10 de novembro de 2023
Este protocolo descreve o uso da classificação de células mesenquimais humanas ativadas por fluorescência usando o método de triagem de célula única. Especificamente, o uso de triagem unicelular pode atingir 99% de pureza das células imunofenotipadas de uma população heterogênea quando combinado com uma abordagem multiparamétrica baseada em citometria de fluxo.
Este protocolo detalha um método crucial para caracterizar e purificar com precisão as células-tronco mesenquimais humanas em uma única plataforma, permitindo aplicações eficientes a jusante, como o transplante de células-tronco. É particularmente significativo para laboratórios clínicos que aprimoram ensaios moleculares e citogenéticos por meio da classificação precisa de células tronco projetadas ou naturais. Os métodos comumente usados de isolamento de populações de células-tronco purificadas referem-se a técnicas como separação imunomagnética, gradiente de densidade ou classificação de células microfluídicas.
Uma técnica como a classificação de índice permite que ele seja ligado ao perfil de RNA de célula única que pode extrair informações transcriptômicas de cada célula classificada. Os principais desafios envolvem a manutenção da qualidade da amostra, a otimização das condições de cultura celular, incluindo a densidade e viabilidade celular durante e após a triagem. Além disso, a escolha de tamanhos de bicos adequados para o instrumento e a garantia de acesso oportuno aos classificadores também seriam consideradas.
Este protocolo ilustra um painel de coloração preciso para imunofenotipagem e classificação da população celular desejada. Ele garante a qualidade padronizada da amostra, a viabilidade celular ideal, a densidade para a classificação da população celular e define parâmetros experimentais de classificação no software FACSDiva. Este método permite uma seleção direta e imunofenotipagem da população de células-tronco expressando biomarcadores específicos.
Esta plataforma simples permite uma triagem eficiente com base na população-alvo, auxiliando e obtendo amostras purificadas para aplicações subsequentes a jusante.
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Este protocolo descreve um método para o isolamento e caracterização precisos de células-tronco mesenquimais humanas (CTMs) utilizando classificação de células ativadas por fluorescência (FACS). O protocolo aumenta a pureza das populações de células-tronco para 99%, facilitando seu uso em aplicações posteriores, como transplante de células-tronco.
A separação em nível de célula única de células-tronco mesenquimais (MSCs) imunofenotipadas provenientes de dentes decíduos humanos exfoliados aborda o desafio crítico da heterogeneidade celular na pesquisa regenerativa. Ao permitir o isolamento preciso de subpopulações homogêneas de MSCs, este fluxo de trabalho aumenta a confiança preditiva em ensaios funcionais e de diferenciação posteriores. A abordagem sustenta a validação robusta de alvos e reduz os riscos nas decisões iniciais relacionadas à terapia celular e ao portfólio regenerativo.
Este protocolo de separação de células individuais integra-se ao continuum de descoberta a pré-clínico ao fornecer CMMs imunofenotipadas com alta pureza para ensaios funcionais e de diferenciação.