26 de março de 2018
Este estudo demonstra a utilidade e a facilidade de medição de extensão quantitativa da membrana celular e sua correlação com capacidade adesiva de células. Como um exemplo representativo, mostramos aqui essa proteína relacionada ao Dickkopf 3 (DKK3) promove aumento lobopodia formação e aderência de célula em carcinoma adrenocortical em vitrode células.
O objetivo geral é determinar o efeito de alterações experimentais no repertório de extensão celular e como isso se relaciona com a função de adesão celular no câncer. Este método pode ajudar a identificar os principais papéis do repertório de extensão da membrana celular na modulação do comportamento celular, como adesão, motilidade e invasão celular. A principal vantagem dessa técnica é que ela é relativamente simples de executar e pode ser facilmente adaptada a várias condições experimentais.
As implicações dessa técnica se estendem à nossa terapia ou diagnóstico de cânceres localmente avançados ou metastáticos, pois ajuda a quantificar com precisão as mudanças no repertório de extensão celular associadas a alterações nas células tumorais nas capacidades adesivas e invasivas. Também pode ser aplicado a outros sistemas, como a regulação do canal iônico, que é conhecida por desempenhar um papel importante na formação da extensão celular e nos processos fisiológicos normais. A demonstração visual e o registro desse método são críticos, pois a contagem das etapas de extensão celular é difícil de aprender devido às sutilezas de sua aparência às vezes.
Um dia antes da imagem, conte as células SW 13, SW Neo e SW DKK3 cultivadas em uma incubadora de dióxido de carbono a 37 graus Celsius e cinco por cento usando um hemocitômetro. Coloque lamínulas de vidro estéreis em poços individuais de três placas de seis poços. Use uma placa separada para cada linha celular e coloque as três linhas celulares com uma densidade de 5.000 células por poço nessas placas de seis poços.
Coloque as células em uma incubadora a 37 graus Celsius e cinco por cento de dióxido de carbono durante a noite. No dia seguinte, de cada poço aspirar o meio de crescimento. Em seguida, lave as células em um mililitro de PBS quente.
Posteriormente, adicione um mililitro de formaldeído a 3,7% em cada poço para fixar as células. Deixe as células no fixador por 10 minutos. Após a fixação, aspire o formaldeído.
Adicione um mililitro de violeta cristal a 0,05% em cada poço para corar as células por 30 minutos. Em seguida, limpe o excesso de mancha lavando as células com um mililitro de água deionizada por poço três vezes. Em seguida, coloque uma gota de reagente de montagem transparente em uma lâmina de vidro rotulada.
Em seguida, usando uma pinça de ponta fina, recupere suavemente as lamínulas e coloque-as voltadas para baixo sobre os reagentes de montagem. Depois de montar todas as lamínulas coradas nas lâminas, sob um microscópio óptico, escolha 20 visualizações aleatórias de células não sobrepostas de cada lamínula. Tire micrografias fotográficas de 400 de ampliação de força para cada campo de visão.
Em seguida, observe e conte o número de tipos de extensão em cada uma das 20 células representativas. Use as definições e o protocolo de texto para orientar sua classificação da extensão da membrana como filopódio, lobopódios ou lamellipodia. Ao contar pela primeira vez os tipos de extensão de célula, pode ser útil manter uma imagem de referência disponível para revisão.
Se possível, a contagem cega em relação às suas amostras experimentais fornecerá objetividade adicional. Determinar o número médio de extensões de cada tipo por célula em cada uma das três linhagens celulares examinadas. Use uma anova de sentido único para testar a diferença na porcentagem média de extensões de membrana celular entre os diferentes tipos de células é estatisticamente significativa.
Um dia antes do ensaio, usando um hemocitômetro, conte as células SW 13, SW Neo e SW DKK3. Plaquear essas células com densidade de 100.000 células por poço em seis placas de poços usando uma placa para cada um dos seis pontos de tempo designados que serão testados. Coloque as células em uma incubadora a 37 graus Celsius e cinco por cento de dióxido de carbono durante a noite.
No dia seguinte, remova a placa da incubadora e lave as células uma vez com PBS quente. Em seguida, adicione 0,5 mililitro de solução de dissociação celular não enzimática de força única em cada poço. Agite suavemente as placas para espalhar uniformemente a solução adicionada.
Incube as placas com a solução por tempos definidos. Aspirar a placa designada no final de cada ponto de tempo. Logo após cada aspiração, lave as células com um mililitro de PBS quente.
Em seguida, bata suavemente na placa para soltar as células frouxamente presas. Repita a lavagem junto com o batimento intermitente mais duas vezes. Finalmente, aspire qualquer PBS restante e fixe as células que permaneceram na placa com um mililitro de formaldeído a 3,7%.
Após a fixação, aspire o formaldeído. Em seguida, adicione um mililitro de violeta cristal a 0,05% em cada poço para corar as células. Quando a coloração estiver concluída, limpe o excesso de mancha lavando as células com um mililitro de água deionizada por poço três vezes.
Usando um microscópio óptico com ampliação de 100 forças, conte as células restantes em cada poço para cada placa. Em seguida, determine a porcentagem de células que permaneceram destacadas durante os diferentes pontos de tempo para as três linhagens celulares que foram testadas. Usando uma anova de duas vias, o teste das diferenças e as taxas de descolamento celular entre as três linhagens celulares são estatisticamente significativos.
As células SW 13 e SW Neo de controle coradas com cristal violeta formaram principalmente filopódios e lamellipodia. Em contraste, as células que expressam DKK3 formaram mais lobopódios com ausência quase completa de lamelipódios e muito poucos filopódios. Além disso, observe as diferenças de polaridade entre as células que expressam DKK3 e as linhas celulares de controle.
O gráfico mostra a proporção de diferentes extensões celulares nas três linhagens celulares testadas. Observe a proporção significativamente maior de lobopódios em células que expressam DKK3. Os gráficos de linhas mostram a porcentagem de células que permaneceram presas à placa após o tratamento com a solução de dissociação para os pontos de tempo indicados no eixo X.
Em todos os momentos de até 10 minutos, as células que expressam DKK3 mostraram força de fixação celular significativamente maior em comparação com as células de controle. Uma vez dominada, essa técnica pode ser feita em um período de um a dois dias, dependendo da configuração experimental, se for executada corretamente. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar de avaliar como as mudanças na morfologia da extensão celular afetam a capacidade adesiva.
Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como quantificar com precisão as extensões celulares em relação às mudanças nas características de adesão das células cancerígenas. Boa sorte e obrigado por assistir.
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Este estudo investiga a relação entre extensões da membrana celular e adesão celular em células cancerígenas. Especificamente, destaca como a proteína relacionada ao Dickkopf 3 (DKK3) potencializa a formação de lobopódios e a adesividade celular em células de carcinoma adrenocortical in vitro.
Este método permite que pesquisadores de biofármacos relacionem quantitativamente fenótipos de extensão da membrana celular em células cancerígenas com resultados funcionais de adesão, fornecendo uma leitura mecanicista para a validação de alvos na descoberta de fármacos oncológicos. Ao correlacionar a formação de lobopódios com o aumento da força de adesão celular, o ensaio oferece confiança preditiva na avaliação de moduladores do comportamento celular, como DKK3 ou vias relacionadas. A abordagem oferece uma plataforma escalável e reprodutível para reduzir riscos em hipóteses iniciais sobre mecanismos de metástase e invasão.
O método insere-se na fase inicial da descoberta, apoiando a validação de alvos por meio de triagem fenotípica e permitindo acompanhamento translacional em modelos pré-clínicos ao associar efetores moleculares a comportamentos relacionados à adesão.