November 10th, 2023
Este protocolo descreve o uso da classificação de células mesenquimais humanas ativadas por fluorescência usando o método de triagem de célula única. Especificamente, o uso de triagem unicelular pode atingir 99% de pureza das células imunofenotipadas de uma população heterogênea quando combinado com uma abordagem multiparamétrica baseada em citometria de fluxo.
Este protocolo detalha um método crucial para caracterizar e purificar com precisão as células-tronco mesenquimais humanas em uma única plataforma, permitindo aplicações eficientes a jusante, como o transplante de células-tronco. É particularmente significativo para laboratórios clínicos que aprimoram ensaios moleculares e citogenéticos por meio da classificação precisa de células tronco projetadas ou naturais. Os métodos comumente usados de isolamento de populações de células-tronco purificadas referem-se a técnicas como separação imunomagnética, gradiente de densidade ou classificação de células microfluídicas.
Uma técnica como a classificação de índice permite que ele seja ligado ao perfil de RNA de célula única que pode extrair informações transcriptômicas de cada célula classificada. Os principais desafios envolvem a manutenção da qualidade da amostra, a otimização das condições de cultura celular, incluindo a densidade e viabilidade celular durante e após a triagem. Além disso, a escolha de tamanhos de bicos adequados para o instrumento e a garantia de acesso oportuno aos classificadores também seriam consideradas.
Este protocolo ilustra um painel de coloração preciso para imunofenotipagem e classificação da população celular desejada. Ele garante a qualidade padronizada da amostra, a viabilidade celular ideal, a densidade para a classificação da população celular e define parâmetros experimentais de classificação no software FACSDiva. Este método permite uma seleção direta e imunofenotipagem da população de células-tronco expressando biomarcadores específicos.
Esta plataforma simples permite uma triagem eficiente com base na população-alvo, auxiliando e obtendo amostras purificadas para aplicações subsequentes a jusante.
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Este protocolo descreve um método para o isolamento preciso e a caracterização de células-tronco mesenquimais humanas (CTMs) usando classificação celular ativada por fluorescência (FACS). O protocolo aumenta a pureza das populações de células-tronco para 99%, facilitando seu uso em aplicações adicionais, como transplante de células-tronco.
Single-cell sorting of immunophenotyped mesenchymal stem cells (MSCs) from human exfoliated deciduous teeth addresses the critical challenge of cellular heterogeneity in regenerative research. By enabling precise isolation of homogeneous MSC subpopulations, this workflow enhances predictive confidence for downstream differentiation and functional assays. The approach supports robust target validation and de-risks early-stage cell therapy and regenerative portfolio decisions.
This single-cell sorting protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by providing high-purity, immunophenotyped MSCs for functional and differentiation assays.