Name: Isolamento de células humanas primárias do Decidual de membranas fetais de termo placentas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-30T14:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Aprenda a isolar células deciduas primárias humanas de placentas a termo com alta viabilidade. Este método eficiente permite estudar implantação do blastocisto e complicações da gravidez.

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Os autores gostaria de agradecer os doadores, o biobanco de RCWIH e o Hospital Monte Sinai/UHN, departamento de obstetrícia e Ginecologia para os espécimes humanos utilizados neste estudo. Gostaríamos de agradecer aos membros do laboratório de soda cáustica, particularmente o Dr. Caroline Dunk por sua ajuda com o desenvolvimento do método. Este trabalho é apoiado pelo fundo de boas-vindas de Burroughs (grant #1013759).

Placentas são coletadas do termo saudável, não nas mulheres de trabalho passando por cesarianas eletivas. A coleção, processamento e descartável de amostras humanas seguir as diretrizes do Conselho Mount Sinai Hospital ética. Uma autorização por escrito é obtida a partir de cada paciente. Este estudo é aprovado pelo Conselho de ética de pesquisa no Hospital Monte Sinai.
1. preparações
Nota: Todas as etapas devem ser realizadas sob uma coifa e todos os equipamentos cirúrgicos devem ser esterilizados por autoclave antes da colocação na coifa. Todos os outros materiais (garrafas, tubos de 50 mL, etc.) devem ser esterilizados com solução de etanol 70%. Sempre usar equipamentos de proteção individual em todos os momentos quando se trabalha com resíduos biológicos perigosos (jaleco, luvas, cabelos longos amarrados atrás, etc.).
<ol><li>
Solução de digestão enzimática (solução Final: 200 mL)
	<ol>
<li>Pipetar 180 mL de HBSS-/ - em um copo de 500 mL, adicionar estéril agita magnética e coloque na placa de agitação à temperatura ambiente.</li>
		<li>Pesar e adicionar o seguinte à HBSS-/-solução lentamente e sequencialmente: 20ml de FBS, 400 mg 2 colagenase ([final] = 2 mg/mL), 20 mg de inibidor de tripsina de feijão de soja ([final] = 0,1 mg/mL), 30 mg 1 DNase ([final] = 0,15 mg/mL) e 200 mg de BSA ([final] = 1 mg/mL)</li>
		<li>Definir a agitação de velocidade média e permita que a mistura mexa por 10-20 min (cubra com filme lata de folha ou parafina, agitando).</li>
		<li>Despeje a solução misturada em um frasco de vidro de 250 mL usando um funil de plástico e coloque a coifa.</li>
		<li>Passe a solução através de uma unidade de filtragem superior plástica (0,22 μm membrana filtrante, 500 mL), alíquota 20 mL em tubos de 50 mL (10 tubos totais) e loja a-20 ° C até o uso.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
RPMI 1640 Media (2% solução e 10% completo crescimento médio de lavagem)
	<ol>
<li>Combine RPMI 1640 e FBS num frasco de vidro na coifa.</li>
		<li>Para a solução de 2% FBS, combine 490 mL de RPMI 1640 e 10ml FBS.</li>
		<li>Para a solução de 10% FBS, combine 450 mL de RPMI 1640 e 50ml FBS.</li>
		<li>Pipete 500 µ l de normocin para o frasco de vidro de 500 mL da etapa anterior, que contém a mídia RPMI e FBS (50mg/mL estoque, 0,05 mg/mL trabalho concentração).</li>
		<li>Transmitir mídia através de um 0,22 μm membrana filtrante e armazenar em um frasco de vidro de 500 mL a 4 ° C até o uso.</li>
	</ol>
</li>
	<li>30 min antes de iniciar o experimento, coloque uma alíquota de 20 mL de congelados solução de digestão enzimática em um banho de grânulo de 37 ° C, coloque os 2% FBS e os meios de comunicação de FBS RPMI 1640 de 10% em um banho de grânulo de 37 ° C, prepara o banho de água a balanço e definir a 37 ° C , 2G e definir uma centrífuga de temperatura controlada a 4 ° C.</li>
</ol>2. coleção de tecido Decidual do termo membranas da placenta
<ol><li>Coloque garrafas com HBSS + / +, HBSS-/- e cinco tubos de 50 mL em um rack sob a coifa. Pipetar 25 mL de HBSS + + em um tubo.</li>
	<li>
Usando as mãos enluvadas, tire a placenta de termo do recipiente usado para transportá-la do teatro de sala de cirurgia. Coloque a almofada de fralda (maternal para cima) a placenta e espalhar as membranas fetais usando tesoura e pinça.
	<ol>
<li>Coloque almofadas de tecido sobrepostas sobre a coifa.</li>
		<li>Use uma fralda separada para virar a placenta por parte materna é cara.</li>
		<li>Encontrar o ponto de ruptura de membrana e fazer incisões para permitir que a membrana se desdobrar e deite-se na superfície do fumehood. Nota: Uma vez que a membrana é puxada para trás da placenta, a decídua será virada para cima descansando sobre a camada do córion, com a camada de âmnio na parte de trás.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Cuidadosamente com uma espátula de plástico celular, raspe o tecido decidual fora o córion e coloque no tubo de 50 mL contendo 25 mL HBSS + / +.</li>
	<li>Raspe a membrana com uma pressão moderada. Não aplique demasiada pressão pois pode resultar em contaminação do córion. Recolha pequenos coágulos de sangue também, porque estes contêm algumas células decidual. Cuidado: Após a coleta decidual, placenta deve ser embalado em uma caixa plástica de risco biológico e congelado no congelador-20 ° C antes do descarte adequado (de acordo com suas regras institucionais). Almofadas sangrento da fralda devem ser envolto em um saco plástico de vedação estanque e alienadas em uma caixa de segurança de risco biológico.</li>
</ol>3. lavagem e enzimática de digestão do tecido Decidual
<ol><li>Lave os tecidos coletados suavemente agitando o tubo de 50 mL com a mão e passando-a através de uma peneira de metal (250 μm, malha tamanho 60) 250 μm repousando sobre um recipiente para amostras estéreis (urina).</li>
	<li>Repetir a lavagem duas vezes com HBSS + / + e duas vezes com HBSS-/ - em tubos frescos para cada lavagem. (final lava com HBSS-/-permite a remoção de cálcio e magnésio presente na HBSS + / +, que caso contrário iria interferir com o processo de digestão enzimática a seguir). NOTA. Durante as etapas de lavagem, contaminação de tecido córion será aparente como o tecido decidual é luz rosa em cor e amorfo, enquanto o córion é branco, denso e pegajoso. Portanto, a contaminação do córion pode ser facilmente removida com fórceps.</li>
	<li>Opcionalmente, se o tecido decidual é grosso, transfira para um prato de petri estéril de 10 cm de diâmetro e prossiga para picar do tecido com dois opostos bisturis no prato.</li>
	<li>
Coloque o tecido lavado em tubo estéril 50 mL contendo 100 mg de tecido/mL da solução de digestão enzimática (veja os preparativos).
	<ol>
<li>Como ponto de referência, certifique-se de que o nível do tecido decidual atinge a marca de 5-10 mL no tubo de 50 mL.</li>
		<li>Use cerca de 20 mL de solução de digestão enzimática (preparado na etapa 1.1) para digerir a total decídua coletada de uma membrana fetal de todo o período escolar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Feche a tampa do tubo com o filme de parafina (fechar o tubo firmemente e envolva película de parafina em torno da tampa e parte superior do tubo) sob a cultura capota e incubar decidual tecido a 37 ° C por 20 min em um tremendo banho de água (145 rpm 2G).</li>
	<li>Após a incubação, remova a película de parafina e esterilizar a superfície do tubo contendo tecido digerido com 70% de etanol e trazer sob a coifa. Agite o tubo momentaneamente à mão.</li>
	<li>Colete suspensão de células através da peneira de metal (250 μm, malha tamanho 60) em um novo recipiente para amostras estéreis. Dilua com igual volume (20 mL) de RPMI + 10% FBS contendo 0,1% normocin para parar a reação enzimática. Vá diretamente para a etapa de centrifugação 4.1.</li>
	<li>Se necessário, coloque o tecido restante não digerido volta para um novo tubo de 50 mL com 20 mL de solução de digestão enzimática fresco e repita a digestão (20 min, a 37 ° C, banho de água a tremer).</li>
	<li>Se uma segunda digestão é necessária, coloca o primeiro tubo com suspensão de células no gelo (cubra com filme de parafina para manter estéril). Repita as etapas de 3.5-3.6 e combinar as suspensões de duas células.</li>
</ol>4. gerando uma única célula suspensão
<ol><li>Centrifugar a suspensão de eritrócitos (420 g, 4 ° C, 11 min).</li>
	<li>Remover o sobrenadante e ressuspender as células em 40 mL de RPMI + 2% FBS contendo 0,1% normocin ("tampão de lavagem"). Nota: Centrifugado será solto e gelatinoso devido à contaminação de células vermelhas do sangue, aspirar o sobrenadante com cautela. Remoção da fase superior com uma pipeta manual pode ser necessária.</li>
	<li>Repeti a centrifugação a 420 g a 4 ° C para 11 min.</li>
	<li>Retire cuidadosamente o sobrenadante (conforme mencionado na nota etapa 4.2) e ressuspender as células em 5 mL de tampão de lavagem e adicionar 35 mL de tampão de lise de eritrócitos no mesmo tubo. Nota: Se a pelota é grande ou muito sangrenta, ele pode ser dividido em dois tubos para a etapa de lise de eritrócitos adicionando 10 mL de tampão de lavagem e dividindo-se igualmente em dois tubos e em seguida, adicionar 35 mL de tampão de lise de eritrócitos para cada tubo.</li>
	<li>Incube no gelo por 20 min. brevemente vórtice tubos no início e no final de incubação para lisar células vermelhas do sangue.</li>
	<li>Centrifugar a 420 g por 11 minutos a 4 ° C.</li>
	<li>Cuidadosamente, remover o sobrenadante e ressuspender o precipitado em 40 mL de tampão de lavagem.</li>
	<li>Passe as células através de um filtro de nylon 70 μm para remover grupos de célula.</li>
	<li>Centrifugar 420g por 11 min a 4 ° C.</li>
	<li>Remover o sobrenadante e ressuspender as células em 10 mL de meio completo (RPMI 10% + FBS contendo 0,1% normocin).</li>
	<li>
Contar as células usando o procedimento de hemocytometer de exclusão-corante azul trypan conforme descrito abaixo:
	<ol>
<li>Sob o capô de cultura suavemente Pipete suspensão de células e descer 3 x fim misture bem antes de combinar com trypan azul. Em um 1,5 mL tubo preparar suspensão de células, diluído 1:2 (combinar 20 μL de solução de azul de Tripan) e 20 μL de suspensão de célula decidual. Misture cuidadosamente solução de célula azul trypan pipetando e descer algumas vezes (esta solução não é estéril).</li>
		<li>Coloque a hemocytometer no palco do microscópio com lamela de vidro na parte superior. Nota: Hemocytometer é uma lâmina de microscópio com grades nele para dar nove grandes quadrados divididos por linhas triplas. Cada quadrado grande tem uma área de 1 mm2, e a profundidade do fluido na câmara é de 0,1 mm. Portanto, o volume de fluido que pode preencher cada quadrado grande é 1 mm * 1 mm * 0,1 mm = 0,1 mm3= 10-4 mL.</li>
		<li>Lentamente, adicione 10 μL da mistura trypan azul-célula na ranhura da hemocytometer, permitindo a ação capilar dispersar a mistura de células sobre o slide inteiro (paragem antes de mistura preenche bem).</li>
		<li>Visualizar as células sob um microscópio (em ampliação de 10x) e contar todas as células de branco/verde que excluem trypan azul (Estas são as células viáveis) em quatro grandes quadrados exteriores a hemocytometer. Quando a contagem de células que toque a linha, conte apenas aqueles que toque o direito e as linhas superiores, mas não aqueles tocando a esquerda e linhas de fundo. Não contam células azuis escuras; cor azul indica que a célula está morta como corante trypan azul pode facilmente penetrar através da membrana plasmática citoplasma.</li>
		<li>Para calcular o número de células viáveis em 1 mL de suspensão de células (X): <img alt="Equation" src="/files/ftp_upload/57443/57443eq1v2.jpg"> 2 = fator de diluição 10.000 = fator de conversão (1 mL = 1 cm3 = 10, 000 * 0.1 mm3)</li>
	</ol>
</li>
	<li>Diluir decidual células a uma concentração final desejável em RPMI + 10% FBS (meio de crescimento). Nota: Para o chapeamento de cultura de tecidos, pipete 2 * 106 células/poço para uma placa de plástico 6, 10 * 106 células em uma placa de plástico de 10 cm ou 75.000 células para uma lamela de vidro.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar

O protocolo descrito aqui demonstra um custo e tempo eficaz método para isolar células decidual primárias coletado de membranas fetais de placentas termo humano altamente acessível e simples. O sucesso do presente protocolo é dependente de dois fatores críticos, (1) eficiência de raspagem decidual da camada córion das membranas fetais e (2) o cuidado com que as células decidual são tratadas em todo o protocolo. É importante que contaminação de tecido córion é controlada por garantir que nenhum é acidentalmente incluído d...

O endométrio, um dos mais ativos tecidos femininos adultos, sofre remodelação dramática cada ciclo menstrual, em resposta à estimulação por hormônios ovarianos, estrógeno (E2) e progesterona (P4). A decídua, também conhecida como o endométrio grávida, é um tecido reprodutivo criticamente importante que é formado no final da fase de postovulatory como resultado de diferenciação P4-conduzidos seguindo a fase proliferativa E2-dominante. Decidual células são responsáveis pela secreção de fatores hormonais para implantação do blastocisto bem-sucedida e para o desenvolvimento da interface do utero-placentário para a manutenção de tolerância materna para a fetal aloenxerto.
Decidualization é necessário para a implantação e posterior remodelação das artérias espirais decidual. Células do estroma endometriais sofrem decidualization, sob o controle de P4 e acampamento, durante o final da fase lútea do ciclo menstrual1. Esse processo é iniciado em torno dos vasos sanguíneos e se espalha por todo o estroma, sugerindo seu papel na vasculatura remodelação e leucócitos tráfico de regulamento. Esta transformação celular é caracterizada por uma morfologia circular, aumento do tamanho nuclear e expansão do retículo endoplasmático rugoso e complexo de Golgi2. Decidualized células do estroma são capazes de produzir fatores parácrina, apoiando a implantação do blastocisto e caracteriza-se pela secreção de vários hormônios (ou seja, prolactina), fatores de crescimento angiogênico, fator de crescimento insulina ligação proteína-1 (IGFBP-1), prostaglandina (PG) E (estimulador de cAMP intracelular), citocinas, componentes da matriz extracelular e nutrientes essenciais para placentária implantação e desenvolvimento3,4,5,6 .
A população de célula decidual não é exclusivamente composta por células do estroma decidualized mas também contém populações grandes, gravidez específicos leucócitos decidual. Decidualization envolve edema localizada transitória e influxo de assassino naturais (NK) células, as células T, células dendríticas e macrófagos. A maior subpopulação de leucócitos é as células NK uterinas, compreendendo aproximadamente 50-70% de todos os leucócitos maternos infiltrando a decidua que são uma fonte de citocinas e fatores de angiogênico que podem auxiliar no processo de decidualization e aumento da número em toda gravidez7. Os macrófagos, sendo a segundo maior subpopulação de células do sistema imunológico, são encontrados ao redor do local de implantação e aumentam durante a gravidez8. Eles são uma fonte de citocinas e fatores de crescimento como colônia de factor (CSF-1)9, fator de necrose tumoral alfa (TNFa)10 e prostaglandina (PG) E11.
Durante toda a gravidez e antes do parto, a decídua é uma importante fonte de citocinas e quimiocinas responsáveis pela ativação dos leucócitos periféricos materna e subsequente migração para os tecidos uterinos para iniciar o trabalho de parto. Estudos em animais mostraram que numerosas citocinas pró-inflamatórias são acima-está regulada no decídua do rato durante o parto, tais como TNF-a, IL-6, IL-12 e IL-1b12. Na decídua humana, citocinas pró-inflamatórias IL-1b, IL-6 e IL-8 (principal neutrófilo quimiotático) apresentam maior expressão durante o parto, em comparação com não no trabalho13. Estas citocinas resulta em uma ativação e o influxo de leucócitos secretada de tecidos decidual14; um aumento no macrófago decidual e infiltração de neutrófilos em ambos os humanos e ratos é visto durante o parto, com infiltração decidual anterior myometrial 4-fold maior, indicando uma cascata de ativação entre este dois adjacentes tecidos uterinos 15. estes infiltração de leucócitos produzem capaz de ativar síncronas contrações do miométrio16PGs, metaloproteinases da matriz (MMPs) para iniciar a membrana rompem17,18, bem como citocinas pró-inflamatórias para amplificar o processo de ativação uterina (tempestade de citocinas).
Devido a muitas funções importantes das células decidual, como jogar um papel crítico no processo de implantação, manutenção de tolerância materno-fetal em gestação precoce e participa na ativação de trabalho a termo, diferentes patologias podem surgir durante a gravidez. Por exemplo, (1) infertilidade devido a falha de implantação recorrentes e perda recorrente da gravidez pode resultar de uma insuficiência de maturação decidual; (2) restrição de crescimento intra-uterino (IUGR) e pré-eclâmpsia devido ao desenvolvimento inadequado e disfunção da decídua/placenta ou comprometimento vascular transformação na junção decidual-myometrial; assim como o nascimento prematuro (3) que pode resultar de ativação prematura decidual.
À luz destes grandes transtornos, juntamente com as limitações éticas e práticas dos estudos humanos na vivo , estabelecer linhas de célula decidual humano primário é essencial para a análise em vitro com o objetivo de melhor compreensão e melhorar o manejo clínico de complicações na gravidez. Portanto, o objetivo da nossa pesquisa foi desenvolver um protocolo que permite o isolamento de células humanas de decidual primários com celular alto rendimento e viabilidade coletados de membranas fetais de placentas de termo. Este protocolo atual claramente descreve um método de tempo - e cost - effective para isolar dos subtipos específicos de decidual células que ser usado para uma variedade de análises em vitro . Caracterização da abundância e fenótipo de sub-populações decidual no termo e comparação com o primeiro ou segundo trimestre são cruciais para a definição de seus papéis ao longo da gestação humana.

<table><tbody><tr><td>Hank' s solução salina balanceada com cálcio e magnésio</td><td>Preparado na instalação (LTRI)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hank' s solução salina balanceada sem cálcio e magnésio</td><td>Preparado na instalação (LTRI)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Almofadas de fraldas</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura cirúrgica grande</td><td>AL Medical</td><td>2018-12-20.</td><td></td></tr><tr><td>Pinça cirúrgica grande</td><td>Fine Science Tools</td><td>11000-18</td><td></td></tr><tr><td>Raspador de células descartável de plástico (25 cm)</td><td>Sarstedt</td><td>83.183</td><td></td></tr><tr><td>250 mm (malha tamanho 60) peneira de metal</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S1020-5EA</td><td></td></tr><tr><td>Bisturi descartável com cabo de plástico (#21)</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-927-5D</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri de plástico estéril (diâmetro 10 cm)</td><td>Sarstedt</td><td>82.1473.001</td><td></td></tr><tr><td>Recipiente de amostra estéril (copo de urina, 4,5 oz)</td><td>VWR</td><td>25384-146</td><td></td></tr><tr><td>Filtro de nylon (70 mm)</td><td>VWR/Corning</td><td>21008-952</td><td></td></tr><tr><td>Tampão de lise de eritrócitos</td><td>Qiagen</td><td>79217</td><td></td></tr><tr><td>Azul de tripano, solução a 0,4%</td><td>Lonza</td><td>17-942E</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-374-10</td><td></td></tr><tr><td>Hemocitômetro</td><td>Reichert</td><td>1490</td><td></td></tr><tr><td>Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 meios de cultura</td><td>Invitrogen</td><td>11835-055</td><td></td></tr><tr><td>Soro fetal bovino</td><td>Wisent</td><td>080-150</td><td></td></tr><tr><td>Normocin (50mg/mL)</td><td>Invivogen</td><td>ant-nr-1</td><td></td></tr><tr><td>Unidade de filtração superior de plástico (membrana de 0,22 mm, 500 mL)</td><td>Millipore</td><td>SCGPT05RE</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase 2, pó liofilizado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C6885</td><td></td></tr><tr><td>Inibidor de tripsina de soja, pó</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9003-250mg</td><td></td></tr><tr><td>DNase em pó</td><td>Roche</td><td>10104159001</td><td></td></tr><tr><td>Albumina de soro bovino (pó BSA)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1600-100</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio confocal de disco giratório - Leica DMI 6000B</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Citômetro de fluxo para imagiologia - Image Stream MK2</td><td>Amnis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>IDEA software</td> Anticorpo Vimentina conjugado com <td>Millipore Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>APC</td><td>R& D Systems</td><td>IC2105A</td><td></td></tr><tr><td>anticorpo CD45 conjugado com APC H7</td><td>BD</td><td>641399</td><td></td></tr><tr><td>anticorpo de citoqueratina conjugado com FITC</td><td>MACs Miltenyi Biotec</td><td>130-080-101</td><td></td></tr><tr><td>PerCP - anticorpo conjugado com citoqueratina 7</td><td>Novus</td><td>NBP2-47941PCP</td><td></td></tr><tr><td>eFluor450 Corante de viabilidade fixável</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>65-0863-14</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo primário de vimentina</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-7558</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo primário CD45</td><td>Dako</td><td>M0701</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo primário de citoqueratina</td><td>Dako</td><td>M0821</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo primário de citoqueratina 7</td><td>Dako</td><td>M7018</td><td></td></tr><tr><td>Camundongo IgG</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-2025</td><td></td></tr><tr><td>Cabra IgG</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-2028</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo secundário Alexa Fluor 546</td><td>Invitrogen</td><td>A10036</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo secundário Alexa Fluor 594</td><td>Fisher Scientific</td><td>A-11058</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento de células humanas primárias do decidual de membranas fetais de termo placentas

Isolation of Primary Human Decidual Cells from the Fetal Membranes of Term Placentae

A decídua, também conhecida como o endométrio grávida, é um tecido reprodutivo criticamente importante. Células decidual, compostas principalmente de células do estroma decidualized e células do sistema imunológico, são responsáveis pela secreção de fatores hormonais e inflamatórias que são críticos para a implantação bem-sucedida do blastocisto, desenvolvimento da placenta e desempenhar um papel iniciação de trabalho a termo e prematuros. Muitas complicações na gravidez podem surgir de perturbações de um delicado equilíbrio de populações de células diferentes compreendendo decídua. Alterações na proporção de tipos específicos de célula decidual podem atrapalhar esses processos cruciais e aumentar o risco de desenvolver complicações graves de gravidez, tais como falha de implantação do embrião, restrição de crescimento intra-uterino, pré-eclâmpsia e trabalho de parto prematuro. O protocolo descrito aqui demonstra um custo e tempo método eficaz para o isolamento de células humanas primárias de decidual coletado de membranas fetais de placentas de termo. Combinando a digestão enzimática e gentil ruptura mecânica do tecido decidual, obteve-se um alto rendimento de células decidual com virtualmente nenhuma contaminação do córion. Importante, células isoladas decidual foram caracterizadas (células do estroma (55-60%), leucócitos (35%), epitelial (1%) ou as células do trofoblasto (0,01%)) e mantida alta viabilidade (80%), que foi confirmada por multicolor ensaio de citometria de fluxo de imagem. Este protocolo é específico para o parietalis decídua e pode ser adaptado a placentas de primeiro e segundo trimestre. Uma vez isolado, decidual células podem ser usadas para uma infinidade de aplicações experimentais com o objetivo de compreender o papel das subpopulações diferentes célula decidual em complicações na gravidez.

Para validar a eficiência e a viabilidade das células isoladas, eles foram caracterizados por dois métodos: fluxo cytometry e imunocitoquímica (ICC). 4 populações de células foram alvo; células do estroma decidualized foram detectados pelo anticorpo antivimentina, marcador panleucócitos CD45 foi usado para identificar as células imunes decidual, citoqueratinas foi usada para detectar células epiteliais/endoteliais e finalmente, citoqueratina 7 foi usada para detectar qualquer trofoblasto ...

Este protocolo demonstra um método para o isolamento de células de decidual humanas primários coletados de membranas fetais de placentas de termo que podem ser usadas para uma variedade de aplicações (ou seja, imunocitoquímica, citometria de fluxo, etc.) com o objetivo para estudar o papel das populações de células diferentes em complicações na gravidez.

Isolamento de células humanas primárias do Decidual de membranas fetais de termo placentas

The decidua, also known as the pregnant endometrium, is a critically important reproductive tissue. Decidual cells, comprised mainly of decidualized ...

O objetivo geral deste protocolo de isolamento celular é desenvolver um método para isolar células deciduais primárias com viabilidade de células finais de alto rendimento. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da reprodução humana, como o papel decíduo na implantação de blastocisto e no início do trabalho de parto. Também pode fornecer informações sobre várias patologias relacionadas à gravidez.A principal vantagem desta técnica é que ela fornece um método eficaz em termos de tempo e custo para o isolamento de células deciduais primárias com alto rendimento final de viabilidade. Para começar, deixe cinco tubos de 50 mililitros em uma prateleira e duas garrafas de HBSS e HBSS na hotte. Em seguida, pipete 25 mililitros de HBSS no tubo devidamente rotulado.Em seguida, coloque fraldas sobrepostas no exaustor. Em seguida, retire o termo placenta do recipiente e coloque-o na hotte. Posicione a placenta na almofada da fralda com o lado materno para cima.Se a placenta estiver voltada para baixo, use uma fralda adicional para virar a placenta. Procure o ponto de ruptura da membrana e faça incisões usando tesouras e pinças para permitir que a membrana se desdobre e fique plana na superfície da hotte. Em seguida, use um raspador de células para raspar suavemente o tecido decidual do córion.Transfira o tecido para um tubo de 50 mililitros contendo 25 mililitros de HBSS Lembre-se também de coletar pequenos coágulos sanguíneos, pois eles também contêm algumas células deciduais. Agitar suavemente o tubo de 50 mililitros para lavar o tecido recolhido e, em seguida, passar o tecido por um 250 micrómetros Repita o processo de lavagem duas vezes com HBSS, seguido de duas lavagens com HBSS em tubos novos.A contaminação do córion é facilmente visível devido à sua forma filiforme e cor mais clara e pode ser removida após a lavagem. Após a lavagem, coloque o tecido em um tubo estéril de 50 mililitros contendo 20 mililitros de solução de digestão enzimática para digerir toda a decídua obtida de toda a membrana fetal a termo. Use filme de parafina para selar a tampa do tubo.Em seguida, incube o tubo a 37 graus Celsius em banho-maria agitado. Defina o cronômetro para 20 minutos. Quando a incubação terminar, remova o filme de parafina.Use etanol 70% para esterilizar a superfície do tubo que contém o tecido digerido e coloque-o sob a capela de exaustão. Agite o tubo brevemente. Em seguida, passe a suspensão celular por uma peneira de metal para um novo recipiente de amostra estéril.Diluir a suspensão celular com um volume igual de meio de cultura para interromper a reação enzimática. Transfira a suspensão celular para um novo tubo de 50 mililitros. Em seguida, centrifugue as células a 420 G por 11 minutos a quatro graus Celsius.Se necessário, coloque o tecido não digerido restante em um novo tubo de 50 mililitros contendo 20 mililitros de solução de digestão enzimática fresca e repita o processo de digestão. Se a digestão for realizada uma segunda vez, deixe o primeiro tubo com a suspensão celular no gelo. Quando a segunda digestão estiver completa, combine as duas suspensões celulares.Após a centrifugação, aspirar cuidadosamente o sobrenadante. Uma pipeta manual pode ser necessária para remover o sobrenadante. Em seguida, suspenda novamente o pellet celular no tampão de lavagem.Depois de lavar as células, repita o processo de centrifugação. No final do processo de centrifugação, aspirar o sobrenadante e ressuspender o sedimento celular em cinco mililitros de tampão de lavagem e 35 mililitros de tampão de lise eritrocitária. Para lisar os glóbulos vermelhos, faça um vórtice breve do tubo no início e no final da incubação.Em seguida, incube a suspensão celular no gelo por 20 minutos. Após a incubação, repita o processo de centrifugação. Após a centrifugação, aspirar o sobrenadante e ressuspender o pellet em 40 mililitros de tampão de lavagem e, em seguida, passar as células por um filtro de nylon de 70 micrômetros para excluir aglomerados de células.Repita o processo de centrifugação. Aspirar o sobrenadante assim que a centrifugação estiver concluída. Em seguida, ressuspenda o pellet celular em 10 mililitros de meio de cultura.Conte o número de células com um hemocitômetro usando o método de exclusão do corante azul de Trypan. A fim de determinar a composição do tipo de célula da população de células deciduais, foi desenvolvida uma estratégia de gating de citometria de fluxo de imagem multicolorida. A análise mostra a exclusão de dubletos celulares e detritos celulares usando gating serial.Uma vez obtida uma população unicelular livre de detritos, a viabilidade celular é determinada usando um corante de viabilidade fixável. A análise demonstra 80% de viabilidade da população total de células deciduais, indicada pelo portão azul. Em seguida, as células deciduais isoladas são coradas com anticorpos monoclonais de camundongo conjugados com fluoróforo.O objetivo é analisar a presença de marcadores de células estromais, imunes, epiteliais e trofoblásticas e o corante de viabilidade. Esses marcadores determinarão os tipos de células deciduais. Imagens fluorescentes de citometria de fluxo demonstram uma célula corada positivamente para todos os quatro marcadores e corante de viabilidade.Esses marcadores são então usados para determinar a porcentagem de cada tipo de célula na população de células deciduais. Curiosamente, as células estromais positivas para Vimentina constituem a maior população de células, enquanto praticamente não há células trofoblásticas. Esses resultados demonstram a pureza e a alta viabilidade das células deciduais humanas primárias isoladas.Aqui, os gráficos de pontos obtidos mostram o gating para as populações de tipos de células positivas. Controles fluorescentes menos um são usados para bloquear com precisão as verdadeiras populações de células deciduais positivas. Em seguida, imagens de microscopia confocal de disco giratório capturadas são usadas para validar os resultados da citometria de fluxo, mostrando que a população de células deciduais é composta principalmente de células estromais positivas para Vimentina sem contaminação de células trofoblásticas.Uma vez dominada, essa técnica pode ser concluída em três horas. Após esse procedimento, as células deciduais podem ser analisadas de várias maneiras para examinar a expressão gênica e proteica, o que pode nos ajudar a entender melhor as alterações celulares que ocorrem nas complicações da gravidez.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Nós identificamos a placenta como um órgão hematopoiético importante durante o desenvolvimento. Descobrimos que as células-tronco hematopoéticas (HSCs) são gerados e se expandiu na placenta em única nichos microambientais. Aqui, descrevemos as técnicas experimentais necessárias para o isolamento e visualização de HSCs na placenta mouse.

Isolamento e Análise de Células-Tronco Hematopoéticas da Placenta

Neste protocolo, descreve-se a dissecção de placenta de rato sobre a gravidez d10.5, seguido de isolamento das células trofoblásticas, utilizando um gradiente de Percoll. Em seguida, demonstrar o uso de células isoladas, num ensaio de invasão de Matrigel.

Isolamento de células primário do mouse trofoblasto e Ensaio invasão do trofoblasto

Duas técnicas de isolamento de gotículas lipídicas celulares a partir de 1) células de levedura e 2) placentas humanas estão apresentadas. A peça central de ambos os processos é a centrifugação de gradiente de densidade, onde a camada flutuante resultante contendo as gotículas podem ser facilmente visualizadas por olho, extraiu-se, e quantificada por análise de Western Blot quanto à pureza.

Isolamento de celulares lipídicas Gotas: Duas técnicas de purificação Começando a partir de células de levedura e placentas humanas

Descrevemos um protocolo para isolar e cultivar células epiteliais de âmnio humano (hAECs) usando reagentes livres de produtos de origem animal de acordo com as diretrizes atuais de boas práticas de fabricação (cGMP).

Isolamento, criopreservação e cultivo de células epiteliais humanas Amnion para aplicações clínicas

Descrito aqui é um protocolo para isolar e estudar mais detalhadamente os leucócitos infiltrantes da decídua basal e decídua parietalis - a interface materno-fetal humana. Este protocolo mantém a integridade dos marcadores de superfície celular e produz células viáveis suficientes para aplicações a jusante, conforme comprovado pela análise de citometria de fluxo.

Isolamento de Leucócitos do Human Interface materno-fetal

Descrito aqui é um protocolo para isolar e analisar os leucócitos infiltrantes de tecidos na interface materno-fetal (útero, decídua e placenta) de camundongos. Este protocolo mantém a integridade da maioria dos marcadores de superfície celular e produz células viáveis suficientes para aplicações a jusante, incluindo análise de citometria de fluxo.

Isolamento de Leucócitos a partir de tecidos de murino na interface materno-fetal

Este protocolo descreve um método para eficazmente transfectar siARN em citotrofoblastos vilosidades humanos isolados de fresco utilizando formação de microporos e identificação de complexos de ADN-proteína nestas células. As células transfectadas pode ser monitorado por análises Western blot e EMSA durante o tempo de cultura de 4 dias.

As análises siRNA transfecção e EMSA sobre recentemente isolados das vilosidades citotrofoblastos Humanos

Descreve-se aqui métodos para a dissecação de tecidos fetais e maternas de placenta humana, seguido por isolamento e expansão de células estaminais mesenquimais / estroma (MSC) a partir desses tecidos.

Isolamento e expansão de CTM / células estromais derivadas de placenta humana Tissue

Este manuscrito apresenta um modelo in vitro único de células citotrofoblásticas vilosas humanas imunopurificadas cultivadas sob hipóxia/reoxigenação. Este modelo é adequado para estudar os efeitos protetores de tratamentos promissores, como a melatonina, nas complicações da gravidez associadas ao aumento do estresse oxidativo e à alteração da função placentária.

Trophoblast primário humano Cultura celular modelo para estudar os efeitos protetores da melatonina contra a hipóxia / Disruption induzida pela reoxigenação

Este estudo apresenta um processo otimizado e validado para o isolamento e a cultura de células do estroma endometriais humanas para realizar o ensaio de decidualization em vitro . Além disso, este estudo fornece um método detalhado para eficientemente "knockdown" um gene específico usando siRNAs em células do estroma endometriais humanas.

Isolamento de células do estroma Endometrial humanas para In Vitro Decidualization

Esse protocolo permite a purificação, caracterização e cultivo de trofoblastos extravilosos primários HLA-G+ (EVT) a partir da decídua basal e da membrana coriônica das placentas humanas a termo. Culturas primárias de EVT mantêm a viabilidade por 96 horas, permitindo co-cultura com células imunes maternas comparadas por amostra e subsequente análise citométrica e molecular de fluxo de suas interações.

Purificação de Trofoblastos Extravillosos HLA-G+ de Tecidos Placentários Humanos para Fenotipagem e Análise Funcional

Aprenda a isolar células deciduas primárias humanas de placentas a termo com alta viabilidade. Este método eficiente permite estudar implantação do blastocisto e complicações da gravidez.

Isolamento de células humanas primárias do Decidual de membranas fetais de termo placentas

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