16 de junho de 2023
Este protocolo descreve vários métodos que podem ajudar no estudo da biologia da ATG9A, incluindo imunofluorescência seguida de análise de imagem, considerações de superexpressão transitória e investigação do estado de glicosilação da ATG9A usando western blot.
Em nosso laboratório, estamos interessados em entender quais máquinas de lipídios e proteínas estão envolvidas no tráfico de vesículas ATG9A. A ATG9A é crucial na via da autofagia para a formação e maturação do fagoforo. No entanto, recentemente temos estudado o impacto da ATG9A na homeostase das organelas.
O maior desafio é descobrir os detalhes moleculares de como as proteínas e as máquinas de proteínas funcionam. Tecnologias como engenharia de proteínas, baseada em AlphaFold e crio-EM in situ de alta resolução são atualmente as que mais avançam. O trabalho do meu laboratório estabeleceu uma visão fundamental sobre como os autofagossomos são formados.
Esses insights têm sido apoiados por técnicas avançadas de biologia celular molecular, como a aqui descrita. Descrevemos algumas desvantagens do uso de determinadas etiquetas de proteína e como o comportamento do ATG9A pode mudar dependendo da localização da tag. Então, ou N ou C-terminus.
Também sugerimos maneiras de detectar esses inconvenientes e como evitá-los. Além disso, também fornecemos um fluxo de trabalho de quantificação da dispersão de ATG9A de forma reprodutível. Aqui, fornecemos um fluxo de trabalho desde imunofluorescência e imagens ao vivo até aquisição e análise de imagens para a análise da dispersão de ATG9 entre diferentes compartimentos celulares.
E achamos que a padronização de pipelines para análise de imagens é uma prioridade para que os biólogos celulares possam aumentar a confiabilidade e a reprodutibilidade de nossos resultados.
Este estudo investiga os mecanismos do tráfego de vesículas ATG9A e seu papel na autofagia e na homeostase de organelas. Utilizando células HEK293A, os pesquisadores empregaram diversas técnicas de imagem celular para compreender a influência de marcadores proteicos na localização e no comportamento da ATG9A.
A imagem precisa e a quantificação do tráfego de ATG9A abordam um desafio crítico na validação de alvos de autofagia e na redução de riscos mecanicistas para portfólios de descoberta precoce. Fluxos de trabalho padronizados para a localização de proteínas de membrana permitem avaliação reprodutível dos componentes da via de autofagia, apoiando a confiança preditiva em sistemas relevantes para doenças. Essas capacidades sustentam decisões robustas de avanço ou interrupção de programas que visam a modulação da autofagia.
Este fluxo de trabalho de imagem e quantificação posiciona a análise do tráfego de ATG9A na interseção entre descoberta inicial, validação de alvo e pesquisa pré-clínica para programas relacionados à autofagia.