Name: Abrir traqueostomia ácido gástrico aspiração Modelo murino de lesão pulmonar aguda Resultados em Maximal aguda não-letal Lung Injury (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 16 s
Description: Aprenda a induzir lesão pulmonar aguda estéril em camundongos por aspiração de ácido gástrico via traqueostomia aberta. Este modelo reproduz fielmente a pneumonite ácida humana para testar estratégias terapêuticas em cuidados intensivos.

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Ravi Alluri e Hilliard L. Kutscher são apoiados pelo Prêmio Ruth L. Kirschstein do Serviço Nacional de Pesquisa (NRSA) Bolsa de Treinamento em Pesquisa Institucional 1T32GM099607.

Todos os materiais e equipamentos devem ser recolhidos e adequadamente organizado antes do procedimento. O procedimento deve ser realizado com transições suaves de uma etapa para a próxima, a fim de fornecer dados consistentes e reprodutíveis. Este protocolo segue políticas institucionais estabelecidos pelo Comitê Cuidado e Uso Institucional animal no Centro Médico Buffalo Veterans Affairs. NOTA: ambos os sexos masculino e feminino camundongos C57BL / 6 foram utilizados para este protocolo. Não há nenhuma diferença significativa de perda de albumina entre os sexos. 1. Preparação de Ácido Clorídrico <ol><li> Adicione HCl 56,2 mM estéril por adição de 281 mL de HCl 1 N a 4,72 ml de solução salina normal esterilizada (SNS). Titula-se a pH 1,25 com HCl a 1 N (≈ 0-50 uL). </li><li> Faça esta preparação fresco antes da lesão. A partir pH SNS não é tamponado assegura a clorídrico insulto lesão ácido é transitória. </li></ol> 2. Anestesia e traqueal técnica de exposição NOTA:Certifique-se de que o procedimento de lesão é conduzida em um exaustor com filtro de carvão vegetal para a eliminação de gás anestésico. Manutenção de condições estéreis é essencial, pois esta é uma cirurgia sobrevivência. Use luvas estéreis e esterilizar todos os instrumentos em uma conta de vidro instrumento cirúrgico de esterilização antes da cirurgia em cada animal. A utilização de cortinas de isolar o local cirúrgico é recomendado para manter a esterilidade. Use isoflurano como o gás anestésico, pois proporciona uma solubilidade relativamente baixa gás de sangue permitindo rápida indução da anestesia, bem como a rápida recuperação após a lesão. <ol><li> Começar pela indução de anestesia em uma câmara com 2,75% de isoflurano em oxigénio com uma taxa de fluxo de 2 L / min. </li><li> Uma vez que o mouse está devidamente anestesiados (que não responde aos pés beliscar forte o suficiente para não quebrar a pele ou causar danos de tecidos profundos), suspender o mouse, os incisivos superiores com um comprimento de 15 cm de 1-0 sutura de seda trançada em decúbito dorsal em uma 60 o prancha inclinada dissecção. &lt;/ Li&gt; <li> Certifique-se de que a anestesia é mantida durante toda a cirurgia, fornecendo isoflurano através de um cone do nariz. Aplicar pomada veterinária no olho do rato para prevenir o ressecamento. </li><li> Raspar a porção ventral do pescoço com um aparador eléctrico e aplicar a solução anti-séptica tópica (isto é, a povidona-iodo). Retire o excesso de anti-séptico com gaze e deixe secar (~ 15 - 30 s). </li><li> Infiltrar-se na linha média do pescoço do entalhe esternal com a parte inferior da mandíbula com 100 mL bupivacaína a 0,5% (para fornecer analgesia pré, peri e pós-operatório). </li><li> Adicione de 1 - 1,5 centímetros incisão na linha média longitudinal no pescoço com um bisturi ou tesouras finas curvas. Fascial penetrar a membrana entre as glândulas salivares por dissecção romba com 2 pinças curvas serrilhadas para expor a traqueia (identificados pelos anéis de cartilagem branco). </li><li> Ainda usando os 2 pinças serrilhadas, segure um lado da musculatura paratraqueal e puxe-o para o lado enquanto dissecando entre o musfibras cle longitudinalmente próximos à traqueia. </li><li> Uma vez plano de dissecção é estabelecida, continuar retracção do músculo paratraqueais como o segundo par de pinças é trabalhado sob a traqueia. Usar estas pinças para colocar uma 15 centímetros cadeia de 1-0 sutura de seda trançada para a ponta do fórceps e puxar por meio de colocação do fio de sutura por trás da traqueia. </li></ol> 3. Intra-traqueal Procedimento instilação <ol><li> Preparar a seringa lesão instilação por enchimento de uma seringa de 0,5 mL ligada a uma agulha de 22 G, com 0,2 mL de ar, seguido de 3,6 ml / kg de ácido clorídrico. O ar irá actuar para auxiliar na dispersão do veículo, bem como uma manobra de recrutamento alveolar para os alvéolos que podem ter sido submetidos a anestesia durante a administração atelectasia. NOTA: Siga as orientações locais IACUC em relação a analgesia pós-operatória e consulte o seu veterinário local. Tenha cuidado ao usar quaisquer analgésicos com propriedades anti-inflamatórias antes de empregaring este modelo de lesão pulmonar estéril. </li><li> Para administrar a lesão, primeiro interromper a administração de isoflurano. Permitir que a profundidade da anestesia do mouse para subir para cerca de 10 - 15 s até que comece a reagir a uma pitada toe fórceps. </li><li> começar imediatamente passos instilação de lesão. Se a profundidade da anestesia é muito profundo o animal não irá respirar espontaneamente após a instilação lesão, o que é especialmente verdadeiro para lesões contendo ácido clorídrico. </li><li> Ter um assistente apertar a caixa torácica para expulsar capacidade vital. </li><li> Use o fio de seda 1-0 trançado colocado anteriormente em torno da traquéia para fornecer tração puxando-superiormente e, em seguida, inserir a agulha da seringa na traqueia entre o 1 ° e 2 ° anéis cartilaginosos, abaixo da laringe. O bisel da agulha deve enfrentar o cirurgião e avançar até o cone é apenas passado a traqueia com a agulha como paralelo com a traqueia possível. </li><li> Solte o peito imediatamente antes da administração bolus deácido clorídrico, a fim de assegurar a dispersão e a deposição nas vias respiratórias distais e alvéolos. Depositar o bolus em cerca de 0,5-0,75 s. Manter a agulha na traqueia até que a primeira respiração espontânea é feita para assegurar que todo o volume de bolus lesão é inalado para dentro dos pulmões. </li><li> Fechar a incisão utilizando ou 1 - 2 grampos de pele ou suturas. </li></ol> 4. Recuperação <ol><li> Usando uma seringa de 5 mL com uma agulha de 26 G, injectam-se 1 mL SNS por via subcutânea na nuca do pescoço para reanimação fluido. Embora não haja perda de fluido mínima durante o procedimento, após a cirurgia o mouse tende a não beber e potencialmente pode desidratar. Em alternativa, fornecer SNS através de uma injecção intraperitoneal. </li><li> Coloque o rato na câmara aquecida a 37 ° C perfundidos com 100% de O2. Certifique-se de que o mouse está devidamente recuperados antes de serem colocados de volta para a habitação. Monitorar os animais e não deixar sem vigilância durante este tempo até r ambulatorial e totalmenteecovered. </li></ol> 5. Lavagem Broncoalveolar e Pulmão Processing <ol><li> Induzir e manter anestesia de isoflurano, conforme descrito no Passo 2.1 Passo 2.2. Confirmar plano adequado de anestesia e utilizando o método toe pitada descrito no Passo 2.2. </li><li> Seguro na posição supina sobre um tabuleiro de dissecação e utilizar um ciclo de 1-0 sutura de seda trançada enganchado sobre os incisivos superiores para estender o pescoço. Aplicar pomada veterinária nos olhos para evitar a secura. </li><li> Depois de retirar os grampos de pele do pescoço, fazer uma incisão longitudinal na linha média através da pele a partir da parede abdominal inferior através da incisão no pescoço anterior à mandíbula com uma tesoura. </li><li> Faça uma incisão na linha média na musculatura peritoneal com uma tesoura e retirar os órgãos abdominais com esponjas para expor o espaço retroperitoneal. Se o sangue for necessário, recolha a partir da aorta abdominal ou veia cava inferior, neste ponto. </li><li> Eutanásia do animal através de sangria, ao seccionar o Abdomaorta inal e veia cava inferior. Através da utilização de uma toracotomia bilateral no passo seguinte um método de confirmação secundário da eutanásia com humanidade vai ser preenchido, tal como estabelecido pelas directrizes IACUC. </li><li> Perfurar o diafragma para causar o colapso do pulmão. Em seguida, usando uma tesoura de corte de osso, cortar o diafragma e cortar através da caixa torácica paralela e em ambos os lados do esterno. Utilize uma pinça hemostática de bloqueio para retirar a tampa do esterno para facilitar a injecção 5 mL quente (37 ° C) Solução Salina Equilibrada de Hank com cálcio e de magnésio para o ventrículo direito para lavar a vasculatura pulmonar. <ol><li> À medida que o sangue a partir da aorta é obtido para avaliar os níveis de citocinas periféricas antes do procedimento descrito no presente documento, fazer uma pequena incisão no ventrículo esquerdo, para proporcionar fluxo de saída necessárias para o sangue a sair da circulação de descarga adequado da vasculatura pulmonar, se não a obtenção de sangue . </li></ol></li><li> Prop a placa dissecção a uma inclinação de 60 ° e usar the procedimento descrito no passo 2.2 para facilitar a inserção de um 20 G x ½ &quot;cânula de aço inoxidável na traqueia e seguro com uma sutura 1-0. </li><li> Coloque a placa de dissecção horizontalmente e realizar uma lavagem broncoalveolar (BAL). <ol><li> Para realizar o BAL anexar dois 5 seringas ml a uma torneira de 3 vias. Encha uma seringa com 5 mL de SNS e parafuso na porta da torneira. Anexar um vazio seringa de 5 mL a uma porta 2º e finalmente anexar porta aberta da torneira a cânula intra-traqueal colocado no Passo 5.6. Incutir 1 mL de NS para os pulmões e lavado com segunda seringa. </li><li> Repita durante 5 total 1 instillations mL NS tendo o cuidado de que a cânula traqueal permanece protegida e paralela à traqueia para que ele não rasgar a traqueia. </li></ol></li><li> Para a análise histológica, canular a traqueia como no Passo 5,7. Fixar os pulmões por insuflação com 10% de formalina tamponada neutra a 20 cm de H 2 O durante 24 h. </li><li> Remova cada Caref lobo pulmonarully usando tesouras e pinças, ao seccionar brônquio próximo do hilo. Colocar cada lóbulo do pulmão (total 5) em uma cassete histologia antes de serem embebidos em parafina. Corte de 5 mm secções de tecido com um micrótomo, e manchar com hematoxilina e eosina utilizando técnicas histológicas padrão. 6 Morfometria também pode ser realizada sobre os cortes histológicos para quantificar a gravidade da inflamação. 4 </li><li> Processar a BAL recuperadas por centrifugação a 1500 xg durante 3 minutos a 4 ° C. Alíquota os sobrenadantes LBA livre de células em quantidades equivalentes em 2,0 mL tubos de microcentrífuga para análise futura. Armazenar a -80 ° C. </li><li> Analisar o LBA para a concentração de albumina por meio de ELISA, ou qualquer outro produto biológico de interesse. 11 As células sedimentadas a partir da BAL pode ser contado, espécimes cytoslide gerado, e coradas com corante Wright-base-Giemsa para determinação da contagem diferencial de glóbulos brancos para avaliar os pulmões &#39;reacção inflamatória. </li></ol>

<ol><li>Knight, P. R., Rutter, T., Tait, A. R., Coleman, E., Johnson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogenesis+of+gastric+particulate+lung+injury%3A+a+comparison+and+interaction+with+acidic+pneumonitis%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Pathogenesis of gastric particulate lung injury: a comparison and interaction with acidic pneumonitis.</a> Anesth Analg. 77 (4), 754-760 (1993).</li>
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<li>Segal, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acid+aspiration-induced+lung+inflammation+and+injury+are+exacerbated+in+NADPH+oxidase-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Acid aspiration-induced lung inflammation and injury are exacerbated in NADPH oxidase-deficient mice.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 292 (3), 760-768 (2007).</li>
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</ol>

Os autores não têm interesses financeiros concorrentes a divulgar.

<html> O objetivo foi desenvolver um modelo animal ALI por meio de aspiração de ácido gástrico que se assemelha a fisiopatologia que ocorre em seres humanos durante o desenvolvimento de pneumonite ácido e ARDS subsequentes. No desenvolvimento de um modelo, escolhemos uma espécie animal que oferece alta taxa de transferência de aquisição de dados, devido ao seu baixo custo, ciclo reprodutivo curto, e um sistema imunológico bem compreendido com uma abundância de ferramentas de investigação (ou seja, anticorpos mon...

SDRA é caracterizado por inflamação pulmonar disseminada e é clinicamente visto como falta de ar aguda com hipoxemia. Estes sintomas geralmente ocorrem menos de 24 horas após um evento incitar tais como trauma, sepsis, reações relacionadas transfusão de sangue ou aspiração. É caracterizada histologicamente por alveolite neutrofílica (isto é, inflamação generalizada) localizada ao epitélio alveolar e endotélio vascular que conduz à fuga de proteínas e a formação de membrana hialina posteriormente. A aspiração é classificado como pneumonia química ou pneumonia por aspiração. 1 O componente ácido da aspiração gástrica contribui tanto para a pneumonite e predilecção para desenvolver uma pneumonia bacteriana secundária. A pneumonia por aspiração é um dos principais fatores de risco para ALI e subsequente desenvolvimento de ARDS. 2 aspiração gástrica é um evento agudo definido como a inalação de materiais de tele estômago com ou sem flora da orofaringe para as vias aéreas para além das cordas vocais. O conteúdo aspirado pode conter reduzido de líquido do estômago pH, bactérias, sangue, ou partículas de alimentos. aspiração gástrica ocorre frequentemente em pacientes de Unidade de Terapia Intensiva (UTI), os quais são tipicamente em um estado de jejum e, assim, colocada sobre um inibidor da bomba de protões para limitar aspiração do conteúdo gástrico acidificado. A incidência de LPA na população UTI em os EUA é de 2,5 - 5 vezes maior em comparação com a população em geral do paciente. 3 Infelizmente, estas condições predisponentes muitas vezes levam a um estado de crescimento excessivo de bactérias no estômago que pode levar a sequelas mais graves no pulmão após um evento aspiração, como aspiração gástrica é um fator de risco independente para o desenvolvimento de pneumonia bacteriana secundária (PAS) , ALI e ARDS. aspiração gástrica tem dois componentes principais: o ácido clorídrico e o conteúdo gástrico, os quais podem ou não podem conter bactériasou em partículas de alimentos. No modelo de roedor do componente ácido sozinho de aspiração gástrica produz uma resposta inflamatória inicial, como resultado da lesão cáustica directa de pH baixo no epitélio das vias aéreas. Esta é seguida por uma infiltração de neutrófilos e de uma resposta inflamatória em 4-6 h. 4 Estes dois factores em última análise, levar à destruição da integridade microvascular pulmonar levando ao extravasamento de líquidos e proteínas em alvéolos e vias aéreas. Para entender essa fisiopatologia e para investigar possíveis intervenções terapêuticas, é importante desenvolver e caracterizar um modelo animal que elucida os mecanismos subjacentes envolvidos. Um aspirado ácida só deve ser volumosa ou com um pH baixo o suficiente para ignorar a capacidade de tamponamento da árvore respiratória e atingir os alvéolos. Se isso não ocorrer, apenas transitória superior, a realização de lesões das vias aéreas ocorre que é menos provável de levar à sequelas graves de SDRA. 5 &lt;/ Sup&gt; Para emular um evento aspiração com precisão com epitélio alveolar lesionado, é importante para ignorar as defesas naturais do animal. Usando um modelo de ratinho de aspiração para produzir um ALI que imita a lesão gástrica ácida visto nos seres humanos, um deve levar em conta as diferenças na árvore brônquica-traqueia. A técnica de traqueostomia aberta que este método utiliza ignora as diferenças entre murino e árvores respiratórias humanas e modelos a lesão de uma forma que reproduz ALI tanto fisiologicamente e histologicamente. Historicamente, a intubação intratraqueal foi usada para gerar ALI, no entanto, considera-se difícil de realizar em ratinhos sem ferimento da laringe. Portanto, este método oferece uma alternativa potencial que produziu resultados consistentes em vários pesquisadores e com procedimento de mortalidade mínima atribuída.

<table><tbody><tr><td>seringa, seringa</td><td>de 309628</td><td></td><td>Becton Dickinson</td> de 1 cc</tr><tr>, agulha <td>de 309646</td><td></td><td>Becton Dickinson</td><td>de 5 cc</td></tr><tr>, agulha <td>305159</td><td></td> <td>Becton Dickinson</td> de<td>22 G x 1 1/</td></tr><tr><td>2",</td> <td>Becton Dickinson</td><td>305111</td><td></td></tr><tr><td>1-O Sutura de Seda Trançada</td><td>Harvard Aparelho 517730</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3" Curvado pinça serrilhada de tecido</td><td>Fine Science Tools</td><td>11065-07</td><td></td></tr><tr><td>Pinça "dentada" de tecido curvo de 3", 1 x 2 dentes</td><td>Fine Science Tools</td><td>11067-07</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de micro dissecação curva de 4"</td> Tesoura de mola de corte de osso <td>Fine Science Tools</td><td>14061-10</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de mola de corte de osso</td><td>Fine Science Tools</td><td>16144-13</td><td></td></tr><tr><td>Hemostático de travamento curvo de 3 1/2"</td><td>Fine Science Tools</td><td>13021-12</td><td></td></tr><tr><td>Grampeador de pele descartável</td><td>3M</td><td>DS-25</td><td></td></tr><tr><td>cânula traqueal (20 gauge x 1/2" adaptador de tubo de aço inoxidável)</td><td>Becton Dickinson</td><td>408210</td><td></td></tr><tr><td>Placa</td><td></td><td></td><td></td>de Dissecção de Inclinação de 60 graus</tr><tr><td>0,5% Bupivacaína</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr>Aplicador <td></td><td></td><td></td><td>de algodão Betadine e "Q-tip"</td></tr></tbody></table>

abrir traqueostomia ácido gástrico aspiração modelo murino de lesão pulmonar aguda resultados em maximal aguda não-letal lung injury

Open Tracheostomy Gastric Acid Aspiration Murine Model of Acute Lung Injury Results in Maximal Acute Nonlethal Lung Injury

pneumonite de ácido é uma das principais causas de lesão pulmonar aguda estéril (ALI) em seres humanos. pneumonite ácido abrange o espectro clínico de assintomática à síndrome do desconforto respiratório agudo (SDRA), caracterizada por alveolite neutrofílica e ferimentos a ambos epitélio alveolar e endotélio vascular. Clinicamente, ARDS é definido pelo início agudo de hipoxemia, infiltrados pulmonares irregulares bilaterais e edema pulmonar não cardiogênico. Estudos em humanos têm nos forneceu informações valiosas sobre as alterações fisiológicas e inflamatórias no pulmão causados ​​por ARDS, o que levou a várias hipóteses sobre os mecanismos subalterno. Infelizmente, as dificuldades que determinam a etiologia da SDRA, bem como uma ampla gama de fisiopatologia resultaram em uma falta de informação crítica de que poderiam ser úteis no desenvolvimento de estratégias terapêuticas. modelos animais translacionais são valiosas quando sua patogênese e fisiopatologia reproduc precisãoEA conceito comprovado em estudos in vitro e cenários clínicos. Apesar de grandes modelos animais (por exemplo, ovelhas) compartilham características da anatomia da árvore traqueia-brônquica humana, modelos murinos fornecer uma série de outras vantagens, incluindo: baixo custo; empréstimos curto ciclo reprodutivo em si a uma maior aquisição de dados; um sistema imunológico bem compreendida; e um genoma bem caracterizados levando à disponibilidade de uma variedade de estirpes de deleção do gene e transgénicos. Um modelo robusto da SDRA induzida de pH baixos requer uma murino ALI que tem como alvo principalmente o epitélio alveolar, secundariamente, o endotélio vascular, bem como as pequenas vias que conduz aos alvéolos. Além disso, uma lesão reprodutível com grandes diferenças entre os diferentes insultos prejudiciais e não prejudiciais é importante. O modelo de aspiração de ácido gástrico murino aqui apresentada usando ácido clorídrico emprega uma traqueostomia aberta e recria um cenário patogênico que reproduz o baixo pH pneumonitis ferimentos em seres humanos. Além disso, este modelo pode ser usado para examinar a interacção de um insulto baixo pH com outras entidades pulmonares prejudiciais (por exemplo, partículas de alimentos, as bactérias patogénicas).

Pulmonar Histopatologia do modelo murino de ácido aspiração Pneumonite Os ratinhos foram feridos como descrito acima e os pulmões foram removidos 24 horas após o insulto de pH baixo, seccionadas e coradas com H &amp; E (Figura 1). células necróticas, perda da arquitetura do parênquima pulmonar, as células e os detritos dentro de espaços aéreos e infiltração significativa PMN são claramente observados. Similar à a...

Este protocolo induz lesão pulmonar aguda em um camundongo que tem estreita fidelidade à patogênese da pneumonite ácida observada em humanos. Geramos uma lesão pulmonar aguda não letal máxima de baixo pH e consideramos as diferenças na estrutura respiratória anatômica roedor-humano usando uma traqueostomia aberta acoplada à liberação de pressão circunferencial.

Abrir traqueostomia ácido gástrico aspiração Modelo murino de lesão pulmonar aguda Resultados em Maximal aguda não-letal Lung Injury

Acid pneumonitis is a major cause of sterile acute lung injury (ALI) in humans. Acid pneumonitis spans the clinical spectrum from asymptomatic to acute ...

O objetivo geral deste modelo de aspiração de ácido gástrico murino é produzir uma lesão pulmonar aguda estéril em um camundongo que tenha estreita fidelidade à patogênese da pneumonite ácida observada em humanos. Esse método pode ajudar a responder a perguntas-chave no ambiente de cuidados intensivos sobre a identificação de estratégias terapêuticas que podem diminuir a gravidade e melhorar o resultado da lesão pulmonar aguda estéril. A principal vantagem dessa técnica é que ela produz um modelo clinicamente relevante que pode tirar proveito dos inúmeros animais geneticamente modificados disponíveis para dissecar os mecanismos envolvidos.Demonstrando o procedimento estarão o Dr. Bruce Davidson, colega e colaborador do corpo docente, e Barbara Mullen, nossa associada sênior de pesquisa comercial. Induzir anestesia em câmara com 2,75% de isoflurano. Confirme se a anestesia foi alcançada pela falta de resposta a uma pitada no dedo do pé e pela aplicação de pomada nos olhos do animal.Use um aparador elétrico para raspar a porção ventral do pescoço e desinfetar a área cirúrgica. Em seguida, use um comprimento de 15 centímetros de uma sutura de seda trançada zero para suspender o camund

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Um modelo murino para o ventilador lesão pulmonar induzida é uma ferramenta importante para estudar uma lesão pulmonar...

Ventilação a pressão controlada para induzir lesão pulmonar aguda em ratos

Este artigo apresenta um método rápido e simples para a administração de bleomicina diretamente na traquéia do mouse através de intubação. As principais vantagens deste método é que ele é altamente reprodutível, fácil de dominar, e não requer equipamento especializado ou tempos de recuperação longos.

Um método melhorado para rápida de intubação da traqueia em Ratos

É apresentado aqui um procedimento passo a passo para induzir ferimento de pulmão agudo nos ratos pela instilação intratraqueal direta do lipopolissacarídeo e para executar a análise de FACS de amostras de sangue, de líquido broncoalveolar do lavagem, e de tecido do pulmão. A invasividade mínima, o manuseio simples, a boa reprodutibilidade e a titulação da severidade da doença são vantagens dessa abordagem.

Induzindo lesão pulmonar aguda em camundongos por instilação de lipopolissacárido intratraqueal direto

A instilação seletiva do ácido intra-brônquico ao pulmão esquerdo nos ratos conduz a ferimento de pulmão agudo unilateral e self-Limited que modela a síndrome de aflição respiratória aguda humana (ARDS) induzida pela aspiração ácida gastric.

Um modelo de lesão pulmonar aguda autolimitada por instilação unilateral de ácido intra-brônquico

Descrevemos um modelo de síndrome de angústia respiratória aguda induzida por ácido clorídrico (ARDS) em leitões que recebem sedação com agentes halogenados, isoflurano e sevoflurano, através de um dispositivo usado para sedação intensiva inalada. Este modelo pode ser usado para investigar os mecanismos biológicos de agentes halogenados em lesões pulmonares e reparos.

Entrega de agente halogenado em modelo suíno de síndrome de angústia respiratória aguda através de um dispositivo tipo unidade de terapia intensiva

O presente protocolo descreve um modelo de lesão pulmonar em camundongos utilizando ácido oleico para mimetizar a síndrome do desconforto respiratório agudo (SDRA). Esse modelo aumenta os mediadores inflamatórios no edema e diminui a complacência pulmonar. O ácido oleico é usado na forma de sal (oleato), uma vez que esta forma fisiológica evita o risco de embolia.

Modelo de Síndrome do Desconforto Respiratório Agudo Induzido por Ácido Oleico em Camundongos

Este manuscrito descreve o estabelecimento de um modelo infeccioso de pneumonia em camundongos e a respectiva caracterização da resolução da lesão juntamente com métodos de crescimento de bactérias e instilação intratraqueal. Uma nova abordagem usando citometria de fluxo de alta dimensão para avaliar a paisagem imune também é descrita.

Modelo experimental para avaliar a resolução da pneumonia

Um modelo cirúrgico de camundongo para criar lesão de reperfusão (RI) de isquemia pulmonar esquerda, mantendo a ventilação e evitando a hipóxia.

Um Modelo de Rato de Intubação Orotraqueal e Cirurgia de Reperfusão de Isquemia Pulmonar Ventilada

Neste trabalho, propomos um protocolo para a administração intratraqueal de lipopolissacarídeo (LPS) via intubação endotraqueal orofaríngea não invasiva. Este método minimiza o trauma do procedimento cirúrgico para o animal e entrega com precisão LPS para a traqueia e, em seguida, para os pulmões.

Instilação não invasiva de lipopolissacarídeo intratraqueal em camundongos

O protocolo descreve um método viável, confiável e reprodutível de pinçamento hilar pulmonar esquerdo que pode ser usado para estudar a lesão de isquemia-reperfusão pulmonar em modelos de camundongos.

Modelo de grampo hilar pulmonar esquerdo murino de lesão de isquemia pulmonar e reperfusão

Neste estudo, uma técnica não invasiva de instilação endotraqueal demonstrou desenvolver ALI em ratos usando um laringoscópio básico para garantir a entrega precisa de LPS aos pulmões. O LPS é injetado por meio de um tubo endotraqueal usando um laringoscópio. A magnitude da lesão pulmonar é avaliada em vários momentos.

Administração endotraqueal não invasiva de lipopolissacarídeo para induzir lesão pulmonar aguda em roedores

Aprenda a induzir lesão pulmonar aguda estéril em camundongos por aspiração de ácido gástrico via traqueostomia aberta. Este modelo reproduz fielmente a pneumonite ácida humana para testar estratégias terapêuticas em cuidados intensivos.

Abrir traqueostomia ácido gástrico aspiração Modelo murino de lesão pulmonar aguda Resultados em Maximal aguda não-letal Lung Injury (Vídeo) | JoVE Journal

Abrir traqueostomia ácido gástrico aspiração Modelo murino de lesão pulmonar aguda Resultados em Maximal aguda não-letal Lung Injury

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