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Imagem Intravital da Expressão de Proteínas Fluorescentes em Camundongos com Traumatismo Cranioen...
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JoVE Journal Neuroscience
Intravital Imaging of Fluorescent Protein Expression in Mice with a Closed-Skull Traumatic Brain Injury and Cranial Window Using a Two-Photon Microscope

Imagem Intravital da Expressão de Proteínas Fluorescentes em Camundongos com Traumatismo Cranioencefálico de Crânio Fechado e Janela Craniana Usando um Microscópio de Dois Fótons

Full Text
1,650 Views
08:25 min
April 21, 2023

DOI: 10.3791/64701-v

Jianjun Zhong1,2, Georgia Gunner3, Nils Henninger1, Dorothy P. Schafer3, Daryl A. Bosco1

1Department of Neurology,University of Massachusetts Chan Medical School, 2Department of Neurosurgery,The First Affiliated Hospital of Chongqing Medical University, 3Department of Neurobiology,University of Massachusetts Chan Medical School

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study demonstrates a method for visualizing the neuronal response to mechanical stress following traumatic brain injury (TBI) in a live mouse model. It details the implantation of a cranial window to facilitate intravital imaging of EGFP-expressing neurons using two-photon microscopy, enabling tracking of the neuronal response over time.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Traumatic Brain Injury
  • Imaging Techniques

Background

  • Traumatic brain injury (TBI) leads to significant neuronal changes.
  • Monitoring neuronal responses during acute and chronic phases is crucial for understanding TBI effects.
  • Two-photon microscopy allows for deep imaging in live tissues.
  • EGFP expression helps in tracking specific neuronal populations.

Purpose of Study

  • To visualize and quantify neuronal responses to mechanical stress in a live mouse model following TBI.
  • To provide insights into the effects of TBI on neuronal function over time.
  • To establish a protocol for changing gene targets to study various proteins in different cell types.

Methods Used

  • Two-photon microscopy for imaging neuronal responses.
  • Use of mice for in vivo experimentation with induced traumatic brain injury.
  • Detailed surgical protocol for cranial window implantation to provide accessibility for imaging.
  • Stable positioning and preparation techniques were emphasized to minimize damage during procedures.

Main Results

  • The technique allows for real-time monitoring of neuronal behavior following TBI.
  • Responses observed in EGFP-expressing neurons illustrate alterations in excitability following mechanical injury.
  • Data showing continuity in responses both acutely and chronically demonstrates the lasting effects of TBI on neuronal integrity.

Conclusions

  • This study establishes a valuable tool for exploring the dynamic responses of neurons to traumatic injury in vivo.
  • It enables investigation into specific molecular changes related to TBI over time, potentially leading to better understanding and treatment strategies.
  • The findings have implications for neuronal plasticity and recovery mechanisms following injury.

Frequently Asked Questions

What advantages does the cranial window provide?
The cranial window allows for non-invasive imaging of neuronal activity in real-time, enabling continuous observation of changes after traumatic brain injury.
How is traumatic brain injury induced in the model?
TBI is induced by a specific impact at marked coordinates on the mouse's skull, utilizing a device that delivers a controlled mechanical force.
What imaging outcomes can be expected?
The study allows monitoring of the neuronal response, specifically focusing on changes in excitability and EGFP expression levels after injury.
Can this method be adapted for other proteins?
Yes, the protocol can be adjusted by changing the gene of interest and the viral promoter to study different proteins in various neuronal types.
What are some key limitations of this approach?
Limitations may include the need for precise surgical techniques and potential variability in injury response based on individual animal factors.

Este estudo demonstra a entrega de um traumatismo cranioencefálico repetitivo em camundongos e o implante simultâneo de uma janela craniana para posterior imagem intravital de um EGFP expresso por neurônio usando microscopia de dois fótons.

Nosso protocolo fornece uma maneira de visualizar a resposta neuronal ao estresse mecânico em um camundongo vivo, o que pode fornecer evidências diretas de como a lesão cerebral traumática afeta o cérebro. Esta técnica pode monitorar a proteína-alvo no mesmo local do cérebro no mesmo animal para as fases aguda e crônica após traumatismo cranioencefálico. O gene de interesse e o promotor do vírus podem ser alterados de acordo com o estudo de outras proteínas nos tipos celulares específicos no cérebro.

Para começar, aplique pomada oftálmica nos olhos do rato anestesiado. Retire o cabelo do topo da cabeça aparando com tesouras regulares. Depois de estabelecer uma incisão mediana de 12 a 15 milímetros de comprimento, excise a pele sobre os hemisférios esquerdo e direito do crânio usando tesoura de mola de ponta curva.

Uma vez exposto o crânio, remova o periósteo esfregando-o suavemente com o aplicador de algodão estéril e lavando-o com soro fisiológico estéril. Uma vez seca a área do crânio, marcar o Traumatismo Cranioencefálico, ou TCE, local de impacto nas coordenadas 2,5 milímetros posterior ao bregma e dois milímetros lateral da sutura sagital à direita. Remova rapidamente o mouse do quadro estereotáxico e coloque a cabeça na almofada do buffer sob o dispositivo TBI.

Alinhe a ponta do pêndulo com o local de impacto marcado. Levante a coluna de metal puxando a corda de nylon presa 15 centímetros acima da cabeça do mouse e, em seguida, solte-a, permitindo que o peso caia livremente sobre a haste do transdutor, que está em contato com a parte superior do crânio no local do TCE. Coloque a cabeça do camundongo anestesiado sobre a estrutura estereotáxica mantida sob o microscópio cirúrgico.

Perfure suave e lentamente a superfície do crânio usando uma broca de carboneto FG4 a uma velocidade baixa do rotor para remover o periósteo restante e crie uma superfície áspera do crânio de tal forma que o cimento dentário se ligue firmemente ao crânio. Use soro fisiológico para limpar e limpar a poeira óssea da superfície do crânio. Para separar os músculos laterais do crânio, aproximadamente cinco milímetros posteriores ao olho, onde está localizada a sutura que liga o crânio parietal e temporal, insira suavemente as pontas finas fechadas e mova suavemente as pontas fechadas no sentido posterior até a sutura lambdoide.

Separe os músculos laterais do lado onde ocorrerá a implantação da janela craniana. Lave os detritos do sítio cirúrgico com soro fisiológico e seque a área com gaze. Para a implantação do poste cefálico, marcar o ponto central 2,5 milímetros posterior ao bregma e 1,5 milímetros fora da sutura sagital no hemisfério direito, utilizando caneta marcador e paquímetro cirúrgico.

Em seguida, trace a circunferência da craniotomia no crânio limpo e seco. Solte a barra da orelha e gire a cabeça, de modo que o plano da craniotomia fique perfeitamente horizontal, e então aperte a barra da orelha novamente. Use o bastão de madeira de um aplicador com ponta de algodão para adicionar duas pequenas gotas de supercola na borda frontal e traseira do poste da cabeça.

Posicionar o poste da cabeça de titânio sobre o centro da craniotomia e ajustá-lo rapidamente para repousar no mesmo plano onde a janela craniana será implantada. Aplique leve pressão até que a supercola esteja seca, o que geralmente leva aproximadamente 30 segundos. Prepare o cimento dental em um prato cerâmico pré-resfriado misturando completamente 300 miligramas de pó de cimento, seis gotas de líquido QuickBase e uma gota de catalisador.

Aplique rapidamente uma quantidade generosa de mistura de cimento dentário no perímetro externo da circunferência traçada e cubra qualquer superfície óssea exposta. No entanto, não cobrir o local da craniotomia. Solte a barra auricular e prenda o poste da cabeça à estrutura metálica para garantir que a cabeça seja estável para uma perfuração precisa ao longo da circunferência da craniotomia marcada.

Para realizar a craniotomia, use um paquímetro cirúrgico para verificar o diâmetro do círculo marcado como demonstrado anteriormente, e ajuste conforme necessário, para que a janela craniana se encaixe confortavelmente dentro da craniotomia. Usando uma broca dental elétrica, etch e afinar o crânio ao longo da parte externa do círculo marcado usando um bit de carboneto FG4 primeiro, que cria uma trilha dentro da qual afinar o crânio. Irrigar a área com soro fisiológico para lavar a poeira óssea.

Continue a afinar o crânio usando uma mordida de carboneto FG 1/4 até que o crânio fique fino e transparente. Periodicamente, pare a perfuração e irrige toda a área com soro fisiológico estéril novamente para reduzir o aquecimento da broca e lavar a poeira óssea. Complete o afinamento do crânio usando uma broca de carboneto EF4 e continue afinando e perfurando o resto do crânio ao longo da trilha.

Insira uma pinça de ponta fina de 0,5 milímetro através do local rachado e levante o retalho ósseo suavemente para cima sem recuar o cérebro subjacente. Após a retirada do retalho ósseo, irrigar a área de craniotomia com soro fisiológico. Usando a pinça cirúrgica curva inclinada, remova suavemente a matéria aracnoide visível.

Use a pinça cirúrgica de ponta reta para pegar a janela de vidro estéril com a tampa de vidro de três milímetros voltada para baixo. Coloque e ajuste a janela de vidro acima do local da craniotomia para certificar-se de que a janela pode se encaixar confortavelmente à borda da craniotomia. A tampa de vidro de cinco milímetros está no topo.

Prepare o cimento dentário como demonstrado anteriormente e aguarde aproximadamente seis minutos até que o cimento se torne pastoso e espesso. Enquanto espera que o cimento se torne pastoso e espesso, aplique uma quantidade adequada de pressão na janela através de um manipulador estereotáxico para verificar se o crânio pode entrar em contato seguro e firmemente com a janela de vidro. Use uma escova aplicadora de precisão ajustável para adicionar uma pequena quantidade de cimento ao lado da borda da janela para selar a janela de vidro com o crânio.

Aguarde aproximadamente 10 minutos para deixar o cimento secar completamente, solte suavemente e remova o manipulador acima da janela. Complete aparando o cimento dentário usando a broca dental com uma broca de metal duro FG4 se o excesso de cimento cobrir a janela. Cerca de quatro horas após a cirurgia, foram realizadas imagens de dois fótons, onde no nível superficial a vasculatura aparecia preta e, no nível profundo de aproximadamente 400 micrômetros, a expressão da proteína EGFP estava difusamente distribuída por todo o corpo celular.

Uma semana e quatro meses após o TCE, o padrão de vasculatura observado no tempo zero do dia foi usado como referência para localizar a mesma região de imagem. O padrão de vasculatura é semelhante ao do dia zero. Da mesma forma, a expressão de EGFP foi detectada em todo o corpo celular.

A intensidade da fluorescência no dia zero e quatro meses foi semelhante tanto no nível superficial quanto no profundo. No entanto, a intensidade da fluorescência em uma semana foi menor do que a do dia zero e quatro meses, possivelmente devido à repressão translacional relatada para outros modelos de TCE. É crucial tomar o máximo cuidado ao operar a etapa de craniotomia para evitar danificar o tecido cerebral.

Não insira a ponta da broca no cérebro. Usando essa técnica, os pesquisadores podem visualizar diferentes proteínas de interesse na mesma célula longitudinalmente em diferentes fases pós-TCE, fornecendo informações sobre a localização, expressão e solubilidade dessa proteína no cérebro de mamíferos após o trauma.

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