24 de janeiro de 2018
Este protocolo descreve um romance tridimensional em vitro modelo, onde as células do estroma corneana e diferenciada de células neuronais são cultivadas juntos para ajudar na análise e compreensão das interações dos tipos de célula de dois.
O objetivo geral deste protocolo é investigar as interações celulares entre as células estromais da córnea humana e as células neuronais em sua matriz extracelular natural. O protocolo pode ser expandido para estudar doenças e distrofias da córnea, como ceratocone, ceratopatia diabética e distrofia de Fuchs. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da biologia da córnea humana, identificando os mecanismos subjacentes e defeitos nas interações nervosas do estroma durante uma doença ou distrofia específica da córnea.
A principal vantagem dessa técnica é que as células podem secretar sua própria matriz extracelular in vitro, que fornece um modelo melhor e mais preciso do tecido corneano humano real in vivo. As implicações dessa técnica se estendem à terapia de doenças da córnea, porque a avaliação das interações célula-célula e matriz extracelular celular garantirá uma representação precisa do tecido da córnea e permitirá o desenvolvimento de medicamentos mais direcionados. Agora, esse método pode fornecer informações sobre danos e regeneração do nervo corneano.
Também pode ser aplicado a outros sistemas, como triagem e desenvolvimento de medicamentos. Após o recebimento de amostras de tecido da córnea humana, transfira os tecidos para um prato de 21,5 centímetros quadrados contendo dois mililitros de solução salina tamponada com fosfato estéril de Dulbecco. Posicione a cúpula da córnea voltada para cima e use uma lâmina de barbear em um ângulo de 45 graus para raspar a camada epitelial.
Em seguida, vire a cúpula da córnea para baixo e raspe completamente o endotélio do estroma. Lave o tecido estromal com DPBS. Mantenha os pedaços estromais úmidos com DPBS e use uma lâmina cirúrgica número 10 para cortar os tecidos estromais em pedaços pequenos.
Use uma pinça estéril para transferir os pedaços estromais para um frasco de cultura T25 sem meio. Deixe os explantes aderirem ao fundo do frasco a 37 graus Celsius por cerca de 30 a 40 minutos. Depois de cortar com precisão o tecido estromal, transfira cuidadosamente o frasco para a incubadora.
É importante permitir de 30 a 40 minutos e, em seguida, adicionar mídia lentamente. Esta etapa é fundamental para permitir a aderência completa dos explantes e evitar seu desprendimento. Uma vez aderido, adicione lentamente o Meio Essencial Mínimo de Eagle, contendo 10% de soro fetal bovino e 1% antibiótico-antimicótico ao frasco, sem perturbar os explantes.
Coloque suavemente o frasco na incubadora a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. Deixar os explantes intactos até que as células comecem a isolar-se e a migrar para o frasco. Após aproximadamente duas a quatro semanas, as células devem atingir 100% de confluência.
Após 100% de confluência, passe as células removendo o meio de cultura de tecidos e lavando as células com DPBS. Adicione tripsina às células e incube a 37 graus Celsius. Após aproximadamente cinco minutos, observe as células sob uma microscopia de luz para confirmar se elas se separaram.
Interrompa a proteólise adicionando meio fresco e transfira a suspensão celular para um tubo cônico de 15 mililitros. Centrifugue os tubos a 1000 x g para pellet as células. Remover o sobrenadante com cuidado, sem perturbar o sedimento, e suspender as células em meio fresco.
Depois de realizar uma contagem de células, semeie aproximadamente uma vez 10 para as seis células no frasco de cultura T75 com meio fresco para expansão adicional. Para montar a construção 3D, primeiro passe e conte os fibroblastos da córnea humana e, em seguida, semeie aproximadamente uma vez 10 para os seis HCF em uma inserção de membrana de policarbonato com poros de 0,4 mícron. Adicione 1,5 mililitros de meio fresco ao topo da construção.
Em seguida, pipete mais 1,5 mililitros do mesmo meio para a parte inferior de cada construção. Após 24 horas, adicione 1,5 mililitros de meio, suplementado com 0,5 milimolar de vitamina C na parte superior e inferior de cada construção. Incube a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono por três semanas, adicionando meios frescos contendo vitamina C em dias alternados.
Isso estimulará as células a secretar e montar sua própria matriz extracelular. Após três semanas, adicione oito vezes 10 às terceiras células de neuroblastoma humano SH-SY5Y no topo das construções 3D previamente montadas. É fundamental calcular o número exato de células nesta etapa e aguardar 24 horas antes de iniciar a diferenciação celular.
Após 24 horas de incubação, inicie a diferenciação celular SH-SY5Y estimulando as células com 1,5 mililitros de EMEM com 10% de FBS e 10 micromolares de ácido retinóico. Em seguida, adicione 1,5 mililitros do meio contendo vitamina C na parte inferior da construção. O ácido retinóico é sensível à luz, portanto, esta etapa deve ser realizada no escuro.
Após cinco dias, quando as células atingirem a fase de diferenciação, adicione 1,5 mililitros de meio livre de soro contendo dois BDNF nanomolar e 1% antibiótico-antimicótico ao topo da construção. Adicione meio suplementado com vitamina C fresco na parte inferior da construção. Cultive as células por mais dois dias antes do processamento para análise posterior.
Esta é uma imagem de microscopia eletrônica de transmissão de alta ampliação da construção 3D auto-montada mostrando a membrana de policarbonato e as células estromais da córnea assentadas no topo. Esta imagem mostra as células neuronais diferenciadas assentadas no topo, que exibem um arranjo de células estromal-neuronais. As setas na imagem mostram as células neuronais.
Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de manter o tecido da córnea úmido o tempo todo, ao cortar explantes, e manter os instrumentos cirúrgicos e as lâminas estéreis. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como configurar e usar este modelo in vitro para investigar as interações celulares entre as células estromais da córnea humana e as células neuronais em sua matriz extracelular natural. Não se esqueça de que trabalhar com BDNF, ácido retinóico e lâminas cirúrgicas pode ser extremamente perigoso, e precauções, como usar roupas de proteção adequadas, devem sempre ser tomadas durante a realização deste procedimento.
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Este protocolo descreve um novo modelo tridimensional in vitro, no qual células estromais da córnea e células neuronais diferenciadas são cultivadas em conjunto, auxiliando na análise e compreensão das interações entre os dois tipos celulares. Este método pode fornecer informações sobre lesão e regeneração dos nervos corneanos.
Este modelo tridimensional in vitro atende à necessidade de sistemas corneanos humanos fisiologicamente relevantes na fase inicial de descoberta, permitindo a investigação mecanicista das interações estroma-nervo em doenças corneanas. Ao recapitular a deposição da matriz extracelular nativa e o cultivo conjunto de células estromais e neuronais, o modelo apoia a validação de alvos e a redução de riscos de hipóteses terapêuticas antes dos testes em animais. Ele fornece uma plataforma escalável e reprodutível para avaliar os efeitos de compostos sobre a integridade e regeneração dos nervos corneanos, alinhando-se aos esforços da indústria para reduzir a dependência de modelos in vivo.
O modelo se insere no continuum de descoberta, desde a testagem de hipóteses sobre alvos até a otimização de compostos líderes, fornecendo um sistema de co-cultivo estromal-nervoso relevante para humanos antes da validação pré-clínica.