimento informado por escrito foi obtido de todos os voluntários. 1. Fabricação de TiO 2 NF Mat <ol><li> Preparação da solução precursora de 22 <ol><li> Dissolve-se 1,5 g de tetra-isopropóxido de titânio (TTIP) numa mistura de etanol (99,9%, 3 ml) e ácido acético glacial (3 ml) e misturar a solução à TA (25 ° C) durante 30 minutos num agitador magnético. </li><li> Dissolve-se 11% em peso de polivinil-pirrolidona (PVP) em 3,64 g de etanol (99,9%) e agita-se a solução a 65 ° C durante 1 hora utilizando um agitador magnético da placa quente. </li><li> Combinar e agita-se as duas soluções a 65 ° C durante 4 horas num agitador magnético da placa quente. </li></ol></li><li> electrospinning <ol><li> Carregar a solução preparada para uma seringa ligada a uma agulha de aço inoxidável de 200 um Diame internater. Verter a solução directamente para a seringa após a remoção do êmbolo. </li><li> Introduzir a solução constantemente a uma taxa de fluxo de 0,3 mL / h durante 10 min numa bolacha de Si (2 cm x 2 cm) colocado sobre um substrato ligado à terra a uma tensão CC elevada (15 kV). Durante o electrospinning, defina a distância entre a agulha e o substrato ligado à terra a 10 cm. </li></ol></li><li> Calcinação do tapete NF <ol><li> Coloque a esteira NF num forno e aumentar a temperatura até 500 ° C com uma taxa de rampa de 3 ° C / min sob condições de alto vácuo (5 x 10 -5 torr). </li><li> Manter a temperatura a 500 ° C durante 3 h. Arrefecer a temperatura das amostras para a TA (25 ° C) no forno. </li></ol></li></ol> 2. Integração de TiO 2 NF Mat em uma centrífuga Microfluidic Disc <ol><li> A fabricação de um disco <ol><li> Use o software design 3D (por exemplo, SolidWorks ou semelhante) para descrever câmaras, canais, ou válvulas de cada camada de disco. Converter os arquivos de design para código de computador controle numérico (CNC), utilizando software de código geração (por exemplo, Edgecam ou similar). Use os softwares de acordo com o manual de instruções 23,24. Nota: As dimensões do canal típicos usados ​​neste aparelho são 1,0 mm x 0,3 mm (largura x profundidade). </li><li> Abra o software operacional de fresadora CNC (ex., DeskCNC ou similar) e carregar código CNC para o software operacional e clique na seguinte em ordem: &quot;AUTO&quot; -&gt; &quot;G CÓDIGO ABERTO&quot; -&gt; Selecione o código CNC gerado. </li><li> Fixar a placa de PC na máquina de fresagem CNC: use 1 placas mm PC para a camada superior e placas de PC 5 mm para a camada de disco. Execute o fresadora CNC para cortar cada camada do disco clicando no botão &quot;Iniciar&quot;. </li></ol></li><li> Transferência de TiO 2 esteira NF no disco<ol><li> Coloque um substrato de silício e uma pequena placa de petri contendo 40 mL de (tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl) -1-triclorossilano numa câmara de vácuo sob vácuo durante 30 min. O fluorosilane vaporiza e é revestida sobre o substrato. </li><li> Mistura de polidimetilsiloxano (PDMS) pré-polímero com um agente de cura numa proporção de 10: 1 e desgaseificar, em uma câmara de vácuo. Spin-revestimento PDMS num substrato de silício a 650 rpm durante 60 seg. </li><li> Curar o PDMS revestido sobre substratos de silício num forno a 65 ° C durante 10 min para atingir um estado aderente. NOTA: tempo de cura pode variar dependendo das condições ambientais, e uma força de adesão pode ser testada por um teste de aderência utilizando um reómetro. </li><li> Transferir a esteira de TiO 2 NF preparado por electrospinning a calcinação e para o silício PDMS-revestidos usando uma pinça. Em seguida, aplicar manualmente uma pressão conformada na TiO 2 mat NF transferida com um objecto plano (por exemplo., Lâmina de vidro) e remover o objeto. Colocaresta amostra no forno a 65 ° C durante 4 horas ou a 80 ° C durante 1 hora para curar a camada de PDMS completamente. </li><li> O revestimento câmaras de reacção de ligação do disco com 20 ul do PDMS / mistura de agente de cura (10: 1), que actua como uma camada adesiva para prender o TiO 2 esteira NF no disco. </li><li> Pipetar 50 ul de etanol (99,9%) sobre a esteira de TiO 2 NF sobre a camada de PDMS, cortar o tapete NF com um furador de diâmetro de 6 mm, e transferir o corte de TiO 2 NF esteira para as câmaras de reacção de ligação revestidas com 20 ul de o PDMS no passo anterior. NOTA: Nesta etapa, o etanol será útil para separar o tapete de corte TiO 2 NF a partir do substrato de Si. </li><li> Incubar o TiO 2 esteira NF disco integrada no forno a 65 ° C durante 4 horas ou a 80 ° C durante 1 hora para curar completamente o PDMS. </li></ol></li><li> A modificação da superfície do tapete de TiO 2 NF no disco <ol><li> Prepare 1% v / v de solução de (3-glicidoxipropil) silano methyldiethoxy (GPDES) em etanol (99,9%). </li><li> Trate o disco integrada TiO 2 mat NF com plasma de oxigênio a 140 W, fluxo de oxigênio de 50 sccm para 180 seg. Pipetar 100 l de solução GPDES em cada esteira de nanofibras e incubar à TA (25 ° C) durante 2 horas. </li><li> Lave a substratos brevemente dispensando etanol (99,9%), utilizando um frasco de lavagem, em seguida, remover o etanol completamente invertendo o disco e apagando-o contra uma limpeza wipe. Cura a 80 ° C durante 1 h. Lavar duas vezes com etanol (99,9%) do mesmo modo como indicado acima, para remover as moléculas GPDES fisicamente adsorvida e não ligados. </li><li> Secagem com uma corrente de azoto, seco sob vácuo. NOTA: O disco pode ser armazenado num contentor selado à TA (25 ° C) até à utilização. </li></ol></li><li> A imobilização de anticorpos sobre a superfície <ol><li> Adicione uma solução de 200 ug / ml de anticorpos de captura (anticorpo monoclonal de ratinho antiO hsCRP humano ou monoclonal de ratinho anti-TIc) diluindo os anticorpos com um tampão de fosfato salino tamponado (PBS) (pH 7,4). Pipetar 5 ul da solução em cada esteira NF num disco utilizando uma micropipeta. Veja a lista de materiais para mais informações sobre os anticorpos. </li><li> Manter os discos numa câmara humidif içada e incubar a 37 ° C durante 4 h. Lavar os anticorpos revestidos NF esteira com 0,1% de tampão de BSA-PBS. Encher a câmara com 100 ul de tampão de lavagem, utilizando uma micropipeta, remover o tampão por aspiração ou decantação. Finalmente, inverter o disco e apagá-lo contra um limpa limpe, e em seguida, montar o disco. </li></ol></li><li> conjunto de disco <ol><li> Desenhar a concepção do disco na fita adesiva de lado duplo utilizando um programa de CAD (por exemplo, AutoCAD ou semelhante). Coloque o desenho CAD para o plotter de corte. </li><li> Cortar a fita adesiva dupla-face usando o plotter de corte. Descolar uma camada de proteção de fita adesiva dupla e anexar iT na parte superior da camada do disco. Retire a outra camada de proteção e anexar a camada superior na camada de disco. </li><li> Coloque o disco preliminarmente montado na máquina de prensagem e alinhar precisamente camadas superior / adesivo / disco utilizando marcas de alinhamento em cada camada para conectar cada válvula, canal e câmaras. Aplique pressão conformada de usar a máquina de prensagem. </li></ol></li></ol> 3. Imunoensaio <ol><li> Encha as câmaras com 1% BSA-PBS utilizando uma micropipeta e a incubação do disco de a 37 ° C durante 1 h. Remover o tampão por aspiração usando uma micropipeta. Executar esta etapa para bloquear os locais de reaco na ONU e para reduzir a adsorção não específica da proteína em um disco. </li><li> Lavar duas vezes com 0,1% de BSA-PBS através de enchimento e as câmaras de aspiração utilizando uma micropipeta. NOTA: Nesta fase, o disco pode ser armazenado a 4 ° C até à sua utilização. </li><li> Carga de 10 mL de sangue total cravado-antigénio ou soro livre de PCR para a detecção de CRP no disco usando um micropipette. Para fazer as curvas de calibração, usar concentrações de PCR a partir de 1 pg / ml a 100 ng / ml; e TIc a partir de 10 pg / ml a 100 ng / ml. NOTA: Devido aos níveis mais elevados de PCR no sangue total, que é geralmente na gama uM, soro livre de PCR foi utilizado para demonstrar o limite inferior de detecção do dispositivo. </li><li> Girar o disco a 3.600 rpm (391 xg) durante 60 segundos para separar as células vermelhas do sangue. </li><li> Abrir a válvula de # 1 a irradiação por laser, e a transferência de 4 ul do sobrenadante de plasma para a câmara que contém 8 ul de detecção de anticorpos conjugados com HRP pelo girar o disco a 2.400 rpm durante 3 seg. NOTA:. Os processos gerais para a actuação da válvula e visualização de utilização de discos estão descritos em detalhe em um relatório anterior 21 </li><li> Aplicar um modo de mistura (15 Hz s -1, 15 ° C) durante 5 seg para a ligação dos anticorpos de proteína e detecção. </li><li> Abrir a válvula # 2, e transferir a mistura preparada no passo 6 para a câmara de reacção de ligação (2400 rpm, Três segundos). Em seguida, aplicar um modo de mistura (60 Hz s -1, 2 ° C) durante 20 min para conseguir uma imunorreacção entre a mistura e a anticorpos que se ligam sobre os TiO 2 FN. Após a reacção, a válvula aberta # 3 e transferir a mistura residual para a câmara de resíduo (2.400 rpm, 10 segundos). </li><li> Transferir o tampão de lavagem (600 ul) para a câmara de reacção de ligação através da abertura de válvula de saída 4 e girando o disco (2400 rpm, 4 segundos). Em seguida, aplicar um modo de mistura (30 Hz s -1, 30 °), durante 120 segundos para lavar os TiO2 NFs na câmara. </li><li> Lave as TiO 2 FN mais duas vezes, seguindo mesma condição do passo 3.8, e remova o tampão de lavagem residual completamente girando o disco a 2.400 rpm por 20 s. Em seguida, fechar a válvula # 5. </li><li> Para a reacção quimioluminescente, aplicar um modo de mistura (30 Hz s -1, 2 ° C) durante 1 minuto após a transferência da solução de substrato quimioluminescente para a câmara de reacção de ligação através da abertura de válvula # 6 e fiaçãoo disco a 2.400 rpm durante 10 segundos, subsequentemente. </li><li> Transferir a solução de substrato reagido para as câmaras de detecção através da abertura da válvula 7 e girar o disco a 2.400 rpm durante 10 seg. </li><li> Medir os sinais de quimioluminescência da solução de substrato reagido utilizando um tubo fotomultiplicador (PMT) módulo de sistema de detecção equipada. NOTA: O sistema de detecção é uma máquina de costume construído utilizando os seguintes componentes: motor de etapa, componentes optomechanical, estágios de tradução e PMT disponível no mercado. As partes e optomechanical motor passo a passo são montados para conter o dispositivo, e o motor pode girar o disco. A detecção é realizada por PMT fixos nas partes optomechanical, e que está localizada acima das câmaras de detecção do dispositivo. Ao manipular o motor de passo, as câmaras de detecção estão alinhadas logo abaixo da zona de detecção de PMT. </li></ol>

<ol><li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomaterials+for+Ultrasensitive+Protein+Detection%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Nanomaterials for Ultrasensitive Protein Detection.</a> Adv. Mater. 25 (28), 3802-3819 (2013).</li>
<li>Hu, W., Li, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomaterial-based+advanced+immunoassays%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip.+Rev.+Nanomed.+Nanobiotechnol%22%5BJournal%5D)">Nanomaterial-based advanced immunoassays.</a> Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 3 (2), 119-133 (2011).</li>
<li>Yang-Kyu, C., Chang-Hoon, K. Silicon Nanowire Biosensor for Cancer Markers. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYang-Kyu%2C+C+%22Biosensors+and+Cancer%22">Biosensors and Cancer</a>. , Science Publishers. 164-183 (2012).</li>
<li>Baltazar, R., Vistas, C. R., Ferreira, G. M. Biosensing Applications Using Nanoparticles. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBaltazar%2C+R+%22Nanocomposite+Particles+for+Bio-Applications%22">Nanocomposite Particles for Bio-Applications</a>. , Pan Stanford Publishing. 265-282 (2011).</li>
<li>Roy, P., Berger, S., Schmuki, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TiO2+Nanotubes%3A+Synthesis+and+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Angew.+Chem.+Int.+Ed%22%5BJournal%5D)">TiO2 Nanotubes: Synthesis and Applications.</a> Angew. Chem. Int. Ed. 50 (13), 2904-2939 (2011).</li>
<li>Yang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+Nanofibrous+Membranes%3A+A+Novel+Solid+Substrate+for+Microfluidic+Immunoassays+for+HIV%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Electrospun Nanofibrous Membranes: A Novel Solid Substrate for Microfluidic Immunoassays for HIV.</a> Adv. Mater. 20 (24), 4770-4775 (2008).</li>
<li>Chantasirichot, S., Ishihara, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+phospholipid+polymer+substrate+for+enhanced+performance+in+immunoassay+system%5BTitle%5D)+AND+%22Biosens.+Bioelectron%22%5BJournal%5D)">Electrospun phospholipid polymer substrate for enhanced performance in immunoassay system.</a> Biosens. Bioelectron. 38 (1), 209-214 (2012).</li>
<li>Zhang, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+TiO2+Nanofiber-Based+Cell+Capture+Assay+for+Detecting+Circulating+Tumor+Cells+from+Colorectal+and+Gastric+Cancer+Patients%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Electrospun TiO2 Nanofiber-Based Cell Capture Assay for Detecting Circulating Tumor Cells from Colorectal and Gastric Cancer Patients.</a> Adv. Mater. 24 (20), 2756-2760 (2012).</li>
<li>Ali, M. A., Mondal, K., Singh, C., Dhar Malhotra, B., Sharma, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anti-epidermal+growth+factor+receptor+conjugated+mesoporous+zinc+oxide+nanofibers+for+breast+cancer+diagnostics%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Anti-epidermal growth factor receptor conjugated mesoporous zinc oxide nanofibers for breast cancer diagnostics.</a> Nanoscale. 7 (16), 7234-7245 (2015).</li>
<li>Mondal, K., Ali, M. A., Agrawal, V. V., Malhotra, B. D., Sharma, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+Sensitive+Biofunctionalized+Mesoporous+Electrospun+TiO2+Nanofiber+Based+Interface+for+Biosensing%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl.+Mater.+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Highly Sensitive Biofunctionalized Mesoporous Electrospun TiO2 Nanofiber Based Interface for Biosensing.</a> ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (4), 2516-2527 (2014).</li>
<li>Tu, W., Dong, Y., Lei, J., Ju, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-Potential+Photoelectrochemical+Biosensing+Using+Porphyrin-Functionalized+TiO2+Nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Low-Potential Photoelectrochemical Biosensing Using Porphyrin-Functionalized TiO2 Nanoparticles.</a> Anal. Chem. 82 (20), 8711-8716 (2010).</li>
<li>Liu, S., Chen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coadsorption+of+Horseradish+Peroxidase+with+Thionine+on+TiO2+Nanotubes+for+Biosensing%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Coadsorption of Horseradish Peroxidase with Thionine on TiO2 Nanotubes for Biosensing.</a> Langmuir. 21 (18), 8409-8413 (2005).</li>
<li>Portan, D. V., Kroustalli, A. A., Deligianni, D. D., Papanicolaou, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+biocompatibility+between+TiO2+nanotubes+layer+and+human+osteoblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J.Biomed.Mater.Res.+Part+A%22%5BJournal%5D)">On the biocompatibility between TiO2 nanotubes layer and human osteoblasts.</a> J.Biomed.Mater.Res. Part A. 100 (10), 2546-2553 (2012).</li>
<li>Dettin, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Covalent+surface+modification+of+titanium+oxide+with+different+adhesive+peptides%3A+Surface+characterization+and+osteoblast-like+cell+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Covalent surface modification of titanium oxide with different adhesive peptides: Surface characterization and osteoblast-like cell adhesion.</a> J. Biomed. Mater. Res. Part A. 90 (1), 35-45 (2009).</li>
<li>Kim, W. -J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+Protein+Immobilization+Efficiency+on+a+TiO2+Surface+Modified+with+a+Hydroxyl+Functional+Group%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Enhanced Protein Immobilization Efficiency on a TiO2 Surface Modified with a Hydroxyl Functional Group.</a> Langmuir. 25 (19), 11692-11697 (2009).</li>
<li>Son, K. J., Ahn, S. H., Kim, J. H., Koh, W. -G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graft+Copolymer-Templated+Mesoporous+TiO2+Films+Micropatterned+with+Poly%28ethylene+glycol%29+Hydrogel%3A+Novel+Platform+for+Highly+Sensitive+Protein+Microarrays%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl.+Mater.+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Graft Copolymer-Templated Mesoporous TiO2 Films Micropatterned with Poly(ethylene glycol) Hydrogel: Novel Platform for Highly Sensitive Protein Microarrays.</a> ACS Appl. Mater. Interfaces. 3 (2), 573-581 (2011).</li>
<li>Kar, P., Pandey, A., Greer, J. J., Shankar, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrahigh+sensitivity+assays+for+human+cardiac+troponin+I+using+TiO2+nanotube+arrays%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Ultrahigh sensitivity assays for human cardiac troponin I using TiO2 nanotube arrays.</a> Lab Chip. 12 (4), 821-828 (2012).</li>
<li>Agarwal, S., Wendorff, J. H., Greiner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+electrospinning+technique+for+biomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Polymer%22%5BJournal%5D)">Use of electrospinning technique for biomedical applications.</a> Polymer. 49 (26), 5603-5621 (2008).</li>
<li>Ding, B., Wang, M., Wang, X., Yu, J., Sun, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+nanomaterials+for+ultrasensitive+sensors%5BTitle%5D)+AND+%22Mater.+Today%22%5BJournal%5D)">Electrospun nanomaterials for ultrasensitive sensors.</a> Mater. Today. 13 (11), 16-27 (2010).</li>
<li>Liu, Y., Yang, D., Yu, T., Jiang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incorporation+of+electrospun+nanofibrous+PVDF+membranes+into+a+microfluidic+chip+assembled+by+PDMS+and+scotch+tape+for+immunoassays%5BTitle%5D)+AND+%22ELECTROPHORESIS%22%5BJournal%5D)">Incorporation of electrospun nanofibrous PVDF membranes into a microfluidic chip assembled by PDMS and scotch tape for immunoassays.</a> ELECTROPHORESIS. 30 (18), 3269-3275 (2009).</li>
<li>Lee, W. S., Sunkara, V., Han, J. -R., Park, Y. -S., Cho, Y. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+TiO2+nanofiber+integrated+lab-on-a-disc+for+ultrasensitive+protein+detection+from+whole+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Electrospun TiO2 nanofiber integrated lab-on-a-disc for ultrasensitive protein detection from whole blood.</a> Lab Chip. 15 (2), 478-485 (2015).</li>
<li>Li, D., Xia, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+Titania+Nanofibers+by+Electrospinning%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Fabrication of Titania Nanofibers by Electrospinning.</a> Nano Lett. 3 (4), 555-560 (2003).</li>
<li>Lombard, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLombard%2C+M+%22SolidWorks+2013+BIBLE%22">SolidWorks 2013 BIBLE</a>. , John Wiley & Sons Inc. Indianapolis, IN. (2013).</li>
<li>Tickoo, S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTickoo%2C+S+%22EdgeCAM+11.0+for+Manufacturers%22">EdgeCAM 11.0 for Manufacturers</a>. , CADCIM Technologies. Schererville, IN. (2007).</li>
<li>Zhu, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+adhesion+of+interconnected+TiO2+nanofiber+network+on+conductive+substrate+and+its+application+in+polymer+photovoltaic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Lett%22%5BJournal%5D)">Improved adhesion of interconnected TiO2 nanofiber network on conductive substrate and its application in polymer photovoltaic devices.</a> Appl. Phys. Lett. 93 (1), 013102(2008).</li>
<li>Song, M. Y., Ahn, Y. R., Jo, S. M., Kim, D. Y., Ahn, J. -P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TiO2+single-crystalline+nanorod+electrode+for+quasi-solid-state+dye-sensitized+solar+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Lett%22%5BJournal%5D)">TiO2 single-crystalline nanorod electrode for quasi-solid-state dye-sensitized solar cells.</a> Appl. Phys. Lett. 87 (11), 113113(2005).</li>
<li>Katsuhiro, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospinning+processed+nanofibrous+TiO2+membranes+for+photovoltaic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Electrospinning processed nanofibrous TiO2 membranes for photovoltaic applications.</a> Nanotechnology. 17 (4), 1026-1031 (2006).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O ensaio em TiO 2 NF disco integrada é uma técnica rápida, barata e conveniente para a detecção ultra-sensível de baixas proteínas abundantes presentes em muito baixo volume de sangue. Esta técnica tem a vantagem da utilização de pequenos volumes de amostra (10 ul) e é receptivo para a análise de múltiplas amostras em simultâneo. Isto proporciona um grande potencial como um dispositivo de multiplexação de imunoensaio. O dispositivo tem a vantagem adicional de que ele não requer passos de pré-tratamento da amo...

Várias plataformas para o diagnóstico da doença foram desenvolvidos com base em materiais em nanoescala 1,2 tais como nanofios, 3 nanopartículas, nanotubos de 4, 5 e nanofibras (NFS) 6-8. Estes nanomateriais oferecem excelentes perspectivas na concepção de novas tecnologias para bioensaios altamente sensíveis devido às suas propriedades físico-químicas únicas. Por exemplo, nanofibras de óxido de zinco mesoporosa têm sido utilizados para a detecção sensível de femto-molar de biomarcadores de cancro da mama. 9 Recentemente, os nanomateriais à base de dióxido de titânio (TiO 2) têm sido exploradas para aplicações bioanaliticas 10 considerando-se a sua estabilidade química, 11 desnaturação de proteínas negligenciável , 12 e biocompatibilidade. 13 Além disso, os grupos hidroxilo na superfície de TiO2 facilitar a modificação química e a ligação covalente de biomoléculas. modelado 14,15 TiO 2 thin películas 16 ou 17 TiO 2 nanotubos têm sido utilizados para aumentar a sensibilidade de detecção de uma proteína-alvo, aumentando a área de superfície; No entanto, o processo de fabricação é bastante complexo e requer um equipamento caro. Por outro lado, as FN electrospun estão a receber atenção devido à sua elevada área de superfície, bem como processo de fabrico simples e de baixo custo; 18,19 ainda, a característica frágil ou solto da esteira electrospun TiO 2 NF torna difícil de manusear e integrar com dispositivos microfluídicos. 6,20 Portanto, os TiO 2 esteiras NF raramente foram utilizados em aplicações bioanalíticos, particularmente aquelas que requerem condições de lavagem agressivos. Neste estudo, para ultrapassar estas limitações, desenvolvemos uma nova tecnologia para a transferência do electrospun NF esteiras sobre a superfície de qualquer substrato alvo, utilizando uma camada de adesivo fina polidimetilsiloxano (PDMS). Furthermore, que demonstraram com sucesso a integração de electrospun TiO 2 NF esteiras para um dispositivo de microfluidos centrífuga de policarbonato (PC). Usando este dispositivo, uma detecção sensível de alta, totalmente automatizada e integrada de proteína C-reactiva (CRP), bem como a troponina I cardíaca (TIc) foi alcançada em 30 min a partir de apenas 10 ul de sangue total. 21 Devido ao combinado vantagens das propriedades da FN e a plataforma de centrífuga, o ensaio apresentava uma vasta gama dinâmica de seis ordens de grandeza a partir de 1 pg / ml (~ 8 fm) a 100 ng / ml (~ 0,8 pM) com um limite de detecção inferior de 0,8 pg / ml (~ 6 fm) para PCR e uma faixa dinâmica de 10 pg / ml (~ 0,4 pM) e 100 ng / ml (~ 4 nM) com um limite de detecção de 37 pg / ml (~ 1,5 pM) para cTnI. Estes limites de detecção são ~ 300 e ~ 20 vezes mais baixa em comparação com os seus correspondentes resultados de ELISA convencionais. Esta técnica pode ser aplicada para a detecção de quaisquer proteínas alvo, com anticorpos apropriados. No geral, este co dispositivould contribuir grandemente para diagnóstico in-vitro e ensaios bioquímicos uma vez que pode detectar quantidades raros de proteínas-alvo com grande sensibilidade mesmo a partir de quantidades muito pequenas de amostras biológicas, por exemplo, 10 ml de sangue total. Embora apenas se demonstrou a detecção de proteína de soro utilizando ELISA no presente estudo, a tecnologia de transferência e integração de electrospun FN com dispositivos de microfluidos pode ser mais amplamente aplicado em outras reacções bioquímicas que requerem uma grande área de superfície para detecção de alta sensibilidade.

<table><tbody><tr><td>Bolacha de si</td><td>LG SILTRON</td><td>Polished Wafer, grau de teste</td><td>Diâmetro (mm) = 150, orientação = < 100>, dopante = boro, RES(Ohm-cm) = 1 - 30, espessura (&mu; m) = 650 - 700</td></tr><tr><td>Policarbonato (PC)&nbsp;</td><td>Daedong Plastic</td><td>PCS#6900</td><td>Espessura (mm) = 1 e 5&nbsp;</td></tr><tr><td>Tetraisopropóxido de titânio, 98%,</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>205273</td><td></td></tr><tr><td>Polivinilpirrolidona, Mw = 1.300.000</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>437190</td><td></td></tr><tr><td>Ácido acético</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320099</td><td></td></tr><tr><td>Etanol anidro</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459836</td><td></td></tr><tr><td>Tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahidrooctil)-1-triclorosilano</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>448931</td><td></td></tr><tr><td>PDMS e agente de cura</td><td>Dow Corning</td><td>SYLGARD 184</td><td></td></tr><tr><td>GPDES</td><td>Gelest Inc</td><td>SIG5832.0&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>J T Baker</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FE-SEM</td><td>FEI</td><td>Nova NanoSEM</td><td></td></tr><tr><td>Espectroscopia de fotoelétrons de raios-X</td><td>ThermoFisher</td><td>K-alpha</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de modelagem 3D</td><td>M & I CNC Lab, Coreia</td><td></td><td>Fresadora CNC</td></tr><tr><td>Máquina de distribuição de cera</td><td>Hanra Precision Eng. Co. Ltd., Coreia</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fita adesiva dupla face</td> personalizada <td>FLEXcon, EUA</td><td>DFM 200 transparente 150 POLY H-9 V-95</td><td></td></tr><tr><td>Plotter de corte</td><td>Graphtec Corporation, Japão</td><td>Graphtec CE3000-60 MK2</td><td></td></tr><tr><td>Revestidor giratório</td><td>MIDAS</td><td>SPIN-3000D</td><td></td></tr><tr><td>Forno (calcinação)</td><td>R. D. WEBB COMPANY</td><td>WEBB 99</td><td></td></tr><tr><td>Reômetro (Teste de aderência)</td><td>Thermo Scientific</td><td>Haake MARS&nbsp; III - Pacote</td><td></td>ORM</tr><tr><td>Sistema de plasma de oxigênio</td><td>FEMTO</td><td>CUTE</td><td></td></tr><tr><td>Camundongo monoclonal anti-humano hsCRP</td><td>Hytest Ltd., Finlândia</td><td>4C28</td>(<td>clone # C5)</td></tr><tr><td>Rato monoclonal anti-cTnI</td><td>Hytest Ltd., Finlândia</td><td>4T21</td><td>(clone # 19C7)</td></tr><tr><td>HRP cabra conjugada policlonal anti-hsCRP</td><td>Abcam plc., MA</td><td>ab19175</td><td></td></tr><tr><td>HRP camundongo conjugado monoclonal anti-cTnI</td><td>Abcam plc., MA</td><td>ab24460</td> <td>(clone # 16A11)</td></tr> <tr><td>hsCRP</td><td>Abcam plc., MA</td><td>ab111647</td><td></td></tr><tr><td>cTnI</td><td>Fitzgerald, MA</td><td>30-AT43</td><td></td></tr><tr><td>Albumina bovina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Amresco Inc</td><td>E404</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de coleta de sangue</td><td>BD vacutainer</td><td>367844</td><td>K2 EDTA 7,2 mg mais tubos de coleta de sangue </td></tr><tr><td>SuperSignal ELISA femto</td><td>Invitrogen</td><td>37074</td><td></td></tr><tr><td>Leitor modular de placas multietiquetas</td><td>Perkin Elmer</td><td>Envision 2104</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de operação de disco</td><td>Hanra Precision Eng. Co. Ltd., Coréia</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubo fotomultiplicador personalizado (PMT)</td><td>Hamamatsu Photonics</td><td>H1189-210</td><td></td></tr><tr><td>AutoCAD</td><td>AutoDesk</td><td>Versão 2012</td><td>Software de design</td></tr><tr><td>SolidWorks 3D CAD software&nbsp;</td><td>SOLIDWORKS Corp.</td><td>Versão 2013</td><td>Software de design 3D,</td></tr> <tr>software <td>Edgecam</td><td>Vero</td><td>versão 2009.01.06928</td><td>Software de geração de código</td></tr><tr><td>DeskCNC</td><td>Carken Co.</td><td>versão 2.0.2.18</td><td>Software da fresadora CNC</td></tr></tbody></table>

totalmente dispositivo automático centrífugo microfluídicos para a detecção de proteínas ultrasensitive de sangue total

Fully Automated Centrifugal Microfluidic Device for Ultrasensitive Protein Detection from Whole Blood

O ensaio de imunoabsorção enzimática (ELISA) é um método promissor para detectar pequenas quantidades de proteínas em amostras biológicas. Os dispositivos que fornecem uma plataforma para reduzir o volume de amostra e o tempo de ensaio, bem como a automação completa, são necessários para uso potencial em diagnósticos no local de atendimento. Recentemente, demonstramos a detecção ultrassensível de proteínas séricas, proteína C reativa (PCR) e troponina cardíaca I (cTnI), utilizando um lab-on-a-disc composto por tapetes nanofibrosos (NF) de TiO2. Ele mostrou uma grande faixa dinâmica com sensibilidade de detecção femto molar (fM), a partir de um pequeno volume de sangue total em 30 min. O dispositivo consiste em vários componentes para separação de sangue, medição, mistura e lavagem que são automatizados para melhorar a sensibilidade de baixos volumes de amostra. Aqui, na demonstração em vídeo, mostramos os protocolos experimentais e know-how para a fabricação de NFs, bem como o disco, sua integração e o funcionamento na seguinte ordem: processos de preparação da esteira de TiO2 NF; impressão por transferência da esteira de TiO2 NF no disco; modificação de superfície para reações imunológicas, montagem e operação de discos; detecção no disco e resultados representativos para imunoensaio. O uso deste dispositivo permite a análise multiplexada com consumo mínimo de amostras e reagentes. Dadas as vantagens, o dispositivo deve ser usado em uma ampla variedade de aplicações e ser benéfico para facilitar a análise de proteínas pouco abundantes.

Usando este protocolo, um dispositivo de microfluidos centrífuga totalmente automatizado para a detecção de proteína a partir de sangue inteiro com elevada sensibilidade foi preparado. As esteiras de TiO 2 NF foram preparados por processos de electrospinning e calcinação. A fim de fabricar o diâmetro desejado de FN, morfologia, e sua espessura, electrospinning condições tais como a taxa de fluxo, tensão, e o tempo de fiação foram optimizados. Quando as condições não foram opti...

Este protocolo demonstra como atingir a sensibilidade de detecção femto molar de proteínas em 10 μL de sangue total em 30 min. Isso pode ser alcançado usando esteiras nanofibrosas eletrofiadas integradas em um lab-on-a-disc, que oferece alta área de superfície, bem como mistura e lavagem eficazes para melhorar a relação sinal-ruído.

Totalmente dispositivo automático centrífugo microfluídicos para a detecção de proteínas Ultrasensitive de Sangue Total

Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is a promising method to detect small amount of proteins in biological samples. The devices providing a platform ...

O objetivo geral deste procedimento é melhorar a sensibilidade de detecção de ELISA usando nanofibras fiadas naturais. Este vídeo demonstra como obter a sensibilidade de detecção femtomolar de proteínas em 10 microlitros de amostras de sangue total em 30 minutos. Em uma plataforma lab-on-a-disc, a força centrífuga é usada para transferir o líquido através das câmaras, e o processo total é totalmente automatizado.A sensibilidade de detecção pode ser altamente aprimorada pela integração de nanofibras. No entanto, o problema era que a nanofibra é muito frágil e difícil de manusear. Neste vídeo, apresentamos um processo simples para anexar tapetes de nanofibra de dióxido de titânio frágeis em um disco de plástico.Para fabricar tapetes de nanofibra de dióxido de titânio em substrato de silicone por eletrofiação, o substrato de silicone é primeiro silanizado, revestido com PDMS e pré-curado. Um tapete de nanofibra é então transferido para este PDMS pré-moldado e este produto é perfurado para produzir uma peça circular para fixação. Cubra a câmara de reação com uma gota de PDMS como adesivo e prenda a peça circular no fundo da câmara.Em seguida, catalise o PDMS no forno. Por fim, monte as camadas do disco em um dispositivo completo para ELISA. Esta técnica de transferência de nanofibras nos permite utilizar a alta área de superfície das nanofibras para bioanálise.O dispositivo microfilítico centrífugo oferece a integração e automação total de todo o processo necessário no ELISA. A principal vantagem dessa técnica sobre outros métodos existentes é que ela pode detectar concentrações femtomolares de proteínas de apenas 10 microlitros de sangue total. Preparar as soluções precursoras conforme descrito no protocolo de ensaio que acompanha a presente comunicação.Em seguida, carregue a solução no eletrospinner e fabrique as nanofibras por eletrofiação, usando as condições ideais. Quando as esteiras de nanofibra de polímero forem preparadas, calcine-as em um forno sob vácuo. Após a calcinação, os tapetes de nanofibra de dióxido de titânio são finalmente preparados.Prepare o layout microfilítico usando um software de projeto 3D, como o SOLIDWORKS, e transfira o projeto para a fresadora CNC. Opere a fresadora CNC para fabricar o disco com canais e câmaras. O disco e o tapete de nanofibra agora estão prontos para serem integrados.Prepare uma câmara de vácuo, substrato de silicone e fluorosilano. Silanize o substrato de silicone com fluorosilano sob vácuo por 30 minutos. Prepare o PDMS convidado preparando o pré-polímero com um agente de cura na proporção de 10 para um e gire a camada sobre o substrato de silicone silanizado a 650 RPM por 60 segundos.Catalise o PDMS revestido com o wafer silanizado a 65 graus Celsius por 10 minutos para torná-lo adesivo. Agora transfira esses tapetes de nanofibra para o silicone revestido com PDMS, aplicando a pressão apropriada usando um objeto plano, como uma lâmina de vidro. Asse a amostra a 80 graus Celsius por uma hora para curar completamente o adesivo PDMS.Dispense algumas gotas de etanol nas esteiras de nanofibra presas na camada PDMS e faça um furo de seis milímetros de diâmetro usando um PunchIt. Em seguida, retire os tapetes de nanofibra perfurados presos no PDMS do substrato de silicone. Em seguida, cubra a câmara de reação de ligação no disco com cerca de 20 microlitros de mistura de PDMS e coloque as nanofibras presas no PDMS nas câmaras.Em seguida, incube o disco integrado de nanofibra a 80 graus Celsius por uma hora. Preparar 1% de volume por volume de solução de GPDES em etanol. Em seguida, trate as nanofibras do disco com plasma de oxigênio.Dispense 100 microlitros de solução GPDES em cada tapete de nanofibra e incube em temperatura ambiente por duas horas em um recipiente lacrado. Após a incubação, remova a solução GPDES batendo no disco em um limpador. Lave com etanol, retire e leve ao forno a 80 graus Celsius por uma hora.Após o cozimento, lave com etanol e bata para remover. Repita este processo e seque com um jato de nitrogênio. Para imobilização de anticorpos, dispense a solução diluída de anticorpos capturados.Mantenha os discos em uma câmara umidificada e incube a 37 graus por quatro horas. Lave a solução restante com tampão de lavagem. Agora, monte o disco usando uma fita adesiva dupla face.Aplique uma pressão razoável para montar as camadas em um disco completo. Encha as câmaras de reação de ligação com tampão de bloqueio e incube a 37 graus Celsius por uma hora. Lave duas vezes com tampão de lavagem e guarde o disco a 40 graus Celsius até o uso.Carregar os reagentes, os tampões de lavagem e 10 microlitros de sangue total nas câmaras de reagentes e amostras. Coloque o disco em uma máquina de visualização personalizada para imunoensaio automatizado. O sistema de visualização contém um rotor conectado a um computador para operação automatizada do disco, juntamente com uma luz estroboscópica e uma câmera CCD para tirar imagens.Gire o disco a 3.600 RPM por 60 segundos para separar os glóbulos vermelhos. Misture o plasma com os anticorpos de detecção. Transfira a mistura para a câmara de reação integrada com tapete de nanofibra de dióxido de titânio.Após a imunorreação, lave as nanofibras transferindo o tampão de lavagem para a câmara de reação. Em seguida, transfira a solução de substrato quimioluminescente para a câmara de reação de ligação e incube em modo de mistura por um minuto. Por fim, transferir a solução de substrato reagida para a câmara de detecção.Quando toda a reação terminar, transfira o disco para um sistema de detecção e leia o sinal quimioluminescente usando um software personalizado. A operação do disco e o sistema de detecção podem ser integrados em uma única plataforma. Ao otimizar a voltagem e o fluorato, foram obtidos tapetes de nanofibras uniformes, conforme mostrado nesta imagem de MEV.Para otimizar o tempo de cura do PDMS, a força de adesão foi medida. Se fosse muito curto, o tapete de nanofibra era embutido no PDMS ou descascado se fosse muito longo. Após a otimização, o tapete de nanofibra foi fixado de forma estável no PDMS.A faixa linear para detecção de proteína C-reativa a partir de duas plataformas é mostrada neste gráfico. Usando o laboratório de integridade de nanofibras no disco, conseguimos obter uma sensibilidade de detecção altamente aprimorada da proteína C-reativa de apenas 10 microlitros de soro em 30 minutos. As tecnologias atualmente disponíveis, como o ELISA baseado em placas de 96 poços, exigem um volume de amostra maior e um tempo de detecção mais longo.No geral, o ELISA baseado em disco integrado de nanofibra mostrou uma ampla faixa dinâmica de seis ordens de magnitude com um limite de detecção de seis femtomol de proteína C reativa. Essa sensibilidade de detecção auxiliada pela alta área de superfície fornecida pela nanofibra integrada no disco excedeu a do ELISA convencional, que foi limitada a 2.000 femtomoles. Depois de assistir a este vídeo, esperamos que você tenha uma boa compreensão de como preparar o dispositivo microfilítico centrífugo, como integrar nanofibras fasais e como realizar a detecção de proteínas usando ELISA.Esta técnica pode ser útil para detectar proteínas de baixa ligação em uma quantidade muito pequena de amostras biológicas.

fully-automated-centrifugal-microfluidic-device-for-ultrasensitive

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

A microfluídica Digital é uma técnica caracterizada pela manipulação de gotículas discretas (~ nL - mL) em uma matriz de eletrodos pela aplicação de campos elétricos. É bem adequado para a realização rápida, seqüencial, miniaturizados automatizado ensaios bioquímicos. Aqui, nós relatamos uma plataforma capaz de automatizar várias etapas de processamento proteômica.

A microfluídica digital para processamento automatizado Proteômica

Um dispositivo automático microfluídicos foi desenvolvido para a circulação de enriquecimento de células nucleadas do sangue periférico, através de lise de eritrócitos que garante o isolamento de amostras de alta qualidade sem perda de células.

Protocolo de Lise automatizado microfluídicos de sangue para Enriquecimento de células nucleadas circulantes

Este vídeo demonstra um protocolo de imunoensaio de eletroforese capilar para detectar um biomarcador proteico associado à esclerose lateral amiotrófica (ELA) de plaquetas sanguíneas humanas. A confirmação da presença da proteína biomarcadora ALS é obtida por meio da separação baseada no tamanho das proteínas plaquetárias, seguida pela detecção quimioluminescente.

Um imunoensaio de eletroforese capilar para detecção de biomarcadores de proteínas

Este vídeo demonstra um sistema microfluídico para um imunoensaio baseado em nanopartículas magnéticas. O sistema de detecção utiliza um dispositivo microfluídico que incorpora uma armadilha magnética em seus canais. Imunocomplexos pré-formados, compostos por nanopartículas magnéticas revestidas com antígeno ligadas a anticorpos primários e secundários conjugados com peroxidase, são introduzidos nos canais. Os imunocomplexos são capturados na armadilha magnética porosa após a aplicação de um...

Um imunoensaio baseado em nanopartículas magnéticas usando um dispositivo microfluídico

Neste artigo apresentamos um chip microfluídico para análise única célula. Ele permite a quantificação de proteínas intracelulares, enzimas, co-factores, e os segundos mensageiros, por meio de ensaios fluorescentes ou imunoensaios.

Um chip microfluídico para a Versátil Análise Química de células individuais

Este protocolo detalha um ensaio concebido para medir a quimiotaxia de neutrófilos humanos a partir de uma gota de sangue total com reprodutibilidade robusta. Esta abordagem evita a necessidade de separação de neutrófilos e requer apenas alguns minutos de ensaio tempo de preparação. O chip de microfluídica permite a medida repetida de quimiotaxia de neutrófilos ao longo do tempo em crianças ou pequenos mamíferos, onde o volume da amostra é limitado.

Plataforma microfluídica para medição de quimiotaxia de neutrófilos não transformados Sangue Total

Este protocolo descreve uma arquitetura de sistema para realizar separações automatizadas de partículas de pequeno volume (0,15–1,5 ml) usando um dispositivo microfluídico e discute métodos para otimizar o desempenho e a operação do dispositivo acustofluídico.

Uma plataforma microfluídica para processamento de precisão de pequeno volume de amostra e respectiva utilização para Tamanho partículas biológicas separadas com um microdispositivos Acústico

Aqui, demonstramos um método de produção simples para microgotículas de água em óleo (A/S) monodispersas e controláveis por tamanho usando um dispositivo microfluídico centrífugo baseado em capilares. Este método requer apenas um pequeno volume de amostra e permite uma produção de alto rendimento. Esperamos que este método seja útil para análises bioquímicas e celulares rápidas.

Dispositivo micro centrífuga baseada capilar para a Formação tamanho controlável de Monodisperse microgotas

Uma plataforma de biosensor microfluidic foi projetada e fabricado usando a tecnologia de fotorresiste de película seca de baixo custo para a quantificação rápida e sensível de vários analitos. Este sistema de uso único permite a leitura eletroquímica de ensaios de enzima-lig na-microplaqueta-imobilizado mediante a técnica de stop-fluxo.

Película seca baseada em fotorresiste eletroquímica Microfluidic Biosensor plataforma: Fabricação de dispositivo, ensaio em-microplaqueta preparação e operação de sistema

Microfluido digital à base de eletrowetting é uma técnica que utiliza uma mudança impulsionada por tensão no ângulo de contato aparente de uma gotícula de volume de microlitros para facilitar sua manipulação. Combinar isso com contas magnéticas funcionais permite a integração de múltiplas operações de unidades laboratoriais para preparação e identificação de patógenos usando Oensaio Imunosorbent ligado à enzima (ELISA).

Plataforma de Microfluidos Digitais baseada em eletrowetting para ensaio imunosorbent automatizado ligado à enzima

A microfluídica é uma ferramenta poderosa para o desenvolvimento de testes de diagnóstico. No entanto, equipamentos e materiais caros, bem como técnicas de fabricação e manuseio trabalhosas, são frequentemente necessários. Aqui, detalhamos o protocolo de fabricação de um dispositivo microfluídico acrílico para imunoensaios magnéticos baseados em micro e nanopartículas em um ambiente de baixo custo e simples de usar.

Microfresagem de Controle Numérico Computacional de um Dispositivo Acrílico Microfluídico com uma Restrição Escalonada para Imunoensaios Magnéticos Baseados em Nanoppartículas

Aprenda a detectar proteínas com sensibilidade femtomolar em amostras de sangue total usando nanofibras de dióxido de titânio em plataforma lab-on-a-disc totalmente automatizada. Este método de ELISA integrado oferece análise rápida e precisa para diagnósticos avançados.

Totalmente dispositivo automático centrífugo microfluídicos para a detecção de proteínas Ultrasensitive de Sangue Total

Explorar mais vídeos