24 de agosto de 2018
Este protocolo descreve um método para o cultivo em grande escala de Caenorhabditis elegans em meios sólidos. Como alternativa à cultura líquida, este protocolo permite a obtenção de parâmetros de diferentes escalas sob cultivo baseado na placa. Isto aumenta a comparabilidade dos resultados, omitindo as diferenças morfológicas e metabólicas entre cultura de meios líquidos e sólidos.
No campo de C. elegans, este método pode ajudar a responder a questões-chave que requerem a produção de grandes populações de nematóides e amostras usando cultura de placas. As principais vantagens deste protocolo são seu fácil estabelecimento e sua facilidade de descrição, incluindo armadilhas e aplicações. Depois de obter uma população sincronizada de nematóides, adicione aproximadamente um mililitro de tampão M nove às placas e distribua cuidadosamente o tampão balançando as placas.
Depois disso, colete os nematóides em um tubo de 15 mililitros. Agora, inverta o tubo e use um microscópio para avaliar a densidade dos nematóides. Ajustar a densidade da suspensão conforme necessário e continuar a avaliá-la ao microscópio.
Aplique 150 microlitros da suspensão diretamente nas placas com pontas de pipeta modificadas. Para garantir uma distribuição igual de nematóides entre as placas, inverter o tubo de suspensão em intervalos regulares. Primeiro, lave os nematóides usando uma ponta de pipeta modificada com aproximadamente 500 microlitros de tampão M nove.
Usando o mesmo tampão, continue destacando os nematóides até que a maioria dos animais seja coletada em suspensão. Em seguida, pegue os nematóides com uma ponta de pipeta modificada e transfira-os para uma placa com OP50. As pontas da pipeta modificadas diminuem a tensão de cisalhamento e os danos aos nematóides devido a um diâmetro maior.
Em seguida, deixe o prato secar. Antes de coletar amostras, prepare nitrogênio líquido para congelar os nematóides coletados. Em seguida, coloque o tampão M nove no gelo.
Aplique um mililitro de tampão M nove em cada prato e gire suavemente para lavar cada prato. Em seguida, pegue o volume do tampão M nove e transfira-o para novos tubos de 15 mililitros. Centrifugar brevemente o tubo a 800 vezes g, antes de retirar a maior parte do tampão M nove.
Em seguida, lave as amostras três vezes com 10 mililitros de tampão M nove para remover qualquer bactéria. Usando uma pipeta de vidro, transfira cada pellet para um tubo vazio de 1,5 mililitro. Use a pipeta de vidro para retirar um mililitro de tampão M nove do segundo tubo de 1,5 mililitro, para enxaguar os nematóides da parede da pipeta.
Em seguida, lave os nematóides restantes dos tubos de 15 mililitros e transfira-os para os tubos de amostra. Em seguida, centrifugar os tubos de amostra a 19 000 vezes g durante um minuto e remover o máximo possível de sobrenadante. Em seguida, sele cada tubo com filme de parafina e congele-os em nitrogênio líquido imediatamente.
Armazene os tubos a menos 80 graus Celsius até a preparação do lisado. Adicione os mesmos volumes de esferas de óxido de zircônio de 0,5 milímetro e o dobro do volume de tampão lisado com coquetel inibidor de proteinase a cada amostra congelada. Em seguida, coloque os tubos em um homogeneizador por um minuto na velocidade nove.
Centrifugue as amostras por 30 minutos a quatro graus Celsius e 19.000 vezes g. Finalmente, transfira o sobrenadante para um novo tubo no gelo e armazene-o a 80 graus Celsius negativos para experimentos futuros. Neste protocolo, grandes quantidades de C. elegans foram cultivadas para aplicações em pesquisas em diabetes.
O número de nematóides coletados correlacionou-se com o rendimento proteico do lisado, demonstrando que o isolamento proteico quantitativo reprodutível pode ser alcançado usando este protocolo. Análises espectrométricas de massa do metabólito reativo metilglioxal e produtos finais de glicação avançada formados pela exposição ao metilglioxal são mostradas aqui. Nematóides tratados com glicose e controles foram comparados.
A transferência de nematóides via pipeta pode criar tensão de cisalhamento, potencialmente prejudicando os nematóides. Os níveis de estresse oxidativo em nematóides pipetados e nematóides transferidos com fio metálico não diferiram usando este protocolo. Seguindo este procedimento, outros métodos como western blot podem ser realizados, a fim de responder a perguntas adicionais em proteômica.
Este protocolo também facilita experimentos que relacionam vários parâmetros à mesma população.
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Este protocolo descreve um método para o cultivo em larga escala de Caenorhabditis elegans em meio sólido. Essa abordagem facilita a produção de grandes populações e amostras de nematoides, melhorando a comparabilidade dos resultados.
O cultivo em larga escala de C. elegans permite o isolamento quantitativo e reprodutível de proteínas para a descoberta de biomarcadores relacionados ao diabetes, apoiando a validação de alvos em complicações neurodegenerativas. Este método fornece um fluxo de trabalho escalável e com minimização do estresse por cisalhamento para análise proteômica de AGEs e ROS, diretamente aplicável à desmistificação mecanicista no estágio inicial da descoberta de fármacos. Ao facilitar a preparação sincronizada de populações sob condições controladas, ele aumenta a confiança preditiva em modelos pré-clínicos de patologia diabética.
Este método posiciona-se dentro do espectro de descobertas que vai da verificação de hipóteses até a identificação de compostos líderes e a validação pré-clínica, apoiando especificamente pesquisas sobre neurodegeneração relacionada ao diabetes.