20 de dezembro de 2017
QA-1 (HLA-E em humanos) pertence a um grupo de moléculas de 1b complexo principal de histocompatibilidade não-clássica. Imunização com resumos de Qa-1-ligação foi mostrada para aumentar o tecido-específica Regulamento imune e amenizar várias doenças auto-imunes. Neste documento descrevemos uma estratégia de biblioteca de peptídeo sobreposição para a identificação de epitopos de Qa-1 em uma proteína.
O objetivo geral deste procedimento é identificar epítopos de Qa-1 em proteínas. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da regulação imunológica e imunoterapia. As principais vantagens dessa técnica são que os peptídeos mapeados são conhecidos por estimular as células T CD8 restritas a Qa-1, e o procedimento é fácil de realizar.
As implicações dessa técnica se estendem a projetos terapêuticos para doenças imunomediadas, como a esclerose múltipla. Embora este método possa fornecer informações sobre a regulação imunológica mediada por Qa-1 em animais, ele também pode ser aplicado à regulação imunológica mediada por HLA-E em humanos. Para iniciar o procedimento, projete uma biblioteca de peptídeos de 15 meros, nos quais os peptídeos adjacentes se sobrepõem em 11 aminoácidos.
Obtenha e reconstitua os peptídeos em condições estéreis. Para cada peptídeo, combine cinco miligramas do peptídeo com 100 microlitros de dimetilsulfóxido. Combine 10 microlitros de cada estoque de peptídeos em um tubo criogênico limpo de 1 mililitro para preparar o estoque da piscina OLP.
Em seguida, carregue 20 microlitros de cada estoque de peptídeo em uma placa de 96 poços com fundo em V e dilua cada estoque com 80 microlitros de água estéril. Armazene os estoques de peptídeos restantes de 50 miligramas por mililitro e a placa de estoques de peptídeos de 10 miligramas por mililitro a 20 graus Celsius. Em seguida, adicione 10 microlitros da solução estoque de pool OLP a um tubo de 15 mililitros contendo dois mililitros de células dendríticas irradiadas em meio livre de soro, diluindo assim o DMSO duzentas vezes.
Armazene o estoque restante do pool OLP a 20 graus Celsius. Incube os DCs com o pool OLP em temperatura ambiente por três horas. Agite suavemente as células a cada 15 minutos com a mão.
Durante a incubação, use um kit para purificar as células T CD8 + de um baço ou linfonodos de camundongo colhidos. Prepare cinco mililitros de uma solução com 10 milhões de células T por mililitro de meio livre de soro com 50 unidades por mililitro de interleucina 2 e 100 unidades por mililitro de interleucina 7. As células T CD8 purificadas devem estar livres de grânulos ou intocadas.
Coloque 0,5 mililitros da solução de células T em cada um dos 10 poços de uma placa de 48 poços. Quando a incubação da solução DC pulsada em pool OLP estiver concluída, adicione 10 mililitros de meio sem soro aos DCs. Centrifugue as células a 300 vezes G por 10 minutos em temperatura ambiente.
Em seguida, reconstitua as células em cinco mililitros de meio sem soro. Adicione 0,5 mililitros da suspensão celular a cada um dos 10 poços. Incube as células a 37 graus Celsius em uma atmosfera de 5% de dióxido de carbono por quatro dias.
Em seguida, remova 400 microlitros do meio de cultura de cada poço. Adicione 500 microlitros de meio fresco sem soro contendo 100 unidades por mililitro de IL-2 e IL-7 a cada poço. Incube as células por mais dois a três dias antes de reestimular as células preparadas para o pool de OLP.
Antes da reestimulação, obtenha e irradie macrófagos peritoneais de camundongos. Ajustar a concentração de macrófagos a cinco milhões de células por mililitro de meio isento de soro. Combine 10 microlitros do estoque do pool OLP com dois mililitros dos macrófagos peritoneais irradiados para uma concentração final de DMSO de 0,5% em volume.
Suplementar esta solução com 100 unidades por mililitro de factor estimulador de colónias de macrófagos murinos. Encha uma placa de 48 poços com 200 microlitros da solução de macrófagos do pool OLP em cada poço. Incube a placa a 37 graus Celsius por quatro horas.
Em seguida, lave suavemente cada poço com 200 microlitros de meio RPMI-0 pré-aquecido. A solução de macrófagos conterá muitas contas. Antes de adicionar as células T CD8 preparadas com pool OLP, a placa deve ser verificada ao microscópio para garantir que todos os poços estejam livres de contas.
Em seguida, colete e agrupe as células T CD8 + preparadas para pool de OLP que estão prontas para reestimulação. Ajuste a concentração de células T para um milhão de células por mililitro em meio livre de soro contendo 25 unidades por mililitro de IL-2 e 50 unidades por mililitro de IL-7. Adicione um mililitro da solução de células T agrupadas a cada poço contendo macrófagos pulsados em pool OLP.
Cultive as células a 37 graus Celsius em uma atmosfera de 5% de dióxido de carbono por quatro dias. Em seguida, remova cerca de 400 microlitros do meio de cada poço. Adicione a cada poço 500 microlitros de meio fresco sem soro contendo 100 unidades por mililitro de IL-2 e IL-7.
Retomar a incubação nas mesmas condições. Após três a quatro dias, examine as células reestimuladas para uma resposta restrita de Qa-1 específica do pool de OLP com um ensaio de ponto imunológico ligado à enzima interferon-gama. Atualize o meio de células T CD8 + a cada três ou quatro dias enquanto aguarda os resultados.
Realize um ensaio ELISPOT com os estoques de peptídeos diluídos para determinar quais peptídeos produzem a secreção restrita de interferon-gama Qa-1 específica do pool de OLP. Por fim, avalie uma série de peptídeos truncados com ELISPOT para identificar o epítopo Qa-1 ideal. Um ensaio ELISPOT de interferon-gama mostrou um aumento significativo nas células formadoras de manchas quando as células T CD8 + estimuladas pela biblioteca de peptídeos sobrepostos MOG agrupados foram combinadas com C1R.
Células Qa-1b. Isso sugeriu que as células T responderam aos peptídeos de ligação Qa-1 e que o MOG_pool continha um ou mais epítopos de ligação Qa-1. Outro ensaio foi realizado para rastrear os peptídeos individuais na piscina.
Três peptídeos apresentaram respostas pelo menos três vezes maiores do que a resposta na presença de C1R. Células Qa-1b sem peptídeos. Destes, o peptídeo com maior resposta foi selecionado para avaliação posterior.
Uma biblioteca de peptídeos truncados com base no peptídeo de interesse de 15 mer foi avaliada para identificar o epítopo Qa-1 ideal. O epítopo seria idealmente de oito a 10 mer, com nove mer preferidos. Além disso, o epítopo ideal mostraria uma resposta de interferon-gama semelhante ou mais forte do que o peptídeo de 15 meros.
O peptídeo truncado N-terminal de nove mer se encaixa melhor nesses critérios, tornando-o o epítopo Qa-1 ideal. Após seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para pesquisadores no campo da regulação imunológica descobrirem novos epítopos de Qa-1 para o estudo da regulação imunológica em outros tecidos, como o pâncreas. Não se esqueça, trabalhar com radiação pode ser extremamente perigoso.
Os pesquisadores devem seguir rigorosamente a política institucional e ser devidamente treinados.
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Este artigo discute um método para identificar epítopos Qa-1 em proteínas, o que é crucial para compreender a regulação imunológica. A técnica envolve o planejamento de uma biblioteca de peptídeos sobrepostos que podem estimular linfócitos T CD8 restritos ao Qa-1.
A identificação de epítopos funcionais de Qa-1 permite a desmistificação mecanicista de alvos imunorregulatórios em programas de doenças autoimunes. Esta abordagem apoia a validação de alvos ao associar sequências peptídicas à ativação de linfócitos T CD8+ restritos a Qa-1, fornecendo confiança preditiva para imunomodulação específica de epítopos. O método acelera a identificação de candidatos promissores em pipelines de imunoterapia, mapeando rapidamente regiões imunogênicas dentro de proteínas relevantes para a doença, como a glicoproteína oligodendrocítica da mielina.
O método se insere na fase inicial de descoberta para orientar a identificação de compostos líderes, particularmente para terapias imunomoduladoras que visam vias autoimunes.