24 de março de 2017
Descrevemos o isolamento da matriz extracelular cardíaca de camundongos controle C57Bl/6J, camundongos de pele apertada e camundongos de pele apertada tratados com o peptídeo inibitório IRF5. Também descrevemos os estudos de vasodilatação nos vasos isolados de C57Bl / 6J, camundongos de pele firme e camundongos de pele apertada tratados com o peptídeo inibitório IRF5.
O objetivo geral desses procedimentos para isolamento da matriz extracelular e vasodilatação ex vivo é estudar o tratamento com peptídeos inibitórios de IRF5 em roedores. Este método pode ajudar a responder como as mudanças na matriz extracelular podem aumentar ou atenuar a progressão da doença. A principal vantagem dos estudos de vasodilatação é nos dar uma visão dos processos in vivo sem ter que levar em consideração todos os componentes de sinalização.
O isolamento da matriz extracelular cardíaca pode ser aplicado a outros órgãos, como membros posteriores ou pulmão. Tivemos a ideia pela primeira vez quando começamos a nos concentrar na duplicação da fibrilina um no camundongo de pele apertada e reconhecemos o impacto da matriz extracelular alterada e do comportamento celular. Depois de anestesiar o mouse e prepará-lo para a cirurgia, abra a pele usando uma tesoura.
Corte do tórax para a lateral ao maxilar com cuidado para não perturbar o tecido subjacente em direção à frente da mandíbula. Em seguida, disseque a artéria fascial removendo o tecido mole ao seu redor. Ao fazer isso, tome cuidado para evitar danificar a artéria.
Banhe o tecido exposto em um tampão de esfregão para que permaneçam saudáveis. Uma vez que a artéria fascial tenha sido totalmente exposta, segure a fascial proximal à primeira bifurcação distal ao local onde a artéria será cortada. Em seguida, corte-o da artéria-mãe e segure a artéria fascial com a pinça.
Corte os dois ramos que saem do fascial e, em seguida, levante suavemente o vaso enquanto corta as conexões com o tecido circundante até que a bifurcação seja alcançada. Na bifurcação, corte as duas artérias-filhas para liberar o vaso e transfira-o para um prato de tampão de esfregão, onde permanecerá hidratado até que seja necessário. Para medir a vasodilatação, primeiro prepare-se para canular os vasos.
Carregue pipetas de vidro com um diâmetro terminal de 125 a 175 mícrons cheias de tampão de esfregonas. Encha também os reservatórios de solução com esfregões. Agora canule os vasos isolados.
Amarre-os em pipetas de vidro usando sutura oftálmica. Certifique-se de evitar a formação de bolhas de ar nas pipetas. Em seguida, monte as câmaras dos vasos em um microscópio invertido com o acessório da câmera de vídeo.
Execute o vídeo através do sistema de medição do paquímetro de vídeo para uma medição na tela dos recipientes. Agora pressurize os vasos usando um processo de duas etapas. Primeiro, levante os reservatórios cheios de esfregões a uma altura acima do vaso para 20 milímetros de mercúrio de pressão.
Abra a linha com os esfregões para o recipiente. À medida que o vaso pressuriza, procure sinais de vazamento ao redor dos dormentes e ao longo do comprimento do vaso. Se nenhum vazamento for encontrado, eleve os reservatórios para produzir 60 milímetros de mercúrio de pressão.
Em seguida, inspecione os vasos quanto a vazamentos novamente. Uma vez que a pressão é mantida sem vazamentos, equilibre o vaso por 30 minutos a essa pressão. Depois de equilibrado, meça a vasodilatação em resposta a um composto de interesse.
Primeiro, contraia o navio em metade a três quartos, adicionando U46619. Deixe a solução banhar os recipientes por seis minutos para estabilizar. Em seguida, adicione gradualmente o composto de teste à solução do banho, como acetilcolina.
De dois em dois minutos, aumentar a concentração da solução de ensaio no banho em 10, começando em 000001 molar e progredindo até 001 molar. As mudanças na vasodilatação levantaram questões sobre a sinalização. Mas nosso foco está no coração.
Para reduzir o uso de animais, optamos por isolar a matriz extracelular cardíaca para focar na sinalização iniciada de fora. Comece coletando o coração de um camundongo anestesiado. Transfira-o para um copo carregado com 15 mililitros de dodecil sulfato de sódio hipertônico a um por cento.
Mantenha a solução mexendo suavemente em uma placa de agitação em temperatura ambiente por 18 horas. No dia seguinte, troque a solução para 15 mililitros de 5% de triton X100 por 30 minutos, seguido de 15 mililitros de PBS por 15 minutos. Em seguida, congele o ECM e o nitrogênio líquido em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro.
Depois de congelado, transfira o tecido para um almofariz e pilão pré-resfriados e triture-o em pó. Suspenda o pó em PBS com antibiótico adicionado a uma concentração de 1:100 em uma solução viscosa. Sonicar a suspensão durante 30 a 60 segundos num banho de gelo a uma temperatura de alta sonicação.
A proteína ECM agora está isolada e deve permanecer fria. Antes de usar a proteína, meça sua concentração usando um ensaio de Bradford. O peptídeo IRF5D é um peptídeo inibitório que difere muito do IRF5 normal.
O IRF5D tem apenas 17 aminoácidos e se liga ao local de fosforilação do IRF5. Isso evita a fosforilação e a homodimerização, interferindo na formação do estado ativo IRF5. Camundongos heterozigotos de pele apertada foram tratados com IRF5D por via subcutânea por três semanas.
O número de neutrófilos e CD64 foi diminuído conforme determinado por imuno-histoquímica no número médio de células coradas por campo de visão. Os tratamentos com IRF5D melhoraram a vasodilatação induzida por acetilcolina das artérias fasciais em camundongos heterozigotos de pele apertada tratados com IRF5D em comparação com aqueles tratados com tampão fosfato. Em miócitos cultivados derivados do tecido cardíaco dos camundongos transgênicos, havia mais células positivas para IRF5 em culturas de camundongos heterozigotos de pele apertada do que em camundongos controle.
O tratamento de qualquer cultura com IRF5D resultou em uma redução de núcleos positivos para IRF5. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como descelularizar um coração. Uma vez dominada, essa técnica pode ser transposta para muitos órgãos e ajudar a responder a uma variedade de perguntas E lembre-se de que é importante não digerir demais a matriz.
Você também deve ter uma boa compreensão de como dissecar e pendurar a artéria fascial. Uma vez dominada, essa técnica deve levar aproximadamente 60 minutos e pode ser usada em praticamente qualquer leito vascular. É importante lembrar o quão frágil é o endotélio, proceda com cautela durante a dissecção.
Não é incomum ter músculo liso saudável e endotélio danificado.
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Este artigo descreve o isolamento da matriz extracelular cardíaca de diversos modelos de camundongos e os subsequentes estudos de vasodilatação. O foco está em compreender os efeitos do tratamento com peptídeo inibidor de IRF5 na progressão da doença.
Este método permite a desmistificação mecanicista de IRF5 como alvo terapêutico ao associar o remodelamento da matriz extracelular à disfunção vascular na fibrose inflamatória. O ensaio de vasodilatação ex vivo fornece leituras quantitativas e reproduzíveis da função endotelial, independentes de fatores de confusão sistêmicos, apoiando a validação de alvos em modelos pré-clínicos. O isolamento da matriz extracelular relevante para a doença facilita a triagem fenotípica e a elucidação de vias para a descoberta de fármacos anti-fibróticos.
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a avaliação da eficácia pré-clínica, permitindo o design iterativo de compostos moduladores de IRF5 com base em fenótipos vasculares e da matriz.