Name: Determinação do biofilme Iniciação em células infectadas por vírus por bactérias e fungos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 33 s
Description: Aprenda a avaliar a adesão de patógenos oportunistas como Staphylococcus aureus e Candida albicans em células HeLa infectadas por HSV. Este método permite quantificar interações entre vírus, bactérias e fungos no início da formação de biofilmes.

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Este projeto foi apoiado pela Midwestern University, IL Office of Research and Sponsored Programs (ORSP) e Midwestern University College of Dental Medicine-Illinois (CDMI).

1. HSV Cepas e Manuseamento Nota: recombinante não-invasiva de HSV-1 (KOS) gL86 e HSV-2 (KOS) 333gJ - com actividade repórter de beta-galactosidase utilizados foram fornecidos por V. Twiari 36,37. <ol><li> Use vírus a partir de um único lote e armazenar a -80 ° C a uma razão de 1: 1 de meio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM) com soro de bovino fetal a 20% (FBS) e leite desnatado até à sua utilização. Antes do armazenamento lote viral, determinar a concentração de vírus de o-nitrofenil-β-D-galactopiranósido (ONPG) e 5-bromo-4-cloro-3-indolil-β-D-galactopiranósido de ensaio (X-Gal). </li><li> Determinar a viabilidade do vírus e a multiplicidade de infecção (MOI) por coloração X-Gal para cada ensaio experimental, utilizando um ensaio de entrada de vírus repórter, tal como anteriormente descrito (Figura 1) 14. </li><li> Diluir vírus (Opt-MEM) para MOI desejada. Fix monocamadas (paraformaldeído; 0,5 ml / cavidade) antes da coloração. Colocar controles de viabilidade vírus em um microti separadaplaca ter em paralelo com placas de ensaio polimicrobianas. </li></ol> 2. HeLa 299 Manipulação celular <ol><li> Crescer a 37 ° C, 5% de CO 2 em meio DMEM com 4,5 g / L de glucose, 10% inactivado por calor soro fetal de bovino (FBS), gentamicina (50 ug / ml) e L-glutamina. células de passagem em 80% de confluência com uma solução de tripsina (ácido etilenodiaminotetra-acético, 0,53 M de EDTA; 0,05% de tripsina; 5 ml / frasco). </li></ol> 3. C. Manuseamento albicans Nota: C. albicans obtidas a partir de uma fonte de laboratório clínico é armazenado a -80 ° C em 2x Remmel leite desnatado forma. <ol><li> Cultura congelada estoque em Sabouraud Dextrose médio (37 ° C). Após 24 h a subcultura C. albicans em meio Fungisel (37 ° C; 48 h) durante a utilização. </li><li> Gerar tubo germinativo (GT) formas (escolher colónias representativos; 3 ml FBS; 3 horas; 37 ° C; Abs 600, 0,3). Após incubação, lava-GT (HBSS; 2x; 4000 xg). Adicionar GT lavada com HBSS aquecido (37 &amp;# 176; C; 0,32 Abs 600). formas GT deve ser de 99% de células observadas como determinado pela contagem de hemocitómetro. </li><li> Faça suspensões forma de levedura (FA) de ações, escolhendo colônias Fungisel representativos (HBSS, 3 ml; 0,32 Abs 600). Contar o número de formas de YF / ml microscopicamente usando um hemocitômetro. formas de YF deve ser de 99% de células observadas como determinado pela contagem de hemocitómetro. </li><li> Tornar o trabalho estoque fúngica (250 mL de GT ou estoque YF em 25 ml HBSS; 37 ° C; 10 5 UFC / ml) </li></ol> 4. S. Manuseamento aureus <ol><li> Loja S. aureus ATCC 25923 (-80 ° C; Remmel desnatado 2x leite). Cultura em agar de sangue de ovelha (5%; 37 ° C; 24 h). Escolha colónias representativos e transferir de mannitol sais médio prazo de 2 dias para estoque (37 ° C; 18 h). </li><li> Faça S. aureus suspensão de ações (3 ml HBSS; 1,32 Abs 600; 10 8 UFC / ml) <ol><li> Tornar o trabalho S. Stock aureus (100 uldo estoque em 25 ml HBSS; 10 5 CFU / ml). </li></ol></li></ol> 5. Candida e S. aureus Suspensões <ol><li> Faça misto C. albicans e S. suspensão aureus (250 mL YF ou estoque GT e 100 ul da S. aureus em 25 ml HBSS). </li></ol> 6. polimicrobiana biofilme Assay <ol><li> Semente de placas de 96 poços com 200 ul de 2 x 10 5 células HeLa / ml (nível de confluência de 85%). Placas de rocha (30 - 45 min; 37 ° C) antes da incubação (37 ° C; 5% de CO2; 18 h). Monocamadas de lavagem (1x; Opt-MEM), em seguida, semente com HSV (HSV-1 (KOS) gL86 ou HSV-2 (KOS) 33 GJ - em 100 ul Opt-MEM; MOI 50 e 10). Incubar as placas (3 h; 37 ° C; 5% de CO 2). Use apenas uma estirpe viral por dia. </li><li> Lavar as monocamadas infectadas (1x; salina tamponada com fosfato (PBS) com Mg e Ca 2 2; 100 ul). Substitua PBS com HBSS quente deixando 25 &amp; #181; L em cada poço. <ol><li> Adicionar YF, GT e / ou S. aureus suspensões de trabalho (100 ul; a proporção de células-alvo = 5: 1; n = 16). tal como indicado na Tabela 1 Incubar as placas (estáticos; 30 min; 37 ° C; 5% de CO 2). </li></ol></li><li> Após a incubação, aspirado de uma coluna de cada vez imediatamente reenchimento com 300 ul de PBS com 2 Mg e Ca + 2. Repetir este passo duas vezes e depois adicionar radio-imunoprecipitação tampão de ensaio de lise (RIPA; esterilizado por filtração; 200 ul de uma diluição de 1:50). </li><li> Rapidamente triturar o ligado de células HeLa, em seguida, colocar 50 ul em sais de manitol (MS) e media / ou Fungisel (F) (Figura 2). Espalhe o lisado utilizando uma vareta de vidro dobrada a um ângulo de 90 °. Incubar as placas (18 hr a 37 ° C). contar manualmente o número de colónias por placa. Os controlos consistem em S. aureus e / ou C. albicans adesão a células HeLa HSV-não infectadas. </li></ol> 7. Estudos Imaging &lt;/ P&gt; <ol><li> Lave cada lamela de vidro redonda (12 mm; 50 ml de acetona em 100 ml copo). lamelas secar e esterilizar (Kimwipes; placas de petri de vidro). Coloque lamelas estéreis secas nas cavidades da estéreis placas de 24 poços com álcool de chama fórceps esterilizados. </li><li> Adicionar células HeLa (1 ml; volume de 5x usado para placas de 96 poços) para os poços de placas de 24 poços contendo as lamelas de vidro redondas esterilizadas lavadas. Adicionar o vírus, bactérias e fungos de acordo com o modelo (Tabela 2) em 5x o volume utilizado para as placas de 96 poços, depois incubar e processo, tal como descrito nos passos 6.2.1 a 6.4 acima. </li><li> Após a lavagem final, fixar as células para microscopia inundando o diapositivo com metanol e deixando-se evaporar. Armazenar as placas à temperatura ambiente até a coloração. </li><li> Para a microscopia de campo claro (1.000x última ampliação original) encher os poços contendo lamelas fixo-metanol com água deionizada. Imediatamente aspirar água. Cubra cada lamela com Grams cristal violeta. Wash lamelas livre mancha não ligada (água deionizada). Lamelas secas in situ, em seguida, aderir-los com um conjunto de dureza média a um slide marcado de montagem (Figura 3). </li><li> Para a microscopia (objetiva de 100x; 1.000x original final ampliação) fluorescente lavagem lamelas livre de metanol essencialmente como descrito no passo 7.4. Secam-se as lamelas nos poços. <ol><li> Após a secagem, remover as lamelas e colocá-los em lâminas marcadas. Em seguida, adicionar uma quantidade suficiente de diluição de 1:20 de isotiocianato de fluoresceína (FITC) -conjugated vírus herpes simplex tipo 1 + 2 gD anticorpo para cobrir a lamela (1-5 ul). </li><li> Incubar as lâminas numa câmara de humidade a 37 ° C durante 30 min. Após a incubação, lavar as lamelas em 4 mudanças de PBS. </li><li> Após a lavagem final, voltar a lamela ao slide marcado. Mancha com 4 &#39;, 6-diamidino-2-fenilindole (DAPI; câmara de humidade; 37 ° C durante 30 min). Após a incubação, lavar as lamelas em 4 changes de PBS, em seguida, apor ao slide marcado com jogo duro meio de montagem. </li><li> Permitir que o meio de montagem a curar durante 24 horas à TA no escuro. Examine as lamelas no âmbito do objectivo de óleo em cada um microscópio de campo claro ou um microscópio fluorescente com filtros de corte FITC e DAPI. Examinar imagens de pelo menos 50 campos (100 células por mínimos organismo) para co-localização (Figura 4). </li></ol></li></ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Actualmente não há informações disponíveis sobre as interacções complexas entre permanente aos membros semi-permanentes do microbioma acolhimento que atravessam vários domínios taxonómico, ou seja, procariotas, eucariotas e virais. Por isso, desenvolvemos um romance no sistema de modelo in vitro para estudar a iniciação biofilme por S. aureus e C. albicans em HSV-1 ou HSV-2 infectadas células HeLa (HeLa 229) 38. O sistema modelo de células HeLa apresenta u...

<html> O microbioma humano inclui diversos organismos de vários reinos taxonômicos que compartilham regiões geográficas no corpo. Aderência a superfícies celulares é um primeiro passo essencial na formação de biofilme, que é parte do processo de microbioma colonização. Incluído no microbioma pode ser vírus que causam infecções crônicas e persistentes. A infecção crónica de células por estes vírus pode provocar uma alteração na disponibilidade de receptor putativo. 1,2 Além disso, a entrada celular por agentes patogénicos intracelulares podem também afectar a fluidez da membrana hospedeiro / hidrofobicidade, que por sua vez podem alterar a ligação de outros membros microbioma, incluindo bactérias e fungos . A fim de compreender as interações que podem ocorrer entre esses vários patógenos que co-localizam nas mesmas regiões geográficas do hospedeiro humano, devemos ser capazes de estudar a interação de agentes patogénicos que representam o espectro de reinos taxonômicos presentes na superfície da mucosa. t &quot;&gt; O Herpesviridae é uma família de micróbios presentes em 100% dos seres humanos como membros permanentes da microbiota 3,4. Além disso, eles podem também ser persistentemente derramado ambos na presença e ausência de sintomas. Especificamente, o vírus herpes simplex-1 e vírus herpes simplex-2 (HSV-1 e HSV-2, respectivamente) são membros permanentes do microbioma na oronasopharynx e tracto genital. nos indivíduos imuno-competentes, ambos de HSV-1 e HSV-2 causa gengivoestomatites, bem como herpes genital 5-8. Nesses locais, HSV provoca uma infecção latente caracterizada por necrose tumoral crônica persistente assintomática viral derramamento 9. entrada de HSV em células resulta em alterações na expressão de superfície do nectins, sulfato de heparano, jangadas lipídicas e herpesvírus mediador de entrada / receptor do factor (HVEM / TNFr) 10-25. Estes receptores representam potencialmente partilhadas para algumas bactérias e fungos, por exemplo, S. aureus e C. albicans, enquanto que agentes patogénicos oportunistas,também pode residir como membros do microbioma da mucosa do oronasopharynx 26,27. Dentro do oronasopharynx S. aureus e C. albicans ocupar dois locais distintos de colonização. Em hospedeiros com os dentes naturais, a mucosa oral é partilhada por HSV-1 e C. albicans, enquanto as narinas nasais anteriores são ocupados por S. aureus 28. No entanto, apesar achados in vitro que S. aureus adere às células epiteliais bucais, 29,30 S. aureus é pouco isolado a partir de amostras orais quando o tecido normal está presente 29,30. Pouco se sabe a respeito genitais nichos co-colonização do trato além dos achados clínicos que S. aureus está associada com vaginite aeróbica, caracterizada por genital inflamação, descarga e dispareunia, enquanto C. albicans produz lesões nas mucosas semelhantes ao observado na cavidade oral 31-35. Assim, embora estes membros da Microbi oral e genitalome reinos taxonômicos transversais pouco se sabe sobre a sua interação como ele afeta a sua capacidade de iniciar a formação de biofilme através da adesão à superfície da célula hospedeira 5. Este protocolo tem sido efetivamente aplicada para determinar as consequências funcionais de co-colonização / infecção.

<table><tbody><tr><td>C.albicans</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BBL Sabouraud Dextrose</td><td>BD</td><td>211584</td><td></td></tr><tr><td>Fungisel Agar</td><td>Dot Scientific</td><td>7205A</td><td></td></tr><tr><td>S.aureus</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mannitol Salt Agar</td><td>Troy Biologicals</td><td>7143B</td><td></td></tr><tr><td>Ágar sangue de ovelha</td><td>Troy Biologicals</td><td>221239</td><td></td></tr><tr><td><forte>células Hela</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x DMEM (Dubelcco's Modified Eagle Medium, com 4,5 g/L de glicose e L-glutamina, sem piruvato de sódio</td><td>Corning</td><td>10-017-CM</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicina 50 mg/ml</td><td>Sigma</td><td>1397</td><td>50 &micro; g/ml de concentração final no DMEM completo</td></tr><tr><td>Tripsina EDTA (0,05% Tripsina, 0,53 M EDTA)Solução 1x</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td></td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11150</td><td>10% concentração final no DMEM</td></tr><<tr><td>forte>Outros meios e reagentes</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ONPG</td><td>Thermo Scientific</td><td>34055</td><td></td></tr><tr><td>Ultra-Pure X gal</td><td>Invitrogen</td><td>15520-018</td><td></td></tr><tr><td>1x HBSS (Hanks' Balanced Salt Solution)</td><td>Corning</td><td>20-021-CV</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Dot Scientific</td><td>30042-500</td><td></td></tr><tr><td>RIPA Lysis</td><td>Life Technologies</td><td>89901</td><td></td></tr><tr><td><forte>Mancha</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A433P-4</td><td></td></tr><tr><td>HSV 1& 2, específico para gD</td><td>ViroStat</td><td>196</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>SIGMA</td><td>D8417-5MG</td><td></td></tr><tr><td>Gram Crystal</td><td>Violet Troy Biologicals</td><td>212527</td><td></td></tr><tr><td>Supplies</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Petri plate 100 x 15</td><td>Dot Scientific</td><td>229693&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri 150 x 15</td><td>Kord Valmark</td><td>2902</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 96 poços</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-8030-01F</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 24 poços</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-8044-01F</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de cultura 100 x 13</td><td>Thomas Scientific</td><td>9187L61</td><td></td></tr><tr><td>Círculos de lamínula, 12 mm</td><td>Deckglaser</td><td>CB00120RA1</td><td></td></tr></tbody></table>

determinação do biofilme iniciação em células infectadas por vírus por bactérias e fungos

Determination of Biofilm Initiation on Virus-infected Cells by Bacteria and Fungi

O estudo das interacções polimicrobianas através dos reinos taxonómicos que incluem fungos, bactérias e vírus não tenham sido previamente analisados ​​no que diz respeito à forma como membros virais da microbiota afectar micróbio subsequentes com estas células hospedeiras infectadas pelo vírus. A co-habitação com o vírus de bactérias e fungos é principalmente presentes nas superfícies das mucosas da cavidade oral e do tracto genital. células da mucosa, particularmente aqueles com infecções virais latentes crónicas ou persistentes persistentes, poderia ter um impacto significativo sobre os membros do microbioma através da alteração vírus em número e tipo de receptores expressos. Modificação em arquitectura membrana celular do hospedeiro iria resultar em capacidade alterada dos membros posteriores da flora normal e patógenos oportunistas para iniciar o primeiro passo na formação de biofilme, ou seja, a adesão. Este estudo descreve um método para a quantificação e exame visual do efeito de HSV na iniciação de biofilm formação (aderência) do S. aureus e C. albicans.

O nível de robustez dos dados que podem ser obtidos a partir do sistema descrito neste relatório é mostrado na Figura 2 AF 38. Através da utilização deste sistema a modulação da interacção de estafilococos e fungos com células viralmente infectadas e o seu efeito sobre a adesão de cada um pode ser delineado. Estes tipos de estudos requerem um exame microscópico da interacção, como mostrado nas Figuras 3 e 4 38, a fi...

Um método é descrito aqui para a determinação da associação e competição entre reinos (bacterianas e fúngicas) pela adesão a monocamadas de células HeLa infectadas por vírus. Este protocolo pode ser estendido a várias combinações de procariontes, eucariotos e vírus.

Determinação do biofilme Iniciação em células infectadas por vírus por bactérias e fungos

The study of polymicrobial interactions across the taxonomic kingdoms that include fungi, bacteria and virus have not been previously examined with ...

O objetivo geral deste experimento é medir os efeitos que células previamente infectadas com HSV exercem sobre a subsequente adesão de patógenos oportunistas bacterianos e fúngicos, por exemplo, Staphylococcus aureus e Candida albicans. Este método pode ajudar a responder questões fundamentais sobre o papel que infecções virais crônicas desempenham na regulação dos respectivos membros do microbioma do hospedeiro. A principal vantagem desta técnica é que a interação de múltiplos organismos pode ser examinada e quantificada na etapa inicial da formação de biofilme, ou seja, na aderência.A implicação desta técnica se estende ao controle de patógenos oportunistas colonizadores, porque a condição prévia da infecção por HSV com eliminação assintomática está presente na maioria da população humana. Embora este método possa fornecer informações sobre o controle do HSV sobre a adesão microbiana subsequente, ele também pode ser aplicado a outros sistemas, como infecção por CMV e adenovírus. Para começar, determine a viabilidade do vírus HSV1 ou HSV2 e a multiplicidade de infecção, ou MOI, por coloração com x-gal em cada ensaio experimental realizado, utilizando um ensaio de entrada de vírus com repórter.Dilua o vírus até a MOI desejada e coloque os controles de viabilidade viral em uma placa de microtitulação separada, paralelamente às placas do ensaio polimicrobiano. Em seguida, use 100 microlitros de tampão de paraformaldeído-glutaraldeído para fixar as monocamadas antes da coloração. Para manter as células HeLa, cultive-as em DMEM com quatro vírgula cinco gramas por litro de glicose, dez por cento de SBF inativado pelo calor, 50 microgramas por litro de gentamicina e l-glutamina.Utilize solução de tripsina para repicar as células em 80 por cento de confluência. Para manipular C.albicans, cultive uma estirpe congelada em meio sub em meio dextrinoso a 37 graus Celsius. Após 24 horas, subcultive o C.albicans em meio fungicell e incube por 48 horas antes do uso.Gere formas de tubo germinativo ou GT de C.albicans selecionando colônias representativas de fungicélulas e cultivando-as em três mililitros de FPS a 37 graus Celsius por três horas. Após a incubação, centrifugue a cultura a 4.000 × g durante dez minutos. Em seguida, use HBSS para lavar as células duas vezes.Após utilizar um hemocitômetro para contar as células, adicione o GT lavado ao HBSS a 37 graus Celsius até uma OD 600 de zero vírgula trinta e dois. Para preparar suspensões estoque de forma leveduriforme, ou YF, selecione colônias representativas de fungicélulas e utilize-as para semear três mililitros de HBSS. Incube as culturas até atingirem uma OD 600 de zero vírgula trinta e dois, utilizando um hemocitômetro para contar o número de formas YF por mililitro, o qual deve corresponder a 99 por cento das células observadas ao microscópio.Prepare um estoque fúngico de trabalho transferindo 250 microlitros de estoque GT ou YF para 25 mililitros de HBSS a 37 graus celsius. Isso resulta em dez elevado à quinta UFC por mililitro. Para preparar o SRES ATCC 25923, faça um esgotamento de um estoque congelado em ágar sangue de ovelha a cinco por cento e incube a 37 graus celsius por 24 horas.Em até dois dias, escolha colônias representativas, transfira para meio de manitol salino e cultive a 37 graus Celsius por 18 horas. Para preparar um estoque de SRES, suspenda colônias representativas em três mililitros de HBSS a 37 graus Celsius até uma OD 600 de zero vírgula um trinta e dois ou dez à oitava UFC por mililitro. Para preparar um estoque de trabalho, transfira 100 microlitros da suspensão estoque para 25 mililitros de HBSS.Isso resulta em dez elevado à quinta UFC por mililitro. O passo crítico inicial ao aplicar este método a outros organismos ou cepas de microrganismos é a determinação do número correto de bactérias e fungos a serem adicionados, de modo que haja um número suficiente de colônias para contagem. Para realizar um ensaio de biofilme polimicrobiano, semeie placas de 96 poços com 200 microlitros de duas vezes dez à 15ª células HeLa por mililitro.Agite as placas a 37 graus Celsius por 30 a 45 minutos antes de incubar em cinco por cento de dióxido de carbono a 37 graus Celsius por 18 horas. Use One X Optimum para lavar as monocamadas, depois plaque com a cepa única de HSV. Teste apenas uma cepa por vez.Incube as placas a 37 graus Celsius em cinco por cento de dióxido de carbono por três horas. Usando 100 microlitros de PPS a 37 graus Celsius com magnésio e cálcio, lave as monocamadas infectadas. Em seguida, use HBSS a 37 graus Celsius para substituir o PBS.Deixe 25 microlitros de HBSS em cada poço. Em seguida, adicione a suspensão de trabalho de YF, GT e/ou SRES e incube as placas a 37 graus Celsius em 5 por cento de dióxido de carbono por 30 minutos. Após a incubação, aspire uma coluna da placa de cada vez.Reabasteça imediatamente os poços com 300 microlitros de PBS contendo magnésio e cálcio. Após repetir este passo de lavagem duas vezes, adicione 200 microlitros de tampão de lise RIPA, esterilizado por filtração e diluído na proporção de 1:50, a cada poço. Ao trabalhar com outras cepas de bactérias ou fungos, certifique-se de que a concentração de RIPA utilizada seja suficiente para a lise celular, mas ainda permita testes de viabilidade microbiana.Triture rapidamente o lisado de células HeLa e pipete 50 microlitros em sais de manitol e ou meio fungicell. Em seguida, utilizando uma haste de vidro dobrada em um ângulo de 90 graus, espalhe o lisado sobre a superfície da placa. Após incubação das placas por 18 horas, conte manualmente o número de colônias por placa.Os controles consistem em SRES ou aderentes de C.albicans a células HeLa não infectadas pelo HSV. Para realizar estudos de imagem, lave com acetona cada lamínula redonda antes da esterilização. Em seguida, utilizando pinças esterilizadas com álcool e chama, coloque as lamínulas secas e estéreis nos poços de placas estéreis de 24 poços.Adicione células HeLa aos poços das placas contendo lamínulas. Em seguida, infecte as células com o vírus. Após a infecção, adicione bactérias e fungos de acordo com o modelo e incube e processe as células conforme demonstrado anteriormente para placa de 96 poços.Após a última lavagem, fixe as células para microscopia inundando as lamínulas com metanol e, em seguida, permitindo que evapore. Para microscopia de campo claro, preencha os poços contendo as lamínulas fixadas com água deionizada. Aspire imediatamente a água e adicione quantidade suficiente de cristal violeta em gramas para cobrir cada lamínula.Após lavar as lamínulas coradas com violeta cristal com água desionizada, seque-as em C2 antes de aderí-las com meio de montagem de cura rápida a uma lâmina etiquetada. Para microscopia fluorescente, após lavar as lamínulas livres de metanol, seque-as nos poços antes de montá-las em lâminas etiquetadas com meio de montagem de cura rápida. Adicione uma quantidade suficiente de uma diluição de um para 20 do anticorpo HSV1 conjugado com FITC mais 2GD para cobrir a lamínula.Incube os lâminas em uma câmara úmida a 37 graus Celsius por 30 minutos. Após a incubação, use PBS para lavar as lamínulas quatro vezes. Após a última lavagem, retorne os lâminas à câmara úmida.Adicione a gota B e incube por 30 minutos a 37 graus Celsius. Após a incubação, lave as lâminas quatro vezes com PBS. Deixe o meio de montagem curar por 24 horas à temperatura ambiente, no escuro.Em seguida, com um objetivo de imersão em óleo, examine ao microscópio de campo claro ou fluorescente pelo menos 50 campos para verificar a colocalização. Aqui são apresentados resultados representativos do efeito do HSV sobre a aderência de Staphylococcus e/ou Candida albicans. A presença do HSV1 inibiu a aderência estafilocócica a células HeLa.A presença de formas de tubo germinativo de Candida, mas não as formas leveduriformes, restaurou os níveis de aderência estafilocócica. Resultados semelhantes foram observados em células HeLa infectadas com HSV2. Como visto nesta figura, o nível de aderência das formas de tubo germinativo de Candida é significativamente maior em células infectadas com HSV2 do que em células infectadas com HSV1.O efeito inverso foi medido para HSV1 em comparação com HSV2 nas formas levedurais de Candida. Os padrões de aderência foram determinados por meio da coloração com violeta cristal de monocamadas para visualizar a interação entre bactérias e fungos. A microscopia de fluorescência foi então utilizada para determinar a presença de HSV em relação aos outros microrganismos.Na ausência de HSV, estafilococos e as formas de levedura e tubo germinativo de Candida colocalizaram-se em células HeLa. No entanto, apenas Candida foi observada em células infectadas com HSV. Uma vez dominada, esta técnica pode ser realizada em oito a nove horas, se for executada corretamente.Após este procedimento, outros métodos, como a coloração imunofluorescente diferencial, podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como a expressão diferencial de receptores de superfície presentes após a entrada viral nas células. Após seu desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para pesquisadores na área do microbioma humano explorarem interações pós-microrganismos em culturas de tecidos, bem como em sistemas de cultura de órgãos. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como desenvolver um modelo de interação polimicrobiana que abranja os reinos taxonômicos.Não se esqueça de que trabalhar com patógenos pode ser extremamente perigoso, e precauções como o uso de cepas virais não disseminativas e técnicas de barreira são necessárias.

determination-biofilm-initiation-on-virus-infected-cells-bacteria

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

O ensaio descreve um meio rápido de medir a formação de biofilme no início de bactérias e fungos. Este método utiliza uma placa de microtitulação, como o substrato para formação de biofilme microbiano, e do biofilme é visualizada utilizando cepa cristal violeta. O ensaio fornece tanto um ensaio qualitativo ou quantitativo para a formação de biofilme cedo.

Dish microtitulação Assay formação de biofilme

Fonte: Tay, S. B., et al. Perturbação Antivirulenta de Biofilmes Patogênicos usando lactonases modificadas para apagamento do quórum.  J. Vis. Exp. (2016)O vídeo demonstra um método para quantificar a biomassa de biofilme em uma bactéria patogênica, comparando controles não tratados com amostras tratadas com uma enzima que apaga quórum. A enzima interrompe a sinalização bacteriana durante a incubação inicial, reduzindo a adesão celular. Após lavagem e incubação adicional, poços de controle...

Quantificação da Supressão de Biofilme Induzida por Enzimas em Bactérias Patógenas

Fonte: Schlafer, S, e Frost Kristensen, M. Monitorando o pH Extracelular em Biofilmes Cruzados do Reino usando Microscopia Confocal. J. Vis. Exp. (2020)Este vídeo demonstra o cultivo de biofilmes cruzados entre Streptococcus mutans e Candida albicans sob condições semelhantes às orais para modelar interações bactéria-fúngico, possibilitando o estudo da sinergia microbiana, adesão mediada pelo glucano e virulência acidogênica na patogênese oral.

Estabelecimento de biofilmes entre reinos bacterianos-fúngicos para estudo da patogênese oral

Fonte: Miquel Guennoc, C., et al. Novo método para análise qualitativa multiescala de biofilmes bacterianos em colônias fúngicas filamentosas usando microscopia confocal e eletrônica. J. Vis. Exp. (2017)Este vídeo demonstra a preparação de uma cultura fúngica em membranas de celofane tratadas para apoiar a formação de colônias e o crescimento radial. Em seguida, mostra o cultivo e preparação das células bacterianas do solo para ensaios de interação. Por fim, ilustra como as células bacterianas...

Estabelecimento de uma Co-cultura Fúngico-Bacteriana para a Formação de Biofilmes

Este vídeo ilustra o início da formação de biofilme polimicrobiano em células infectadas por vírus por bactérias e fungos. A infecção pelo vírus herpes simplex impede a ligação bacteriana às células, impedindo a co-localização bacteriano-fúngica. Em contraste, as células não infectadas exibem co-localização bacteriano-fúngica e início da formação de biofilme.

Um ensaio para determinar a iniciação do biofilme polimicrobiano em células infectadas por vírus

Este vídeo descreve um método para cultivar e analisar qualitativamente biofilmes bacterianos em hifas fúngicas usando microscopia. Os biofilmes bacterianos freqüentemente se formam em superfícies fúngicas e envolvem vários processos de interação bactéria-fungo, como cooperação metabólica, competição ou predação.

Um método de preparação de amostras para visualizar bactérias formadoras de biofilme em hifas fúngicas

Este protocolo descreve um novo método para crescer e qualitativamente analisar biofilme bacteriano sobre hifas fúngicas por microscopia confocal e eletrônica.

Um novo método para a análise qualitativa Multi-escala de Bacteriana biofilmes em filamentosa fúngica Colonies Usando Confocal e Microscopia Eletrônica

Este protocolo descreve o uso de um dispositivo personalizável microfluidic automatizado para visualizar a formação de biofilmes de Candida albicans sob condições fisiológicas do hospedeiro.

Visualização da formação de biofilmes de Candida albicans , usando um dispositivo Microfluidic automatizada

Este protocolo permite que o leitor a analisar a formação de biofilme induzida por sais biliares em patógenos entéricos, usando uma abordagem multifacetada para capturar a natureza dinâmica dos biofilmes bacterianos avaliando aderência, formação de matriz extracelular de substâncias poliméricas, e dispersão.

Formação de biofilmes induzida por sais biliares em patógenos entéricos: técnicas para identificação e quantificação

Este protocolo descreve a preparação do inóculo, a quantificação do biofilme em placas de microtitulação usando corante violeta cristal, a contagem viável em biofilmes e a visualização de biofilmes de Acinetobacter.

Quantificação, Avaliação de Viabilidade e Estratégias de Visualização para Biofilmes de Acinetobacter

Aprenda a avaliar a adesão de patógenos oportunistas como Staphylococcus aureus e Candida albicans em células HeLa infectadas por HSV. Este método permite quantificar interações entre vírus, bactérias e fungos no início da formação de biofilmes.

Determinação do biofilme Iniciação em células infectadas por vírus por bactérias e fungos

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