4 de agosto de 2022
A inflamação da superfície ocular prejudica os tecidos da superfície ocular e compromete as funções vitais do olho. O presente protocolo descreve um método para induzir inflamação ocular e coletar tecidos comprometidos em um modelo de camundongo de disfunção da glândula de Meibomian (MGD).
Este protocolo descreve sequencialmente as etapas envolvidas na indução da inflamação da superfície ocular e na coleta de órgãos afetados associados envolvidos na disfunção da glândula de Meibom. Este novo modelo de MGD permite a investigação do aspecto imune inato da doença, particularmente a formação de armadilhas extracelulares de neutrófilos ocluindo a glândula de Meibom. A técnica exposta no protocolo pode ser estendida para introduzir intervenções terapêuticas tópicas em estágio pré-clínico.
Além disso, a coleta de exsudados oculares e órgãos reflete a eficácia do tratamento. Para realizar a injeção intraperitoneal da solução de imunógeno, segure o camundongo C57 preto seis não anestesiado de sete a nove semanas de idade suavemente pela cauda enquanto agarra a grade da gaiola. Em seguida, segure firmemente a pele das costas e a região do pescoço entre o polegar e o dedo indicador e fixe a cauda e os membros inferiores entre o anel e o dedo mínimo contra a palma da mão.
Mantendo o rato fixo com a cabeça para baixo, injete 100 microlitros da solução de imunógeno preparada no quadrante direito ou esquerdo da cavidade abdominal inferior. Para realizar um desafio de superfície ocular após a imunização, aplique cinco microlitros de ovalbumina ou óvulos ou soro fisiológico por olho de um rato anestesiado e aguarde cinco minutos para que a gota seja absorvida pelo olho. Em seguida, colete os exsudados oculares aplicando 50 microlitros de solução salina estéril no olho imediatamente após o desafio.
Para a excisão dos tecidos da superfície ocular, coloque o rato sobre uma superfície uniforme e desinfete a área orbital ao redor do olho com um cotonete de etanol a 70%. Para formar uma incisão ao redor do olho, faça uma incisão entre a orelha e o seio retroorbital e ao longo da superfície acima do osso escamoso verticalmente, estendendo a incisão horizontalmente abaixo da pálpebra inferior ao longo do osso maxilar e acima da pálpebra superior ao longo do osso frontal. Segure cuidadosamente o tecido dissecado ao redor do olho usando pinça curva e puxe o tecido e o globo ocular para fora.
Coloque os órgãos excisados em PBS estéril. Em seguida, usando um bisturi sob o microscópio estéreo, corte o excesso de tecido muscular facial ao redor das pálpebras superiores excisadas. Para coletar a conjuntiva coloque a pálpebra superior em uma placa de Petri seca.
Em seguida, usando pinças finas e um bisturi, descasque a camada de muco esbranquiçada suavemente para fora da superfície interna da pálpebra. Ao lado de dissecar a córnea, coloque o globo ocular em uma nova placa de Petri seca em cima do gelo seco. Após três minutos, coloque o prato na superfície do banco em uma posição estável.
Use uma tesoura fina e afiada para fazer uma pequena incisão na borda da córnea ao lado do limbo. Continue a incisão com o bisturi ao redor do globo ocular, separando a esclera da córnea. Em seguida, remova os restos da íris e da lente da parte de trás da córnea, lavando generosamente com solução salina.
Para avaliar a glândula meibomiana e seus orifícios, coloque as pálpebras excisadas em uma posição vertical sob o microscópio estéreo. Em seguida, de acordo com o tempo de exposição da câmera e as configurações ISO, capture imagens sob epiiluminação de luz branca. Para avaliar a área da glândula de Meibom, coloque as pálpebras excisadas em uma posição horizontal e ligue a luz de fundo do microscópio estéreo equipado com uma câmera infravermelha.
Capture imagens ajustando o tempo de exposição de acordo com o ISO da câmera. Camundongos administrados salinamente mostraram superfícies oculares saudáveis com os olhos bem abertos. Em comparação, a aplicação de óvulos induz inflamação grave da superfície ocular, a abertura estreita dos olhos e sinais de quemose.
As pálpebras excisadas apresentavam grandes oclusões obstruindo os orifícios da glândula meibomiana e edema, em contraste com as pálpebras saudáveis mostrando pequenos tampões da glândula que reveste a pálpebra. Um exame mais aprofundado da transiluminação infravermelha da glândula revela a aparência racêmica dos ácinos da glândula meibomiana. As pálpebras de camundongos com solução salina desafiadas mostraram os ácinos redondos.
Em comparação, as aplicações de óvulos induziram a destruição e perda de algumas glândulas com a doença ocular alérgica ou DEA. A análise histológica das pálpebras mostrou glândulas meibomianas dilatadas em comparação com camundongos administrados apenas com soro fisiológico. A incubação do globo ocular em gelo seco permitiu a incisão na córnea ao lado do limbo e a separação da córnea da esclera.
Este estudo facilitou a coleta da córnea. Além disso, a administração de óvulos infligiu inflamação grave à conjuntiva com aparência hiperêmica. Níveis elevados de quimiocina CXCL-1 facilitam o extravasamento de neutrófilos, fagocitose e degranulação, e interleucina-6 mediando a resposta de fase aguda e infiltração de neutrófilos foram observados nos sobrenadantes de camundongos com DEA.
Por outro lado, a concentração de interleucina-10 não mostrou alterações significativas em camundongos ingênuos e com DEA. Este novo modelo permite o desenvolvimento e a avaliação da eficácia de fármacos que visam as vias imunes inatas, e é de grande ajuda na mineração de dados da forma de administração de agentes anti-inflamatórios. Após a coleta apropriada de órgãos, métodos altamente multiplex, como sequenciamento de célula única e citometria de massa por imagem, são compatíveis com esse protocolo.
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Este protocolo descreve um método para induzir inflamação da superfície ocular e coletar tecidos comprometidos em um modelo de camundongo de disfunção das glândulas de Meibomiana (DGM). A técnica permite a investigação da resposta imune inata na DGM, focando particularmente nas armadilhas extracelulares de neutrófilos.
Inducing ocular surface inflammation and collecting affected tissues in a mouse model enables mechanistic de-risking of Meibomian gland dysfunction (MGD) and innate immune pathways. This protocol supports predictive confidence in evaluating anti-inflammatory interventions at the preclinical stage, directly informing target validation and translational continuity for ocular surface disease portfolios.
This method integrates from early discovery through preclinical evaluation, supporting lead identification and translational research for ocular surface inflammation and MGD.