Name: Avaliação em tempo real da microperfusão da medula espinhal em um modelo suíno de isquemia/reperfusão (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-12-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: Aprenda a avaliar a microcirculação medular em tempo real usando sondas Laser-Doppler em um modelo suíno de isquemia/reperfusão. Este método minimamente invasivo permite monitorar a perfusão espinhal simultaneamente com a pressão do líquido cefalorraquidiano e macrohemodinâmica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os autores gostariam de agradecer a Lena Brix, V.M.D, Instituto de Pesquisa Animal, Hannover Medical School, bem como à Sra. Jutta Dammann, Facility of Research Animal Care, University Medical Center Hamburg-Eppendorf, Alemanha, por fornecer cuidados animais pré e perioperatórios e sua assistência técnica no manejo animal. Os autores gostariam ainda de agradecer ao Dr. Daniel Manzoni, Do Departamento de Cirurgia Vascular, Hôpital Kirchberg, Luxemburgo, por sua assistência técnica.

Constantin J.C. Trepte recebeu um prêmio honorário por palestras de Maquet. Todos os outros autores não declaram conflitos de interesse. Este estudo foi apoiado pela Sociedade Europeia de Anestesiologia Jovem Investigador Start-Up Grant 2018.

A CZL induzida pela isquemia da medula espinhal é uma complicação maior do reparo aórtico com tremendo impacto no desfecho do paciente1,2,3,4,10,11,12. As terapias direcionadas à microcirculação para prevenir e tratar o SCI são as mais promissoras. O protocolo fornece um método reprodutível ...

Lesão medular induzida por isquemia/reperfusão (SCI) é uma das complicações mais devastadoras da reparação aórtica associada ao resultado reduzido1,2,3,4. As opções atuais de prevenção e tratamento para SCI incluem a otimização dos parâmetros macrohemodinâmicos, bem como a normalização da pressão do fluido cefalorraquidiano (CSP) para melhorar a pressão de perfusão da medula espinhal2,5,6,7,8,9. Apesar da implementação dessas manobras, a incidência de SCI ainda varia entre 2% e 31%, dependendo da complexidade do reparo aórtico10,11,12.
Recentemente, a microcirculação ganhou maior atenção13,14. A microcirculação é a área de captação de oxigênio celular e troca metabólica e, portanto, desempenha um papel crítico na função do órgão e na integridade celular13. O fluxo sanguíneo microcirculatório prejudicado é um dos principais determinantes da isquemia tecidual associada ao aumento da mortalidade15,16,17,18,19. O comprometimento da microcirculação da medula espinhal está associado à redução da função neurológica e ao desfecho20,21,22,23. Portanto, a otimização da microperfusão para o tratamento de SCI é uma abordagem mais promissora. A persistência de distúrbios microcirculatórios, apesar da otimização macrocirculatória, foi descrita26,27,28,29. Essa perda de coerência hemodinâmica ocorre frequentemente em várias condições, incluindo isquemia/reperfusão, enfatizando a necessidade de avaliação microcirculatória direta e terapias direcionadas à microcirculação26,27,30.
Até agora, poucos estudos utilizaram sondas laser-Doppler para avaliação em tempo real do comportamento microcirculatório da medulaespinhal 20,31. Estudos existentes têm frequentemente utilizado técnicas de injeção de microesfera, que são limitadas pelo uso intermitente e pela análise pós-morte32,33. O número de diferentes medidas usando a técnica de injeção de microesfera é limitado pela disponibilidade de microesferas com diferentes comprimentos de onda. Além disso, em contraste com as técnicas laser-doppler, a avaliação em tempo real da microperfusão não é possível, uma vez que o processamento e análise de tecido pós-mortem é necessário para este método. Aqui, apresentamos um protocolo experimental para avaliação em tempo real da microcirculação da medula espinhal em um modelo animal suíno de isquemia/reperfusão.
Este estudo fez parte de um grande projeto animal que combina um estudo randomizado comparando a influência de crystalloids vs. coloides na microcirculação na isquemia/reperfusão, bem como um estudo exploratório randomizado sobre os efeitos dos fluidos versus vasopressores na microperfusão da medula espinhal. A calibração de 2 pontos da sonda de fluxo, bem como a calibração do cateter de ponta de pressão, foram descritas anteriormente34. Além do protocolo relatado, foram utilizadas microesferas fluorescentes para a medição da microperfusão da medula espinhal, conforme descrito anteriormente, utilizando-se 12 amostras de tecido medular para cada animal, com amostras 1-6 representando a medula espinhal superior e 7-12 representando a medula espinhal inferior35,36. A injeção de microesfera foi realizada para cada etapa de medição após a conclusão das gravações de Laser-Doppler e avaliação macrohemodinâmica. A avaliação histopatológica foi realizada utilizando-se o Kleinman-Score como descrito anteriormente37.

<table><tbody><tr><td>Medidor de Vazão CardioMed</td><td>Medistim AS, Oslo, Noruega</td> Medidor de Vazão <td>CM4000</td><td>para Sonda de Fluxo Artéria Femoral</td></tr><tr><td>Sonda de Fluxo CardioMed, 5mm</td><td>Medistim AS, Oslo, Noruega</td><td>Sonda de Confiança da</td><td>Artéria Femoral com Sonda de Fluxo</td>PS100051</tr><tr><td>,&nbsp;</td><td>Transonic Systems Inc., Ithaca, NY, EUA</td><td>MA16PAU</td><td>Flow-Probe Aorta</td></tr><tr><td>16 mm liners</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DIVA Sevoflurane Vapor</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemanha</td><td></td><td>Aquecedor</td></tr> de <tr><td>Fluidos Nível 1 da Linha Direta de Vapor</td><td>Smiths Medical Germany GmbH, Grasbrunn, Alemanha</td><td>HL-90-DE-230</td><td>Aquecedor de Fluidos</td></tr><tr><td>Infinity Delta</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemanha</td><td></td><td>Hardware de Monitoramento Básico</td></tr><tr><td>Infinity Hemo</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemanha</td><td></td><td>Monitoramento Básico de Pressão e Hardware de Termodiluição Pulmonar</td></tr><tr><td>LabChart Pro</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>v8.1.16</td><td>Software Sincrônico de Aquisição de Laser-Doppler, Pressão Arterial, ECG e Fluxo Sanguíneo</td></tr><tr><td>LiquoGuard 7</td><td>M&ouml; ller Medical GmbH, Fulda, Alemanha</td><td></td><td>Sistema de Drenagem do Líquido Cefalorraquidiano</td></tr><tr><td>Cateter de Pressão de Micro-Ponta Millar (5F, Único, Curvo, 120cm, PU/WD)</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>SPR-350</td><td>Cateter de Ponta de Pressão Aorta</td></tr><tr><td>moor VMS LDF</td><td>moor Instruments, Devon, Reino Unido</td><td></td><td>Hardware Designado Laser-Doppler</td></tr><tr><td>moor VMS Research Software</td><td>moor Instruments, Devon, Reino Unido</td><td></td><td>Software Laser-Doppler Designado</td></tr><tr><td>Módulo de Fluxo Perivascular</td><td>Transonic Systems Inc., Ithaca, NY, EUA</td> Módulo de Fluxo <td>TS 420</td><td>para Sonda de Fluxo Aorta</td></tr><tr><td>PiCCO 2, Versão Científica</td><td>Getinge AB, G&ouml; teborg, Suécia</td><td>v. 6.0</td><td>Pressão Arterial e Monitoramento Transcardiopulmonar Hard- and Software</td></tr><tr><td>PiCCO 5 Fr. 20cm</td><td>Getinge AB, G&ouml; teborg, Suécia</td><td></td> Linha <td>Arterial com Ponta de Termistor</td></tr><tr><td>PowerLab</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>PL 3516</td><td>Laser-Doppler sincrônico, pressão arterial, ECG e hardware de aquisição de fluxo sanguíneo</td></tr><tr><td>QuadBridgeAmp</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>FE 224</td><td>Amplificador de ponte de quatro canais para laser-Doppler e aquisição invasiva de pressão arterial</td></tr><tr><td>Silverline</td><td>Spiegelberg, Hamburgo, Alemanha</td><td>ELD33.010.02</td><td>Drenagem</td></tr> <tr><td>do líquido cefalorraquidianoPacote de software estatístico SPSS&nbsp;</td><td>IBM SPSS Statistics Inc., Armonk, Nova York, EUA</td><td>v. 27</td><td>Software</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> Estatístico <tr><td>Twinwarm Warming System</td><td>Moeck & amp Moeck GmbH, Hamburgo, Alemanha</td><td>12TW921DE</td><td>Sistema de aquecimento</td></tr><tr><td>Universal II Manta de aquecimento</td><td>Moeck & Moeck GmbH, Hamburgo, Alemanha</td> Sonda <td>VP 3 de Manta de Aquecimento</td><td>906</td></tr><tr><td>, comprimento de 8mm (fabricada individualmente)</td> <td>moor Instruments, Devon, Reino Unido</td><td></td><td>Sonda Doppler a Laser</td></tr><tr><td>Zeus</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemanha</td><td></td><td>Máquina de Anestesia</td></tr></tbody></table>

avaliação em tempo real da microperfusão da medula espinhal em um modelo suíno de isquemia/reperfusão

Real-Time Assessment of Spinal Cord Microperfusion in a Porcine Model of Ischemia/Reperfusion

Lesão medular é uma complicação devastadora do reparo aórtico. Apesar dos desenvolvimentos para a prevenção e tratamento da lesão medular, sua incidência ainda é consideravelmente alta e, portanto, influencia o desfecho do paciente. A microcirculação desempenha um papel fundamental na perfusão tecidual e no fornecimento de oxigênio e muitas vezes é dissociada da macrohemodinâmica. Assim, a avaliação direta da microcirculação da medula espinhal é essencial para o desenvolvimento de terapias voltadas à microcirculação e para a avaliação das abordagens existentes em relação à microcirculação da medula espinhal. No entanto, a maioria dos métodos não fornece avaliação em tempo real da microcirculação da medula espinhal. O objetivo deste estudo é descrever um protocolo padronizado para avaliação microcirculatória da medula espinhal em tempo real utilizando sondas de agulha laser-Doppler diretamente inseridas na medula espinhal. Utilizamos um modelo suíno de isquemia/reperfusão para induzir a deterioração da microcirculação da medula espinhal. Além disso, foi utilizada uma técnica de injeção de microesfera fluorescente. Inicialmente, os animais eram anestesiados e mecanicamente ventilados. Posteriormente, foi realizada a inserção da sonda de agulha laser-Doppler, seguida pela colocação da drenagem de fluidos cerebrospinais. Foi realizada uma esternotomia mediana para exposição da aorta descendente para realização de fixação cruzada aórtica. A isquemia/reperfusão foi induzida por fixação transversal aórtica supra-celíaca por um total de 48 min, seguida de reperfusão e estabilização hemodinâmica. O fluxo laser-doppler foi realizado em paralelo com a avaliação macrohemodinâmica. Além disso, a drenagem automatizada de fluidos cerebrospinais foi utilizada para manter uma pressão cefalorraquidiana estável. Após a conclusão do protocolo, os animais foram sacrificados, e a medula espinhal foi colhida para análise histopatológica e microesfera. O protocolo revela a viabilidade das medidas de microperfusão da medula espinhal usando sondas laser-Doppler e mostra uma diminuição acentuada durante a isquemia, bem como a recuperação após a reperfusão. Os resultados mostraram comportamento comparável à avaliação da microesfera fluorescente. Em conclusão, este novo protocolo pode fornecer um modelo animal grande útil para estudos futuros usando avaliação de microperfusão da medula espinhal em tempo real em condições de isquemia/reperfusão.

Todos os seis animais sobreviveram até a conclusão do protocolo. O peso animal foi de 48,2 ± 2,9 kg; cinco animais eram machos, e um animal era fêmea. A inserção da sonda da agulha da medula espinhal, bem como a medição do fluxo da medula espinhal, foram viáveis em todos os animais.
Exemplos de gravações microcirculatórias da medula espinhal em tempo real em combinação com gravações microcirculatórias e macrohemodinâmicas cerebr...

A microcirculação da medula espinhal desempenha um papel fundamental na lesão medular. A maioria dos métodos não permite a avaliação em tempo real da microcirculação da medula espinhal, essencial para o desenvolvimento de terapias voltadas à microcirculação. Aqui, propomos um protocolo usando sondas Laser-Doppler-Flow Needle em um grande modelo animal de isquemia/reperfusão.

Avaliação em tempo real da microperfusão da medula espinhal em um modelo suíno de isquemia/reperfusão

Spinal cord injury is a devastating complication of aortic repair. Despite developments for the prevention and treatment of spinal cord injury, its ...

Nosso protocolo fornece um método reprodutível para avaliação em tempo real da microcirculação da medula espinhal. Oferece a capacidade de avaliar abordagens terapêuticas na microcirculação medular e nas condições de isquemia e reperfusão. Nossa técnica é fácil de aprender, minimamente invasiva e nos oferece a oportunidade de avaliar a microperfusão da medula espinhal em paralelo com a pressão do líquido cefalorraquidiano e a macro-hemodinâmica em um modelo animal de grande porte.Demonstrando o procedimento estarão o Dr. Christoph Behem e o Dr. Till Friedheim, especialistas em anestesiologia e membros científicos de nosso laboratório. Os demonstradores adicionais serão Michael Graessler, residente em anestesiologia. Depois de confirmar um nível adequado de sedação em um porco de 40 kg de três meses de idade, coloque o animal na posição lateral direita e flexione as costas do animal para ampliar o espaço entre as vértebras.Exponha cirurgicamente a área paravertebral para a preparação de processos espinhosos e arcos vertebrais e coloque um cateter vascular de veia periférica de calibre 14 paramediano na medula espinhal ao nível da vértebra torácica 13 a 14 ou vértebra lombar um a dois entre dois arcos vertebrais. Substitua a agulha pela sonda de agulha Doppler a laser e conecte a sonda ao disco rígido e ao software designados para testar a qualidade do sinal. Um sinal estável com pulsatilidade moderada deve ser observado.Fixe cuidadosamente a sonda com suturas e use panorâmica para evitar que a sonda se desloque ou dobre. Para colocação percutânea de drenagem do líquido cefalorraquidiano para medir e controlar a pressão cefalorraquidiana, identifique o nível de quatro a cinco lombares ou L5 a 6. Perfure a pele e o espaço subcutâneo com a agulha introdutora e remova a agulha embutida.Coloque uma seringa cheia de solução salina na agulha introdutora e use pressão constante para introduzir cuidadosamente a agulha no espaço peridural. Uma vez sentida uma perda de resistência, indicando uma colocação peridural correta, insira a agulha de embutimento e avance a agulha dois a três milímetros no espaço intratecal. Introduza a drenagem até uma profundidade de 20 centímetros.Conecte um adaptador de trava Luer e verifique a posição por aspiração cuidadosa do licor. Em seguida, fixe cuidadosamente a drenagem com suturas e conecte a drenagem ao sistema de drenagem do líquido cefalorraquidiano. Em seguida, exponha o crânio atrás da orelha esquerda e use um acessório de broca de seis milímetros para realizar cuidadosamente uma trepanação do crânio.Introduza uma segunda sonda Doppler a laser diretamente no cérebro e use suturas para fixar cuidadosamente a sonda no lugar. Conecte a sonda ao disco rígido e ao software para testar a qualidade do sinal. Um sinal estável com pulsatilidade moderada deve ser observado.Desconecte todas as sondas e, com a ajuda de quatro a cinco assistentes, coloque cuidadosamente o animal em decúbito dorsal usando acolchoamento, tomando cuidado para não perturbar as sondas. Reconecte as sondas e verifique a qualidade do sinal. Em seguida, inicie a drenagem contínua do líquido cefalorraquidiano com uma pressão alvo de 10 milímetros de mercúrio e um volume de drenagem de 20 mililitros por hora.Depois de realizar uma mini laparotomia, aumente a fração inspirada de oxigênio para um e administre 0,1 miligramas por quilograma de pancurônio por via intravenosa. Disseque suavemente o esterno do tecido circundante e, em seguida, execute a colocação da compressa retroesternal para evitar lesões. Depois de interromper a ventilação, divida o osso com uma serra oscilante e reinicie a ventilação com uma fração inspirada de oxigênio reduzida para 0,3.Use eletrocautério para reduzir o sangramento e selar o esterno com cera óssea. Mobilize cuidadosamente a base do pulmão esquerdo e divida a parte lateral esquerda do diafragma para facilitar a exposição cirúrgica. Retraia suavemente o pulmão esquerdo para expor a aorta descendente proximal ao tronco celíaco e dividir o tecido circundante.Coloque um Overholt ao redor da aorta descendente para garantir a exposição adequada e conecte uma sonda de fluxo ao redor da aorta torácica descendente, em seguida, confirme a presença de um sinal de boa qualidade e conecte uma alça de vaso ao redor da aorta descendente distal à sonda de fluxo para marcar a área de pinçamento cruzado aórtico. Após a aquisição de uma medição de linha de base, administrar etapas consecutivas de carregamento de volume de sete mililitros por quilograma de colóide de hidroxietilamido durante um período de cinco minutos por etapa. Cinco minutos de equilíbrio entre cada passo até que o aumento do débito cardíaco seja inferior a 15%Após a conclusão da otimização hemodinâmica, repita as medidas.Em seguida, coloque uma pinça aórtica na área previamente marcada na aorta supracelíaca para induzir a reperfusão de isquemia em intervalos de um, dois, cinco, 10 e 30 minutos por um total de 48 minutos. Continue o pinçamento cruzado aórtico após cada intervalo. Após no máximo cinco minutos ou após a normalização do fluxo da artéria femoral, realizar a oclusão do fluxo de entrada manual da veia cava inferior para evitar aumentos da pressão arterial superior a 100 mililitros de mercúrio da pressão arterial média e repetir as medidas ao final do intervalo de pinçamento de 30 minutos antes da reperfusão.Quando as medições forem obtidas, abra gradualmente a pinça para garantir a estabilidade hemodinâmica e administre sete mililitros por quilograma de coloides de hidroxietilamido e injeções adicionais em bolus de 10 a 20 microgramas de norepinefrina e/ou epinefrina para estabilização. Ajuste a frequência respiratória para garantir a normocapnia conforme necessário. Após uma hora, repita as medições.Após a obtenção das medidas pós-reperfusão, repetir a carga volêmica conforme demonstrado e obter outro conjunto de medidas. 4-1/2 horas após a indução da isquemia reperfusão, obter o conjunto final de medidas. Aqui, podem ser observados exemplos de registros microcirculatórios da medula espinhal em tempo real em combinação com registros microcirculatórios cerebrais e macrohemodinâmicos durante o pinçamento aórtico para indução de isquemia, bem como durante o despinçamento e reperfusão.A interrupção do fluxo aórtico descendente foi seguida por uma diminuição acentuada no fluxo da medula espinhal, enquanto a pressão na aorta ascendente aumentou. A reperfusão levou a efeitos opostos. A análise estatística dos parâmetros macro e microcirculatórios indica uma redução acentuada do fluxo da medula espinhal durante a isquemia.Em contraste, o fluxo cerebral aumentou acentuadamente durante a isquemia, conforme indicado pelas médias marginais estimadas e seus intervalos de confiança. Isso foi acompanhado por um aumento na frequência cardíaca, pressão arterial e resistência vascular sistêmica, enquanto o débito cardíaco e o volume sistólico diminuíram. A análise de microesferas fluorescentes revelou uma diminuição acentuada no fluxo sanguíneo microcirculatório da medula espinhal na medula espinhal inferior, enquanto nenhuma alteração significativa foi observada na medula espinhal superior.A reperfusão levou a efeitos opostos. Embora tenha havido uma diminuição adicional no débito cardíaco, volume sistólico e pressão arterial ao final do protocolo, o fluxo da medula espinhal e o fluxo sanguíneo microcirculatório da medula espinhal permaneceram estáveis. A inserção da sonda de agulha da medula espinhal requer um conhecimento profundo da anatomia.Além disso, você precisa de habilidades técnicas muito altas no manuseio da sonda. Múltiplas tentativas devem ser evitadas para evitar lesões na medula espinhal, o que poderia afetar a metodologia.

real-time-assessment-spinal-cord-microperfusion-porcine-model

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este vídeo demonstra a colocação de uma sonda de agulha Doppler a laser na medula espinhal de um modelo suíno. Isso ajuda na quantificação contínua do suprimento de sangue para a medula espinhal, uma avaliação importante na lesão da medula espinhal.

Inserção de sonda de agulha Doppler a laser: uma técnica para quantificação em tempo real do fluxo sanguíneo na medula espinhal em um modelo suíno

Este vídeo descreve a técnica de colocação intratecal de um dreno lombar em um modelo isquêmico suíno, que auxilia na drenagem do líquido cefalorraquidiano para um sistema de drenagem. A pressão do líquido cefalorraquidiano é monitorada pelo sistema de drenagem e o fluido é drenado para manter uma pressão constante do líquido cefalorraquidiano.

Colocação intratecal de dreno lombar: uma técnica para retirar líquido cefalorraquidiano da coluna lombar em modelo suíno

A falta de entendimento mecanicista da medula espinhal lesão de isquemia-reperfusão tem dificultado mais adjuntos para evitar paraplegia após operação da aorta alto risco. Assim, o desenvolvimento de modelos animais é imperativo. Este manuscrito demonstra reprodutível menor paralisia extremidade após oclusão da aorta torácica em um modelo murino.

Reproducable Paraplegia por Thoracic Aorta Oclusão em um modelo murino de Medula Espinhal A isquemia-reperfusão

Aqui apresentamos uma combinação de perfusão de Doppler laser de imagem (LDPI) e do laser Doppler perfusão monitoramento (LDPM) para medir spinal cord fluxos de sangue local e saturação de oxigênio (SO2), bem como um procedimento padronizado para a introdução da medula espinhal trauma no rato.

Usando Laser Doppler Imaging e acompanhamento para analisar a microcirculação na medula espinhal em ratos

Aqui vamos demonstrar um protocolo para padronizar os procedimentos de amostragem de um modelo estabelecido de suínos de infarto agudo do miocárdio, a fim de aumentar seu valor de translação no entendimento da fisiopatologia da lesão de isquemia/reperfusão miocárdica e para testar candidatos a novos fármacos.

Aprimoramento do modelo de suínos do miocárdio peito fechado pela padronização do tecido e os procedimentos de recolha de amostras de sangue

Este protocolo permitirá aos leitores para estabelecer com sucesso um modelo suíno de isquemia intestinal segmentar e posteriormente isolar e cultura de células-tronco para o estudo da reparação epitelial após lesão intestinais.

Isolamento de células-tronco intestinal e cultura em um modelo suíno de isquemia Intestinal pequena segmentar

O choque hemorrágico é uma complicação grave em pacientes gravemente feridos, o que leva à subalimentação de oxigênio com risco de vida. Nós apresentamos um método estandardizado para induzir o choque hemorrágico através da retirada do sangue nos porcos que é guiado pela hemodinâmica e pela oxigenação cerebral microcirculatória.

Indução de choque hemorrágico padronizado guiada por oximetria cerebral e Monitorização hemodinâmica estendida em suínos

O objetivo geral do presente estudo é apresentar as técnicas de indução do infarto do miocárdio (MI) e insuficiência cardíaca pós-miocárdio (pós-MI HF) em miniporcos de Göttingen adultos e a caracterização do modelo pós-MI HF em miniporcos de Göttingen em comparação com os porcos landrace.

Insuficiência cardíaca pós-miocárdio em oclusão coronariana de peito fechado/modelo de reperfusão em Miniporcos de Göttingen e Poros landrace

Apresentamos aqui um protocolo para medir a oxigenação renal na medula e a pressão parcial de oxigênio urinário não invasiva em um modelo porcino de choque hemorrágico para estabelecer a pressão parcial de oxigênio urinário como um indicador precoce de lesão renal aguda (LRA) e um novo desfecho de ressuscitação.

Monitorização não invasiva e invasiva da hipóxia renal em modelo porcino de choque hemorrágico

Um sistema de imagem de contraste a laser foi utilizado para monitorar as mudanças no fluxo sanguíneo microvascular renal durante a isquemia-reperfusão unilateral renal após a resseção do rim direito em camundongos.

Perfusão Microvascular Monitorada por Imagem de Contraste Speckle-Laser durante Lesão por Isquemia-Reperfusão Renal em Camundongos

Aprenda a avaliar a microcirculação medular em tempo real usando sondas Laser-Doppler em um modelo suíno de isquemia/reperfusão. Este método minimamente invasivo permite monitorar a perfusão espinhal simultaneamente com a pressão do líquido cefalorraquidiano e macrohemodinâmica.

Avaliação em tempo real da microperfusão da medula espinhal em um modelo suíno de isquemia/reperfusão

Explorar mais vídeos