Name: Identificação de ácidos graxos no Bacillus cereus (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: Aprenda a identificar ácidos graxos em bactérias sem purificação prévia usando Bacillus cereus. Este método emprega cromatografia gasosa e espectrometria de massa para determinar ramificações metila e duplas ligações.

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Os autores são gratos a Thomas Mison por seu apoio técnico, e Rachel Kopec para a revisão do manuscrito.

1. As culturas bacterianas <ol><li> Prepara-se uma grama de bactérias (Bacillus cereus ATCC 14579) estirpe espalhando 100 jil de uma cultura de uma noite da estirpe incubada a 30 ° C em meio LB (meio de Luria-Bertani), sobre a superfície de uma placa de meio LB com agar. Incubar a placa durante a noite a 30 ° C. </li></ol> 2. ECL: Comprimento Cadeia Equivalent <ol><li> Calcular ECL como se segue: <img alt="Equação" src="/files/ftp_upload/54960/54960eq1.jpg" /> com: i, o soluto de interesse; n, o número de carbono do éster de metilo de ácido gordo de cadeia linear saturado eluindo antes soluto I; N + 1, o número de carbono do éster de metilo de ácido gordo saturado de cadeia linear eluindo depois de soluto I; Rti, Rtn, Rt (n + 1) os tempos de retenção dos picos de FAME descritos acima. NOTA: obter os tempos de retenção dos ésteres de ácidos gordos saturados de cadeia reta metilo por injecção de uma mistura de padrões (BAME). </li></ol> 3. FAME Preparação e Análise <ol><li> De forma a obter ácidos gordos de lípidos, células bacterianas colheita por raspagem das colónias das placas de agar e transferir 40 mg (peso fresco, equivalente a 10 células viáveis 9) de bactérias dentro de um tubo de vidro de 10 ml com tampas de rosca e vedantes de PTFE. </li><li> Execute transesterificação via o éster método de ligação 14,15 detalhado abaixo. <ol><li> Adicionar 5 ml de 0,2 M de KOH em metanol às células bacterianas frescas e incubar a 37 ° C durante 1 h. Esta reacção consiste em metanólise alcalina, quebrar a ligação éster no lípido e a produção de ésteres metílicos de ácidos gordos. </li><li> Adicionar 1 ml de ácido acético a 1 M para baixar o pH para 7,0. Verificar o pH com tiras de teste de pH. </li><li> Adicionar 3 ml de hexano para extrair FAMEs. </li><li> Transferir o sobrenadante (fase orgânica) para tubos limpos e concentra-se por evaporação à temperatura ambiente, sob um fluxo contínuo de azoto para se obter cerca de 200 ulde extrato. Transferir a amostra para um frasco de GC com inserção. </li><li> Injetar extratos em uma espectrometria de cromatografia de massa de gás do sistema (GC-MS). </li></ol></li></ol> 4. GC / Condições MS <ol><li> Injectar as amostras FAME para um instrumento de GC-MS equipado com uma coluna capilar ZB-WAX (comprimento, 30 m; diâmetro, 0,25 mm, espessura do filme, 0,25 um). </li><li> Definir a porta de injecção (no modo de splitless) temperatura a 250 ° C. Use hélio como um gás de transporte, com uma velocidade linear de 37 cm / seg. Mantenha a temperatura do forno a 50 ° C durante 1 min, aumentar para 190 ° C a uma velocidade de 20 ° C / min, e aumentar ainda mais a uma temperatura final de 230 ° C a uma velocidade de 2 ° C / min. </li><li> Para a MS, gravar os espectros de massa por ionização de electrão (El) a 70 eV, e definir a aquisição da corrente iónica total entre 50 e 400 unidades de massa atómica (amu) (2 leituras / seg). </li><li> Quando necessário, injetar derivados DMOX e picolinil sob a mesma condição except o programa de temperatura do forno como se segue: DMOX: 50 ° C (1 min), 20 ° C / min até 210 ° C e 2 ° C / min até 240 ° C (5 min); Picolinilo: 6 ° C (1 min), 20 ° C / min até 220 ° C e 2 ° C / min até 250 ° C (20 min). </li></ol> 5. Preparação de éster picolinilo 16 FAME <ol><li> Evapora-se o extracto de FAME da secção 3 com um fluxo de azoto (pelo menos 10 mg de material seco) e dissolver em 1 ml de diclorometano seco. </li><li> Prepara-se uma solução 1,0 M de ter-butóxido de potássio t em tetra-hidrofurano. </li><li> Adicione o extrato de FAME e 0,2 ml de 3 piridinametanol a 0,1 ml de solução efectuadas no passo 5.2. </li><li> Aquece-se a solução a 40 ° C durante 30 minutos num frasco fechado. </li><li> Após arrefecimento até à temperatura ambiente, adicionar água purificada desionizada (2 ml, ver Tabela Materiais) e hexano (4 ml). Misturar com um vórtice, permitir fase para separar e recolher a fase orgânica. </li><li> Dry-lo por adição de sulfato de sódio anidro, até a fase orgânica é perfeitamente claro. Transferi-lo para um tubo limpo. Em seguida, evapora-se a 200 ul. Transferir a amostra para um frasco de GC com inserção. </li></ol> 6. Preparação de FAME DMOX 17 <ol><li> Evapora-se o extracto de FAME da secção 3 com um fluxo de azoto (material seco de pelo menos 10 mg). </li><li> Ao extracto seco FAME, adicionar 250 mg de 2-amino-2-metil-1-propanol. Lavar o reactor com azoto, adicionar uma rolha, e colocá-lo em um bloco de aquecimento durante a noite a 190 ° C. </li><li> Após arrefecimento até à temperatura ambiente, adicionar 3 ml de diclorometano para o tubo, e 5 ml de água purificada desionizada (Ver Tabela Materiais). </li><li> Agitar por separação de fases e em seguida, remover a fase aquosa. </li><li> Lava-se a fase orgânica com 5 ml de água. Agitar por separação de fases e em seguida, remover a fase aquosa. </li><li> Seco por adição de sulfato de sódio anidro, até a fase orgânica é perfeitamente clara etransferi-lo para um tubo limpo. Evapora-se sob uma corrente de azoto até atingir um volume de 200 ul. Transferir a amostra para um frasco de GC com inserção. </li></ol>

<ol><li>Christie, W. W., Han, X. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aChristie%2C+WW+%22Lipid+Analysis+4th+Edition%22">Lipid Analysis 4th Edition</a>. , Oily press. (2010).</li>
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<li>Zhang, J. Y., Yu, Q. T., Liu, B. N., Huang, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+modification+in+mass+spectrometry+IV-2-alkenyl-4%2C4-dimethyloxazolines+as+derivatives+for+the+double+bond+location+of+long-chain+olefinic+acids%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Mass+Spect%22%5BJournal%5D)">Chemical modification in mass spectrometry IV-2-alkenyl-4,4-dimethyloxazolines as derivatives for the double bond location of long-chain olefinic acids.</a> Biol Mass Spect. 15 (1), 33-44 (1988).</li>
<li>de Sarrau, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unsaturated+fatty+acids+from+food+and+in+the+growth+medium+improve+growth+of+Bacillus+cereus+under+cold+and+anaerobic+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Unsaturated fatty acids from food and in the growth medium improve growth of Bacillus cereus under cold and anaerobic conditions.</a> Food Microbiol. 36 (2), 113-122 (2013).</li>
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<li>Stransky, K., Jursik, T., Vitek, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standard+equivalent+chain+length+values+of+monoenic+and+polyenic+%28methylene+interrupted%29+fatty+acids%5BTitle%5D)+AND+%22J+High+Res+Chromatogr%22%5BJournal%5D)">Standard equivalent chain length values of monoenic and polyenic (methylene interrupted) fatty acids.</a> J High Res Chromatogr. 20 (3), 143-158 (1997).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Os perfis de cromatogramas FAs mostrados na Tabela 1 correspondem a B. cereus ATCC 14579 cresceram em uma superfície da placa de agar. Perfis semelhantes foram obtidos quando a bactéria foi cultivada em meio líquido gaseificado à mesma temperatura 8. No caso de bactérias cultivadas em meio líquido, a biomassa bacteriana é recolhido por centrifugação do meio de crescimento e podem ser lavados de acordo com protocolos anteriormente descritos, dependendo das condições de crescimento <su...

cromatografia de ácido gordo metil éster (FAME) gasosa (GC) é um método essencial para a caracterização de lípidos. Ele separa rapidamente e quantifica os vários ácidos gordos (FAS) de uma amostra após um curto passo de extracção. Os derivados de ésteres de metilo são altamente voláteis, estável e inerte no sentido da coluna cromatográfica, evitando desse modo os picos de decantação. A sua identificação é bastante simples quando a amostra é constituída por FAs bem conhecidas porque os perfis cromatográficos são publicados nem em relação aos padrões. Além disso, a injecção repetida de padrões de calibração para a quantificação de diferentes FAs não é necessário, devido à sua resposta quase constante para a detecção de ionização de chama (FID) 1. Além FID, espectrometria de massa de detecção (MS) fornece um conjunto complementar de informações para confirmar FAMEs. No entanto, quando EMAGs são cobrados através de ionização de elétrons (EI), os espectros resultantes nem sempre permitem the identificação de estrutura fina FA. Por exemplo, a posição de ramificação (isto é, um grupo metilo ramificado) é difícil prever porque os iões de diagnóstico são difíceis de detectar uma característica e a alteração na abundância de iões alvo é dependente da máquina, evitando a utilização de espectros de massa bibliotecas 2. Outro desafio está em identificar a posição ligação dupla porque EI provoca a migração ligação dupla. Assim, isómeros FA com diferentes posições de ligação dupla não pode ser diferenciados pelo seu espectro de massa. Felizmente, outras ferramentas têm sido desenvolvidos para a identificação FA. Por exemplo, a presença e a posição de ramificação ou de ligações duplas em FAs pode ser conjecturado calculando o comprimento de cadeia equivalente (ECL) 3. Outros métodos de derivatização resultar em diferentes espectros de massa, dependente da localização de uma ligação dupla ou um grupo metilo ramificado. 4,4-dimetil derivados oxazolina (DMOX) 4 permitem easY identificação da posição das ligações duplas de ácidos gordos monoinsaturados. 3-pyridylcarbinyl éster (éster picolinil) derivados de permitir uma identificação inequívoca da localização de metilo ramificado CC 5. Combinando retenção cromatográfica (ECL) e espectro de massa (DMOX e picolinil) informação permite a identificação da maioria dos CC sem a necessidade de utilizar métodos de complexos de purificação, tal como exigido para a ressonância magnética nuclear (RMN) do espectro, o método incontestável para a caracterização estrutural 1 . As bactérias do gênero Bacillus, que incluem alguns patógenos humanos e animais, são capazes de colonizar muito diversos nichos e são, portanto, amplamente distribuído no ambiente 6. Entre o género Bacillus, a composição de FA é influenciada pela nicho ecológico das espécies com modulações nos padrões de FA para se adaptar a uma vasta gama de mudanças ambientais (por exemplo, meio de crescimento, temperatura,pH, etc.) 7-9. Devido à relativa homogeneidade do padrão de FA em várias espécies do género Bacillus durante o crescimento em condições padronizadas, a determinação da composição de FA é um dos critérios essenciais utilizados para definir as espécies de Bacillus. Um atributo exclusivo do gênero Bacillus é a abundância de FAs de cadeia ramificada contendo 12-17 carbonos 10-12 com a relação entre a ISO e Anteiso isômeros sendo um factor determinante da adaptação às condições ambientais. As espécies de Bacillus também adaptar-se a variações ambientais, alterando a proporção de ácidos gordos insaturados. Em algumas espécies, tais como Bacillus cereus, duas dessaturases ácidos graxos criar ligações duplas em diferentes posições da cadeia de alquilo 13 com diferentes papéis na adaptação 9. O exemplo do género Bacillus ilustra a importância de identificar precisamente a posição da ligação dupla e FA ramificação. coletarvamente, a identificação de padrões de Bacillus FA tem várias aplicações úteis. Aqui, nós propomos uma nova abordagem GC-MS para Bacillus FA identificação padrão que supera as limitações inerentes de uma análise de GC-MS clássica. Esta abordagem inovadora pode ser utilizado directamente no material biológico em bruto, e é composto de uma combinação de técnicas existentes: informações sobre os tempos de retenção (ECL) e espectros de massa de derivados de diferentes FAs (FAME, DMOX e éster-picolinil). Nós usamos a seguinte FA nomenclatura. I, A, e n indicam iso, Anteiso metil ramificada, e ácido gordo de cadeia linear, respectivamente. CC insaturadas foram nomeados por C: d em que C é o número de átomos de carbono no ácido gordo e d é o número de ligações duplas. Δ x indica a posição da ligação dupla, em que a ligação dupla está localizada na ligação carbono-carbono Xth, contando a partir da extremidade de ácido carboxílico.

<table><tbody><tr><td>Coluna capilar GC/MS</td><td>Shimadzu</td><td>QP2010</td><td></td></tr><tr><td>ZB WAX</td><td>Phenomenex</td><td>7HG-G007-11</td><td>30 m x 0.25 mm x 0.25&nbsp; &micro; m</td></tr><tr><td>Metanol Lichrosolv</td><td>VWR</td><td>1.06018.2500</td><td></td></tr><tr><td>hidróxido de potássio</td><td>Aldrich</td><td>P1767</td><td></td></tr><tr><td>THF</td><td>Hipersolv Chromanorm</td><td>28559.320</td><td></td></tr><tr><td>Diclorometano</td><td>Hipersolv Chromanorm</td><td>23373.320</td><td></td></tr><tr><td>Hexano</td><td>Hipersolv Chromanorm</td><td>24575.320</td><td></td></tr><tr><td>3-piridinemetanol</td><td>Aldrich</td><td>P6-680-7</td><td></td></tr><tr><td>tertiobutóxido de potássio</td><td>Aldrich</td><td>156671</td><td></td></tr><tr><td>2-amino-2-metil-1-propanol</td><td></td><td>A-9879</td><td></td></tr><tr><td>MilliQ Acadêmico</td><td>Millipore</td><td>ZMQS50001</td><td></td></tr><tr><td>Mistura de Éster Metílico de Ácido Bacteriano (BAME)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>47080-U Supelco</td><td></td></tr></tbody></table>

identificação de ácidos graxos no<em&gt; bacillus cereus</em

Identification of Fatty Acids in Bacillus cereus

As espécies de Bacillus contêm cadeia ramificada e ácidos graxos insaturados (FAS), com diversas posições do ramo de metilo (ISO ou anteiso) e da ligação dupla. Alterações na composição da FA desempenha um papel crucial na adaptação de bactérias ao seu ambiente. Estas modificações implicar uma mudança na proporção de iso contra anteiso ramificada CC, e na proporção de CC insaturado em relação ao FAS saturado, com ligações duplas em posições específicas criadas. Identificação precisa do perfil FA é necessário compreender os mecanismos de adaptação de espécies de Bacillus. Muitas das FAs de Bacillus não estão comercialmente disponíveis. A estratégia aqui proposto identifica CC através da combinação de informação sobre o tempo de retenção (por cálculo do comprimento de cadeia equivalente (ECL)) com o espectro de massa de três tipos de derivados FA: ésteres metílicos de ácido gordo (FAMEs), 4,4-dimetil-oxazolina derivados (DMOX), eéster de 3-pyridylcarbinyl (picolinilo). Este método pode identificar os CC sem a necessidade de purificar o CC desconhecido. Comparando os perfis cromatográficos de FAME preparado a partir de Bacillus cereus com uma mistura comercial de padrões permite a identificação de cadeia linear-CC, o cálculo da ECL, e saturada hipóteses sobre a identidade da outra FAs. FAMEs saturado ramificado de CC, iso ou anteiso, exibir uma mudança negativa constante no ECL, em comparação ao FAS lineares saturados com o mesmo número de carbonos. FAMEs do FAS insaturado pode ser detectada pela massa dos seus iões moleculares, e conduzir a uma mudança positiva na LCE em relação ao FAS saturados correspondentes. A posição de ramificação de AF e a posição da ligação dupla CC insaturado pode ser identificado por espectros de massa de ionização de electrões de derivados de picolinilo e DMOX, respectivamente. Esta abordagem identifica todo o ramo saturado desconhecidoed FAs, insaturados de cadeia linear FAs e AF ramificados insaturados a partir do extrato de B. cereus.

A estratégia de identificação FA a partir de células bacterianas é apresentado na Figura 1. Cada etapa fornece informações espectrais complementar ou informações sobre retenção cromatográfica. Passo 1 consiste de identificação preliminar FA usando uma solução padrão. Passo 2 permite a interpretação de espectros EI FAME e sua ECL, de forma a identificar os produtos tentativamente. Passo 3 identifica a localização exata de ramificação em cadeia ramificada-FAs. Finalmente, ...

Propomos um protocolo para identificar ácidos graxos sem a necessidade de purificá-los. Combina informações sobre os tempos de retenção com os espectros de massa de três tipos de derivados de ácidos gordos: ésteres metílicos de ácidos gordos (FAME), derivados de 4,4-dimetiloxazolina (DMOX) e ésteres 3-piridilcarbinílicos (picolinil).

Identificação de ácidos graxos no<em&gt; Bacillus cereus</em

The Bacillus species contain branched chain and unsaturated fatty acids (FAs) with diverse positions of the methyl branch (iso or anteiso) and of the ...

O objetivo geral deste protocolo é identificar ácidos graxos de bactérias e determinar a posição de ramificações metílicas e ligações duplas. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de bacteriologia, como o papel dos ácidos graxos na forma como as bactérias se adaptam ao seu ambiente. A principal vantagem desta técnica é que a proliferação de ácidos graxos não é necessária.As implicações desta técnica estendem-se à identificação bacteriana devido à importância da composição de ácidos graxos na taxonomia bacteriana. Embora este método tenha sido desenvolvido com a bactéria Bacillus cereus, ele também é muito relevante para o estudo de outras espécies que contêm ácidos graxos de cadeia ramificada. Geralmente, durante o desenvolvimento deste método, enfrentamos dificuldades.Como o método atual de identificação de ácidos graxos não identifica ramificações metil na posição da ligação dupla. Para iniciar este procedimento, prepare uma camada bacteriana espalhando 100 microlitros de uma cultura de 24 horas da linhagem, incubada a 30 graus Celsius em caldo LB, sobre a superfície da placa com meio de ágar LB. Incube a placa durante a noite a 30 graus Celsius.Para obter ácidos graxos lipídicos, colete as células bacterianas raspando colônias da placa de ágar e transfira aproximadamente 40 miligramas para um tubo de vidro de 10 mililitros com tampa rosqueável e selo de PTFE. Para realizar a transesterificação, adicione 5 mililitros de hidróxido de potássio 0,2 molar em metanol às células bacterianas frescas.Vortex, e incubar a 37 graus Celsius por uma hora. Em seguida, adicione um mililitro de ácido acético um molar para reduzir o pH a sete. Agora, adicione três mililitros de hexano e vortex por um minuto para extrair os ésteres metílicos de ácidos graxos ou FAMEs.Transfira a fase superior para tubos limpos e concentre por evaporação à temperatura ambiente sob fluxo contínuo de nitrogênio, obtendo aproximadamente 200 microlitros do extrato de FAME. Em seguida, transfira os extratos para frascos de cromatografia gasosa com inserções. Injete os extratos em um sistema de espectrometria de massas acoplada à cromatografia gasosa, ou GC-MS, equipado com uma coluna capilar.Defina a temperatura do injetor em 250 graus Celsius. Mantenha a temperatura do forno a 50 graus Celsius por um minuto. Aumente até 190 graus Celsius a uma taxa de 20 graus Celsius por minuto e eleve até a temperatura final de 230 graus Celsius a uma taxa de dois graus Celsius por minuto.Para a EM, registre os espectros de massa por ionização eletrônica, ou EI, a 70 elétrons-volt e defina a aquisição da corrente total de íons entre 50 e 400 unidades de massa atômica, ou AMU. Dissolva uma amostra do extrato de FAME seco em um mililitro de diclorometano seco. Em seguida, adicione a solução do extrato e 0,2 mililitros de 3-piridinemetal a 0,1 mililitros de tert-butoxido de potássio um molar em tetraidrofuran.Aqueça a solução a 40 graus Celsius por 30 minutos em um frasco fechado. Após resfriar a solução à temperatura ambiente, adicione dois mililitros de água desionizada purificada e quatro mililitros de hexano. Agite a solução por um minuto com um misturador de vórtex.Após permitir a separação das fases, colete a fase orgânica superior. Em seguida, adicione sulfato de sódio anidro até que a fase orgânica fique límpida. Transfira a fase orgânica para um tubo limpo e, então, evapore a fase orgânica sob fluxo de nitrogênio até atingir um volume de aproximadamente 200 microlitros.Adicione 250 miligramas de 2-amino-2-metil-1-propanol à amostra do extrato de FAME seco. Passe nitrogênio no tubo e feche-o com uma rolha. Em seguida, aqueça a solução a 190 graus Celsius durante a noite.Após resfriar a solução até a temperatura ambiente, adicione três mililitros de diclorometano e cinco mililitros de água desionizada purificada. Agite a mistura em vórtex e deixe as fases separarem. Em seguida, remova a fase aquosa.Em seguida, lave a fase orgânica com cinco mililitros de água. Adicione sulfato de sódio anidro até que a fase orgânica fique límpida. Após transferir a fase orgânica para um novo tubo de ensaio, evapore-a sob fluxo de nitrogênio até atingir um volume de aproximadamente 200 microlitros.O espectro de massa do derivado picolinílico I16 confirma a ramificação metílica. A diferença de 28 UMA entre os íons em 304 e 332 corresponde a fragmentos gerados antes e depois do carbono ramificado. Os íons diagnósticos, 113 e 126, característicos de derivados DMOX, são mostrados aqui.O íon molecular 307 é característico do isômero 16:1, e uma diferença de 12 AMU entre 196 e 208 indica uma ligação dupla no carbono. A diferença de 12 AMU não é mais observada quando a ligação dupla está antes do carbono 7. O íon 153 intenso, característico de uma ligação dupla no carbono 5, e o íon molecular 307 no espectro de massa do derivado DMOX identificaram este composto como n16 um delta cinco.O íon 307 do derivado DMOX e o íon 345 do derivado picolinílico indicam um isômero de ácido graxo 16:1. Um intervalo de 28 AMU indica a posição da ramificação, e um intervalo de 12 AMU para DMOX e 26 AMU para o éster picolinílico identifica a dupla ligação. Os ácidos graxos e os íons diagnósticos correspondentes identificados em Bacillus cereus estão listados aqui.Os íons diagnósticos identificam a posição da ramificação metílica e das ligações duplas na cadeia carbônica para os derivados DMOX e ésteres picolinílicos. Uma vez dominada, esta técnica pode ser realizada em dois dias, se for executada corretamente. Após este procedimento, o ácido graxo pode ser quantificado por GC-MS e pela liberação dos derivados FAME.Após seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para pesquisadores na área de bacteriologia explorarem a diversidade bacteriana e os mecanismos de adaptação bacteriana. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como estudar ácidos graxos em bactérias, incluindo ácidos graxos metilramificados e insaturados. Não se esqueça de que o manuseio de reagentes pode ser extremamente perigoso, e precauções, como trabalhar em uma capela de exaustão e usar luvas, devem sempre ser tomadas durante a realização deste procedimento.

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

Recentemente, relatou uma nova abordagem para a geração de sondas DNAzyme fluorogênicos que podem ser aplicadas para criar um simples, "mistura-e-ler" teste de fluorescência para a detecção bacteriana. Estas sondas de DNA especiais catalisar a clivagem de um cromóforo-modificado substrato DNA-RNA quimérico, na presença de mistura extracelular em bruto (CEM) produzida por uma bactéria específica, assim, traduzindo a detecção de bactérias em geração do sinal de fluorescência. Neste relatório, irá...

Detecção de bactérias utilizando DNAzymes fluorogénicas

Fonte: Ginies, C., et al. Identificação de ácidos graxos em Bacillus cereus. J. Vis. Exp. (2016)Este vídeo demonstra o processo de preparação de ésteres metílicos de ácidos graxos (FAMEs) a partir de amostras bacterianas, tratando a biomassa com uma solução alcalina, seguida de separação de fases e evaporação do solvente para análise a jusante.

Preparação de Ésteres Metílicos de Ácidos Graxos (FAMEs) a partir de Biomassa Bacteriana

Isolamento e caracterização do domínio de lípido A do lipopolissacárido (LPS) da bactéria gram-negativa proporciona uma visão sobre os mecanismos da superfície celular com base de resistência ao antibiótico, a sobrevivência das bactérias e forma, e como quimicamente lípido A diversidade de espécies moleculares diferencialmente hospedeiras modular respostas imunitárias inatas.

Isolamento e Caracterização química do lípido A de bactérias Gram-negativas

Um método para a determinação do teor de ácidos gordos e composição de microalgas baseado em ruptura mecânica da célula, a extracção de lípidos à base de solvente, a transesterificação, e quantificação e identificação de ácidos gordos por cromatografia em fase gasosa é descrito. Uma norma interna tripentadecanoin é usado para compensar as possíveis perdas durante a extração e transesterificação incompleta.

Análise do conteúdo de ácidos graxos e composição em Microalgas

&lt;em&gt; Caenorhabditis elegan &lt;/ em&gt; é um modelo útil para explorar as funções de ácidos graxos poliinsaturados em desenvolvimento e fisiologia. Este protocolo descreve um método eficiente de complementar o &lt;em&gt; C. elegans &lt;/ em&gt; dieta com ácidos graxos poliinsaturados.

A suplementação dietética de ácidos graxos poliinsaturados em<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

A abordagem de marcador trófica de ácido graxo, ou seja, a assimilação dos ácidos graxos como molécula inteira e transferência em tecido de consumidor com n ou menor modificação, é dificultado por lacunas de conhecimento no metabolismo de ácidos graxos de invertebrados de solo pequeno. Isotopólogo de criação de perfil é fornecida como uma valiosa ferramenta de desvencilhar interações tróficas.

Ácido graxo 13C Isotopólogo de criação de perfil fornece insights sobre transferência de carbono trófica e metabolismo lipídico dos consumidores invertebrados

Este método fornece um quadro para estudar a incorporação de ácidos graxos exógenos de fontes hospedeiras complexas em membranas bacterianas, particularmente Staphylococcus aureus. Para conseguir isto, os protocolos para o enriquecimento de partículas da lipoproteína da gema de ovo da galinha e do perfil de ácido gordo subseqüente de fosfolipídios bacterianos que utilizam a espectrometria maciça são descritos.

Isolação de partículas da lipoproteína da gema de ovo da galinha para o estudo da incorporação do ácido gordo do micróbio patogénico bacteriano em phospholipids da membrana

Um protocolo é apresentado para extrair o conteúdo lipídico total da parede celular de uma ampla gama de micobactérias. Além disso, são mostrados protocolos de extração e analíticas dos diferentes tipos de ácidos micólicos. Um protocolo cromatográfico de camada fina para monitorar esses compostos micobacterianos também é fornecido.

Análise da Composição Lipídica de Mycobacteria por Cromatografia de Camada Fina

Aqui apresentamos um protocolo para a identificação rápida de proteínas produzidas por bactérias patogênicas genomicamente sequenciadas usando espectrometria de massa maldi-TOF-TOF e análise proteômica de cima para baixo com software desenvolvido internamente. Íons proteicos metastáveis fragmentom por causa do efeito ácido aspartic e essa especificidade é explorada para identificação de proteínas.

Identificação de Proteínas de Imunidade Antibacteriana em Escherichia coli usando MALDI-TOF-TOF-MS/MS e Análise Proteômica De Cima Para Baixo

Apresentamos um método quantitativo de baixo custo utilizando óxido de deutério e cromatografia gasosa acoplada à espectrometria de massas (GCMS) para a análise da lipogênese de novo de ácidos graxos totais em tecido adiposo marrom in vivo.

Determinação quantitativa da síntese de novos ácidos graxos em tecido adiposo marrom utilizando óxido de deutério

Aprenda a identificar ácidos graxos em bactérias sem purificação prévia usando Bacillus cereus. Este método emprega cromatografia gasosa e espectrometria de massa para determinar ramificações metila e duplas ligações.

Identificação de ácidos graxos no

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