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DOI: 10.3791/54226-v
Shawn Stapleton1,2,3, Daniel Mirmilshteyn2, Jinzi Zheng3,4, Christine Allen2,4,5, David A. Jaffray1,2,3,4,5,6
1Department of Medical Biophysics,University of Toronto, 2Leslie Dan Faculty of Pharmacy,University of Toronto, 3STTARR Innovation Centre,Princess Margaret Cancer Centre, 4Institute of Biomaterials and Biomedical Engineering,University of Toronto, 5Techna Institute,University Health Network, 6Radiation Medicine Program,Princess Margaret Cancer Centre
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
O acúmulo intratumoral heterogêneo de lipossomas tem sido associado a um microambiente tumoral anormal. Aqui são apresentados métodos para medir a microcirculação tumoral por imagem de perfusão e pressão elevada do fluido intersticial (IFP) usando um sistema robótico guiado por imagem. As medições são comparadas ao acúmulo intratumoral de lipossomas, determinado por meio de microtomografia computadorizada volumétrica.
O objetivo geral deste experimento é relacionar o acúmulo intratumoral de nanoterapêuticos com as propriedades do microambiente tumoral, incluindo a microcirculação tumoral e a pressão elevada do fluido intersticial, ou IFP. Este método nos permite responder a perguntas importantes sobre nanomedicamentos. Perguntas como o que impulsiona a absorção heterogênea de nanopartículas dentro de um tumor?
A principal vantagem desta técnica é que permite o mapeamento espacial co-localizado das propriedades do microambiente tumoral e a distribuição intratumoral das nanopartículas. Depois de confirmar o nível apropriado de anestesia por topenge, aplique pomada nos olhos do camundongo e prenda os membros do animal em decúbito ventral em uma placa de plástico fina. Em seguida, insira um cateter personalizado de calibre 27 conectado a um pedaço de tubo PE10 de 20 centímetros na veia lateral da cauda e prenda o tubo com vários pedaços de fita adesiva.
Agora, encha uma seringa de um mililitro com pelo menos 200 microlitros de tomografia computadorizada ou lipossomas de tomografia computadorizada e uma seringa de um mililitro com pelo menos 150 microlitros de uma proporção de 9-1 por volume de iohexol livre misturado com solução salina. Coloque a seringa de lipossomas CT em uma bomba de seringa e conecte o cateter à seringa, definindo uma taxa de bomba de 600 microlitros por minuto, equivalente a 10 microlitros por segundo. Em seguida, coloque o mouse na cama do micro scanner de TC e use o sistema de posicionamento a laser para ajustar o tumor de modo que ele tenha aproximadamente a mesma orientação para cada varredura.
Usando o software do console do scanner de TC para cada protocolo de imagem de interesse, selecione escuro claro no menu suspenso e clique no botão de varredura para iniciar a calibração e inicializar o sistema. Para obter uma microtomografia computadorizada anatômica volumétrica do tumor antes que qualquer agente de contraste seja injetado, primeiro verifique o indicador do software do console do scanner de TC para confirmar se os intertravamentos de segurança do scanner de TC foram removidos. Em seguida, selecione a varredura que usa uma energia de raios-x de 80 quilovolts, uma corrente de tubo de 70 miliamperes e captura 1.000 projeções de imagem.
Em seguida, inicie a verificação. Quando a varredura estiver concluída, configure a bomba para injetar aproximadamente 150 microlitros da solução de lipossomas e pressione o botão Iniciar para injetar o bolus de lipossomas de TC a 55 miligramas de iodo por mililitro de concentração de solução. Lave manualmente o cateter com 50 microlitros de solução salina para garantir que toda a quantidade de agente lipossomal foi injetada e que o cateter foi limpo.
Após 10 minutos, faça uma segunda varredura anatômica do tumor, como acabamos de demonstrar. Para realizar um DCE-CT, coloque uma seringa de solução de iohexol livre na bomba de seringa e configure a bomba para injetar 100 microlitros de iohexol na mesma taxa de injeção. Esses volumes de injeção são superiores ao padrão de 200 microlitros, mas os animais são monitorados durante a recuperação e nenhum evento adverso foi observado.
Em seguida, no console do tomógrafo, selecione uma varredura dinâmica de cinco minutos usando uma energia de raios-x de 80 quilovolts e uma corrente de tubo de 90 miliamperes, como acabamos de demonstrar, que captura 416 projeções de imagem a cada um segundo durante os primeiros 30 segundos, seguidas por 416 projeções de imagem a cada 10 segundos. Capture cinco segundos de dados DCE-CT e ligue a bomba injetora. No final do exame, execute uma terceira microtomografia computadorizada anatômica volumétrica.
48-70 horas depois, capture imagens anatômicas de TC dos lipossomas usando as mesmas configurações volumétricas que acabamos de demonstrar. Para medir o IFP, prenda o animal na plataforma do robô CT IFP de forma que o tumor fique imobilizado e acessível ao sistema robótico CT IFP. Obtenha uma microtomografia computadorizada anatômica conforme demonstrado.
Em seguida, carregue os dados de inserção da pré-agulha no software de alinhamento do robô CT IFP e ajuste a janela e o nível para visualizar o tumor. Clique na borda do tumor em qualquer imagem seguida da seleção de uma segunda localização da borda no lado adjacente do tumor. O software calculará uma série de posições ao longo de uma linha linear entre os dois pontos.
Em seguida, selecione as coordenadas X, Y e Z para uma série de cinco a oito posições uniformemente espaçadas na lista. Em seguida, lave a agulha do sistema IFP com uma solução salina de heparina e insira as primeiras posições predeterminadas da agulha nas janelas de coordenadas X, Y, Z do software de controle do robô CT IFP. Pressione o botão ir para mover o robô para o local desejado.
Em seguida, para cada posição da agulha, clique no botão inserir agulha para inserir a agulha no tecido. Aperte e solte o tubo PE20 para confirmar uma boa comunicação de fluido entre a agulha IFP e o tecido e observe que a medição do IFP aumenta e retorna ao valor de pré-pinçamento no software de aquisição IFP. Por fim, adquira uma tomografia anatômica com a agulha inserida, clicando no botão de retração da agulha no final da varredura para remover a agulha do tecido.
A seleção de uma região de interesse dentro do tumor produz uma curva de tempo/intensidade que pode ser usada para produzir estimativas quantitativas de parâmetros hemodinâmicos selecionados no tumor. A segmentação do volume tumoral em múltiplas regiões de interesse de tamanhos iguais permite a quantificação da distribuição espacial desses parâmetros dentro do volume tumoral. A biodistribuição dos lipossomas CT 48 horas após a injeção também pode ser observada.
Conforme indicado, o agente ainda está circulando no sistema vascular com uma captação substancial observada no baço e no fígado. O acúmulo intratumoral desses lipossomas de TC é heterogêneo, com acúmulo predominantemente periférico em comparação com o centro do tecido tumoral. A agulha pode ser claramente identificada por microtomografia computadorizada de alta resolução, permitindo a localização espacial das medidas de IFP dentro do volume tumoral.
A medição espacialmente co-localizada da profusão e da fração de volume plasmático demonstra uma correlação significativa com o acúmulo intratumoral de lipossomas de TC em tumores subcutâneos. Além disso, a distribuição radial da PIF se correlaciona com as outras medidas hemodinâmicas, sugerindo uma complexa relação espacial/temporal entre a microcirculação tumoral, a PIF e o acúmulo intratumoral dos lipossomas. Ao tentar este procedimento, é importante prender o animal na cama do scanner, garantindo o mínimo de movimento do tumor entre as medições de IFP.
As implicações deste trabalho estendem-se ao desenvolvimento de novas terapias. O transporte de nanopartículas é um primeiro passo fundamental na construção de terapêuticas eficazes baseadas na nanomedicina. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa ideia de como mapear espacialmente a pressão do fluido intersticial do tumor, a microcirculação do tumor e a distribuição de nanopartículas.
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