16 de abril de 2016
Este protocolo demonstra como atingir a sensibilidade de detecção femto molar de proteínas em 10 μL de sangue total em 30 min. Isso pode ser alcançado usando esteiras nanofibrosas eletrofiadas integradas em um lab-on-a-disc, que oferece alta área de superfície, bem como mistura e lavagem eficazes para melhorar a relação sinal-ruído.
O objetivo geral deste procedimento é melhorar a sensibilidade de detecção de ELISA usando nanofibras fiadas naturais. Este vídeo demonstra como obter a sensibilidade de detecção femtomolar de proteínas em 10 microlitros de amostras de sangue total em 30 minutos. Em uma plataforma lab-on-a-disc, a força centrífuga é usada para transferir o líquido através das câmaras, e o processo total é totalmente automatizado.
A sensibilidade de detecção pode ser altamente aprimorada pela integração de nanofibras. No entanto, o problema era que a nanofibra é muito frágil e difícil de manusear. Neste vídeo, apresentamos um processo simples para anexar tapetes de nanofibra de dióxido de titânio frágeis em um disco de plástico.
Para fabricar tapetes de nanofibra de dióxido de titânio em substrato de silicone por eletrofiação, o substrato de silicone é primeiro silanizado, revestido com PDMS e pré-curado. Um tapete de nanofibra é então transferido para este PDMS pré-moldado e este produto é perfurado para produzir uma peça circular para fixação. Cubra a câmara de reação com uma gota de PDMS como adesivo e prenda a peça circular no fundo da câmara.
Em seguida, catalise o PDMS no forno. Por fim, monte as camadas do disco em um dispositivo completo para ELISA. Esta técnica de transferência de nanofibras nos permite utilizar a alta área de superfície das nanofibras para bioanálise.
O dispositivo microfilítico centrífugo oferece a integração e automação total de todo o processo necessário no ELISA. A principal vantagem dessa técnica sobre outros métodos existentes é que ela pode detectar concentrações femtomolares de proteínas de apenas 10 microlitros de sangue total. Preparar as soluções precursoras conforme descrito no protocolo de ensaio que acompanha a presente comunicação.
Em seguida, carregue a solução no eletrospinner e fabrique as nanofibras por eletrofiação, usando as condições ideais. Quando as esteiras de nanofibra de polímero forem preparadas, calcine-as em um forno sob vácuo. Após a calcinação, os tapetes de nanofibra de dióxido de titânio são finalmente preparados.
Prepare o layout microfilítico usando um software de projeto 3D, como o SOLIDWORKS, e transfira o projeto para a fresadora CNC. Opere a fresadora CNC para fabricar o disco com canais e câmaras. O disco e o tapete de nanofibra agora estão prontos para serem integrados.
Prepare uma câmara de vácuo, substrato de silicone e fluorosilano. Silanize o substrato de silicone com fluorosilano sob vácuo por 30 minutos. Prepare o PDMS convidado preparando o pré-polímero com um agente de cura na proporção de 10 para um e gire a camada sobre o substrato de silicone silanizado a 650 RPM por 60 segundos.
Catalise o PDMS revestido com o wafer silanizado a 65 graus Celsius por 10 minutos para torná-lo adesivo. Agora transfira esses tapetes de nanofibra para o silicone revestido com PDMS, aplicando a pressão apropriada usando um objeto plano, como uma lâmina de vidro. Asse a amostra a 80 graus Celsius por uma hora para curar completamente o adesivo PDMS.
Dispense algumas gotas de etanol nas esteiras de nanofibra presas na camada PDMS e faça um furo de seis milímetros de diâmetro usando um PunchIt. Em seguida, retire os tapetes de nanofibra perfurados presos no PDMS do substrato de silicone. Em seguida, cubra a câmara de reação de ligação no disco com cerca de 20 microlitros de mistura de PDMS e coloque as nanofibras presas no PDMS nas câmaras.
Em seguida, incube o disco integrado de nanofibra a 80 graus Celsius por uma hora. Preparar 1% de volume por volume de solução de GPDES em etanol. Em seguida, trate as nanofibras do disco com plasma de oxigênio.
Dispense 100 microlitros de solução GPDES em cada tapete de nanofibra e incube em temperatura ambiente por duas horas em um recipiente lacrado. Após a incubação, remova a solução GPDES batendo no disco em um limpador. Lave com etanol, retire e leve ao forno a 80 graus Celsius por uma hora.
Após o cozimento, lave com etanol e bata para remover. Repita este processo e seque com um jato de nitrogênio. Para imobilização de anticorpos, dispense a solução diluída de anticorpos capturados.
Mantenha os discos em uma câmara umidificada e incube a 37 graus por quatro horas. Lave a solução restante com tampão de lavagem. Agora, monte o disco usando uma fita adesiva dupla face.
Aplique uma pressão razoável para montar as camadas em um disco completo. Encha as câmaras de reação de ligação com tampão de bloqueio e incube a 37 graus Celsius por uma hora. Lave duas vezes com tampão de lavagem e guarde o disco a 40 graus Celsius até o uso.
Carregar os reagentes, os tampões de lavagem e 10 microlitros de sangue total nas câmaras de reagentes e amostras. Coloque o disco em uma máquina de visualização personalizada para imunoensaio automatizado. O sistema de visualização contém um rotor conectado a um computador para operação automatizada do disco, juntamente com uma luz estroboscópica e uma câmera CCD para tirar imagens.
Gire o disco a 3.600 RPM por 60 segundos para separar os glóbulos vermelhos. Misture o plasma com os anticorpos de detecção. Transfira a mistura para a câmara de reação integrada com tapete de nanofibra de dióxido de titânio.
Após a imunorreação, lave as nanofibras transferindo o tampão de lavagem para a câmara de reação. Em seguida, transfira a solução de substrato quimioluminescente para a câmara de reação de ligação e incube em modo de mistura por um minuto. Por fim, transferir a solução de substrato reagida para a câmara de detecção.
Quando toda a reação terminar, transfira o disco para um sistema de detecção e leia o sinal quimioluminescente usando um software personalizado. A operação do disco e o sistema de detecção podem ser integrados em uma única plataforma. Ao otimizar a voltagem e o fluorato, foram obtidos tapetes de nanofibras uniformes, conforme mostrado nesta imagem de MEV.
Para otimizar o tempo de cura do PDMS, a força de adesão foi medida. Se fosse muito curto, o tapete de nanofibra era embutido no PDMS ou descascado se fosse muito longo. Após a otimização, o tapete de nanofibra foi fixado de forma estável no PDMS.
A faixa linear para detecção de proteína C-reativa a partir de duas plataformas é mostrada neste gráfico. Usando o laboratório de integridade de nanofibras no disco, conseguimos obter uma sensibilidade de detecção altamente aprimorada da proteína C-reativa de apenas 10 microlitros de soro em 30 minutos. As tecnologias atualmente disponíveis, como o ELISA baseado em placas de 96 poços, exigem um volume de amostra maior e um tempo de detecção mais longo.
No geral, o ELISA baseado em disco integrado de nanofibra mostrou uma ampla faixa dinâmica de seis ordens de magnitude com um limite de detecção de seis femtomol de proteína C reativa. Essa sensibilidade de detecção auxiliada pela alta área de superfície fornecida pela nanofibra integrada no disco excedeu a do ELISA convencional, que foi limitada a 2.000 femtomoles. Depois de assistir a este vídeo, esperamos que você tenha uma boa compreensão de como preparar o dispositivo microfilítico centrífugo, como integrar nanofibras fasais e como realizar a detecção de proteínas usando ELISA.
Esta técnica pode ser útil para detectar proteínas de baixa ligação em uma quantidade muito pequena de amostras biológicas.
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Este protocolo demonstra como obter sensibilidade de detecção em fentomolar de proteínas em 10 µL de sangue total dentro de 30 minutos. O método utiliza membranas eletrofiadas de nanofibras integradas em uma plataforma laboratório-em-um-disco, melhorando a relação sinal-ruído por meio de mistura e lavagem eficientes.
Essa tecnologia atende à necessidade crítica de detecção ultrassensível de proteínas em amostras clínicas de baixo volume, permitindo a descoberta precoce de biomarcadores a partir de pequenas quantidades de sangue total. Ao integrar nanofibras eletrofiadas em uma plataforma microfluídica centrífuga, ela alcança sensibilidade em nível femtomolar dentro de 30 minutos, melhorando significativamente o limite de detecção em comparação com o ELISA convencional. Esse avanço apoia a validação de alvos e a identificação de compostos iniciais, reduzindo os falsos negativos na triagem de proteínas de baixa abundância, impactando diretamente decisões de desriscamento pré-clínico e de priorização de portfólios.
O método insere-se na fase inicial da descoberta, apoiando a validação de alvos orientada por hipóteses por meio da detecção quantitativa de proteínas em matrizes clinicamente relevantes.