1 de maio de 2021
Os protocolos aqui relatados ilustram três maneiras alternativas de avaliar o desempenho de mosquitos geneticamente modificados destinados ao controle de vetores em pequenos ensaios de gaiolas em laboratório. Cada protocolo é adaptado à modificação específica que a cepa de mosquito carrega (unidade genética ou unidade não genética) e os tipos de parâmetros medidos.
O protocolo aqui descrito é apropriado para avaliar o desempenho do mosquito transgênico e comparações com contrapartes do tipo selvagem em um pequeno ensaio de gaiola de laboratório. Os ensaios de gaiolas pequenas são importantes para fornecer valores empíricos que ajudarão a preencher a implementação de novas tecnologias para a eliminação da malária. Os ensaios da gaiola podem ser adaptados a outros projetos experimentais e são adequados para avaliar a dinâmica de uma ameaça de um transgênero desejo.
Após a introdução de indivíduos transgênicos. Inicie a fase inicial do experimento, estabelecendo três gaiolas de 0,216 metros cúbicos em triplicados. E adicionando 60 larvas do tipo selvagem de 60 segundos a cada gaiola ao longo de três semanas consecutivas.
Toda semana, forneça fêmeas adultas em cada gaiola com ratos anestesiados como fonte de farinha de sangue. E um recipiente de oviposição três dias após a refeição de sangue. Chocar ovos de cada gaiola semanalmente.
Da semana quatro ao oito, selecione 60 larvas L2 instar de segunda a ser aleatoriamente para retornar às suas respectivas gaiolas. Na semana nove, atribua aleatoriamente um conjunto de gaiolas triplicadas como controles e um conjunto para cada razão de liberação desejada. Adicione 60 pupas do tipo selvagem com 30 machos e 30 fêmeas às gaiolas de controle semanalmente.
Mantenha uma proporção de um a um em cada gaiola respectiva, adicionando semanalmente 30 pupas machos transgênicas, juntamente com 60 pupas do tipo selvagem. Para uma proporção de um a 0,1, adicione 300 pupas machos transgênicos semanalmente em cada gaiola respectiva, juntamente com 60 pupas do tipo selvagem. Repita adicionar pupas de mosquito na gaiola, fornecendo farinha de sangue e eclodindo ovos toda semana.
Selecione um total de 300 larvas de cada gaiola aleatoriamente para triagem. Trie as larvas sob um microscópio estéreo com filtros de fluorescência para a expressão do marcador dominante fluorescente em estágios larvais e pupais. Marque o sexo da pupae resultante.
No experimento de unidade genética, empregue uma estratégia de barreira mantendo os mosquitos em um inseto seguro e seguindo procedimentos operacionais padrão com monitoramento regular. Prepare uma gaiola montada com dois conjuntos de gaiolas triplicadas de 0,216 metros cúbicos para cada relação de liberação masculina transgênica e selvagem desejada. Para alcançar uma razão de liberação masculina de um para um, adicione 120 machos transgênicos, 120 machos e fêmeas do tipo selvagem na fase pupa para cada gaiola de replicação.
Forneça uma refeição de sangue usando camundongos anestesiados para fêmeas de quatro a sete dias de idade em cada gaiola. Depois de chocar ovos em uma bandeja larval, selecione aproximadamente 240 primeiras larvas instar L1 aleatoriamente de cada gaiola e criá-los para pupas antes de retornar às suas respectivas gaiolas. Selecione e tela larvas para marcador ocular e fenótipo sexual como descrito anteriormente.
Monte uma gaiola de gaiolas de 0,005 metros cúbicos com um número igual de machos e fêmeas para cada razão específica de liberação de transgênicos para machos do tipo selvagem. Usando um aparelho de alimentação artificial, forneça refeições sanguíneas para as fêmeas de quatro a sete dias de idade em cada gaiola em dois dias consecutivos. Três dias após a segunda refeição sanguínea, adicione um recipiente de oviposição e remova os recipientes após três dias.
Depois de marcar todos os mortos e os adultos vivos que permanecem na gaiola por sexo, armazene-os a menos 80 graus Celsius para análise molecular. Chocar ovos e executar selecionar 200 larvas L1 e deixar as larvas de lado para povoar novas gaiolas para a próxima geração. Em seguida, selecione aleatoriamente outras 500 larvas de cada gaiola reservada para triagem.
Crie as 200 larvas selecionadas para pupa e 500 larvas para l4 estágio instar. Devolva pupa de 200 bandejas para povoar nova gaiola. Tela selecionada aleatoriamente larvas para marcador ocular e fenótipo sexual Como antes.
Na análise representativa, a dinâmica esperada do fenótipo das réplicas de melhor desempenho é mostrada para os diferentes protocolos de ensaios de reposição populacional. Os resultados mostraram a proporção linear crescente de larvas com fenótipo de marcador DsRed ao longo de sete gerações. O lançamento de um a um sem drive atingiu pouco mais de 80% de introdução transgênica dentro de sete gerações.
Os protocolos de unidade genética conseguiram isso dentro de três a quatro gerações. Assim, validando que uma única liberação de um sistema de acionamento genético pode ser mais eficiente para a introdução transgênica. No final da observação, a disseminação do transgene tinha atingido a introdução quase completa em sistemas de acionamento genético.
Parâmetros importantes, como relação de liberação da estrutura etária, tamanho da gaiola e outros variam dependendo da finalidade do experimento e objetivos específicos. Experimentos para avaliar parâmetros de aptidão, como fertilidade e fecundidade, podem ser feitos. Além disso, mais dados empíricos dos ensaios da gaiola podem ser usados para parametrizar modelos matemáticos da dinâmica populacional.
Este artigo apresenta protocolos para avaliar mosquitos geneticamente modificados em ensaios com gaiolas pequenas destinados ao controle de vetores. Os métodos atendem a diferentes modificações genéticas e avaliam diversos parâmetros de desempenho.
A avaliação do desempenho de mosquitos transgênicos em ensaios laboratoriais com gaiolas pequenas fornece dados empíricos essenciais para reduzir os riscos das tecnologias de gene drive antes da liberação no campo. Estes protocolos permitem a comparação sistemática da dinâmica de disseminação de transgenes entre populações selvagens e geneticamente modificadas, apoiando a modelagem preditiva de estratégias de controle de vetores da malária. A abordagem auxilia na priorização de construtos de gene drive com maior eficiência de introdução para testes pré-clínicos e de campo posteriores.
O método se insere na continuidade entre descoberta e pré-clínico ao gerar dados precoces de eficácia para ferramentas de controle genético por vetores, contribuindo para as etapas de identificação de candidatos promissores e validação pré-clínica.