September 20th, 2022
Construímos um fluxo de trabalho metabolômico não-acompanhado que integrou XY-Meta e metaX juntos. Neste protocolo, exibimos como usar o XY-Meta para gerar uma biblioteca espectral chamariz a partir da referência de espectro de acesso aberto e, em seguida, executamos o controle FDR e usamos o metaX para quantificar os metabólitos depois de identificar o espectro metabolômico.
Este protocolo permite a análise qualitativa e quantitativa do metabolome não-alvo com base no controle de qualidade FDR que reduz efetivamente os falsos positivos da identificação metabólica. Este fluxo de trabalho integra o XY-Meta que utiliza a estratégia de isca-alvo para avaliar o FDR com mais precisão para identificação metabolome no módulo de análise qualitativa. Esta medida pode efetivamente filtrar resultados falsos positivos da identificação metabolome não alvo, o que melhora a robustez de descobrir biomarcadores ou moléculas-chave.
Esperamos que os pesquisadores possam entender e dominar a estratégia de isca-alvo para o controle da FDR e devem tentar executar rigorosamente este pipeline várias vezes com os parâmetros padrão do protocolo. Comece indo para a página web do banco de dados GNPS e clique em procurar conjuntos de dados. Pesquise a palavra-chave na coluna título e clique no número de identificação do conjunto de dados.
Baixe o conjunto de dados usando FTP e salve os dados brutos na respectiva pasta. Para converter o formato de dados brutos, instale primeiro o software ProteoWizard. Sob o caminho de instalação ProteoWizard, digite msconvert.
exe, seguido pelos parâmetros específicos para converter o formato de dados brutos em formato mzXML. Novamente, usando msconvert. exe converta esses dados em formato MGF e armazene-os na pasta MGF.
Para preparar a biblioteca espectral de referência para os metabólitos, acesse a página web do GNPS. Pesquise a palavra-chave NIST, clique em exibir os detalhes e baixe a biblioteca. Salve a biblioteca na pasta do banco de dados.
Baixe o programa XY-Meta. Encontre o arquivo de configuração do parâmetro na pasta config e altere seu conteúdo conforme descrito no protocolo de texto. Defina o tipo de adutos como uma lista na pasta aduto.
Realize a identificação metabólica e o falso controle da taxa de detecção usando o comando XY-Meta.exe. Baixe e instale o pacote de software metaX. Em seguida, edite a lista de amostras.
arquivo txt para especificar a amostra e seus dados correspondentes de espectrometria de massa, conforme descrito no protocolo de texto. Use o arquivo R fornecido com o protocolo de texto para executar o script para quantificação de grupos simulados e tipos selvagens usando o software metaX. Verifique a pasta de saída na qual os resultados da análise quantitativa são armazenados, como o gráfico PCA.
Em seguida, modifique os parâmetros no script R para anotar os picos na análise qualitativa e quantitativa usando identificações metabólitos, a fim de integrar os resultados e executar o script R. Parcelas de caixa de metabólitos quantificados mostraram que a distribuição geral de amostras saudáveis e de doenças foi semelhante com baixa flutuação dos valores médios. Apenas 3,39% dos metabólitos tinham mais de 30% dos valores faltantes.
O enredo de análise de componentes de princípios das amostras de ambos os grupos mostrou que metaX aumentou notavelmente a proporção dos metabólitos com CV inferior a 0,3. Um diagrama de Venn de metabólitos detectados diferencialmente a partir de três métodos de teste estatísticos revelou 119 metabólitos comuns. O tempo de retenção e a massa por distribuição de carga de todos os metabólitos anotados foram plotados com uma falsa taxa de descoberta inferior a 0,01, mostrando seis metabólitos significativos e detectados diferencialmente.
É importante limitar o tempo para testes de fluxo de trabalho. Lembre-se, não selecione muitas amostras para análise e mantenha pelo menos duas amostras em cada grupo. Esta técnica permite o controle de qualidade da identificação metabolizada a partir de dados independentes de aquisição de dados, construindo uma biblioteca espectral de espectro de referência mais robusta usando os resultados de correspondência de espectro com base no controle FDR.
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Este protocolo permite a análise qualitativa e quantitativa do metaboloma não direcionado usando o controle de qualidade FDR para reduzir falsos positivos na identificação de metabólitos. O fluxo de trabalho integra XY-Meta para uma avaliação mais precisa do FDR através de uma estratégia de target-decoy.
High-throughput untargeted metabolomics generates vast spectral datasets, challenging data quality and increasing the risk of false positives in metabolite identification. Integrating FDR control via a target-decoy strategy enhances predictive confidence and supports robust biomarker discovery at critical early discovery and lead identification stages. This workflow enables scalable, reproducible metabolome analysis, directly impacting portfolio triage and translational research continuity.
This integrated workflow spans early discovery through preclinical research, supporting hypothesis testing, pathway clarification, and robust biomarker identification.