Name: Rastreando a Disseminação de Células Tumorais a partir de Metástases Pulmonares Usando Fotoconversão (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-07-07T14:40:00.000+00:00
Duration: 5 min 23 s
Description: Aprenda a rastrear a disseminação de células tumorais a partir de metástases pulmonares usando fotoconversão seletiva. Este método permite estudar a dinâmica de células de câncer de mama em órgãos terciários.

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Os autores gostariam de agradecer a Wade Koba por sua assistência com microtomografia computadorizada (S10RR029545), Vera DesMarais e Hillary Guzik do Analytical Imaging Facility por seu treinamento e assistência com microscopia, ao Einstein Montefiore Cancer Center, ao National Cancer Institute (P30CA013330, R01CA21248, R01CA255153), ao Gruss Lipper Biophotonics Center, ao Integrated Imaging Program for Cancer Research, uma bolsa de pós-doutorado Sir Henry Wellcome (221647/Z/20/Z) e um Prêmio METAvivor de Desenvolvimento de Carreira.

Todos os procedimentos descritos neste protocolo foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos para o uso de animais vertebrados, incluindo a aprovação prévia pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Faculdade de Medicina Albert Einstein.
Antes da cirurgia, as metástases pulmonares devem ser geradas em camundongos usando células cancerosas que expressam uma proteína fotoconversível/fotocomutável; Vários protocolos para geração de metástases pulmonares foram publicados 26,27,28.
1. Preparo para a cirurgia
<ol><li>Prepare áreas de trabalho distintas para preparação de camundongos (depilação e intubação), cirurgia e recuperação.</li>
	<li>Esterilizar todos os instrumentos cirúrgicos em autoclave. NOTA: Como uma técnica somente de pontas é usada para esta cirurgia, um esterilizador de esferas quentes pode ser usado para reesterilizar instrumentos para procedimentos subsequentes.</li>
	<li>Ligue a plataforma cirúrgica aquecida e deixe-a alcançar e estabilizar a 37-40 °C.</li>
	<li>Induzir anestesia com isoflurano a 5% e, em seguida, baixar o isoflurano para 3%. Realizar testes de pinça dos dedos dos pés periodicamente durante todo o procedimento para avaliar a adequação da anestesia.</li>
	<li>Coloque o camundongo anestesiado em decúbito lateral direito. Remova os pelos da parte superior esquerda do tórax/corpo lateral (ver Figura 1A) aplicando creme depilatório na área. Umedeça um pedaço de gaze ou papel toalha com água e limpe o cabelo e o creme depilatório. Repita conforme necessário até que todo o cabelo seja removido do campo cirúrgico. NOTA: Não deixe o creme depilatório no mouse por mais de 20 s, pois isso pode danificar a pele.</li>
	<li>Amarre um nó duplo ~3 mm acima da base de um cateter 22G com fio de seda 2-0. Deixe caudas de 2 polegadas de comprimento.</li>
	<li>Intubar o camundongo com esse cateter conforme previamente descrito29,30. Para confirmar o sucesso da intubação, conecte um bulbo de insuflação na extremidade do cateter e aperte suavemente. NOTA: Camundongos que foram intubados com sucesso experimentarão elevação torácica bilateral com aperto de bulbo.</li>
	<li>Fixe firmemente a sutura de seda 2-0 ao redor do focinho do rato com um nó duplo para manter o cateter de intubação no lugar.</li>
</ol>2. Cirurgia para exposição do pulmão
OBS: Realizar todas as etapas da cirurgia (Figura 1), inclusive a fotoconversão, em capuz ou gabinete de fluxo laminar para evitar contaminação do campo cirúrgico.
<ol><li>Lave as mãos com sabão antisséptico e use luvas estéreis novas. NOTA: Como uma técnica somente de pontas é usada para esta cirurgia, luvas não estéreis também podem ser usadas. Recomenda-se higienizar luvas não estéreis com um desinfetante à base de álcool.</li>
	<li>Preparar uma dose de 0,1 mg/kg de buprenorfina (0,03 mg/mL) e injetar por via subcutânea para analgesia. NOTA: A analgesia multimodal, incluindo bloqueadores da dor locais e anti-inflamatórios não esteroides, deve ser usada em conjunto com a buprenorfina se não se espera que interfiram com a biologia de interesse.</li>
	<li>Aplique pomada oftálmica em ambos os olhos de camundongo para evitar danos na córnea.</li>
	<li>Posicionar o camundongo em decúbito lateral direito sobre a plataforma cirúrgica aquecida.</li>
	<li>Conecte o ventilador ao cateter de intubação. Tome cuidado para manter o cateter estável, pois mesmo pequenos movimentos podem atrapalhar o posicionamento do cateter e levar a uma ventilação deficiente.</li>
	<li>Observar elevação e queda torácica bilateral, estável e controlada pelo ventilador.</li>
	<li>Fixar os membros à plataforma cirúrgica com fita adesiva. Estabilizar o campo cirúrgico colocando outro pedaço de fita ao longo do dorso do camundongo e prendendo a pele dorsal e a pele à plataforma cirúrgica (Figura 1A).</li>
	<li>Abra os instrumentos cirúrgicos esterilizados.</li>
	<li>Aplicar solução de clorexidina na pele do rato para esterilizar o sítio cirúrgico.</li>
	<li>Identificar a área ~7 mm à esquerda do esterno e ~7 mm acima do rebordo subcostal. Levante a pele sobre esta área com pinça e faça uma incisão circular de ~10 mm usando uma tesoura microdissecante afiada, tomando o cuidado de cortar apenas a pele.</li>
	<li>Retirar o tecido mole sobre a caixa torácica (Figura 1B). Cauterizar os vasos principais em ambas as extremidades com uma caneta cauterizada. NOTA: Além de excisar todo o tecido mole subjacente à incisão circular de 10 mm na pele, a remoção de algum tecido mole não muscular adicional do perímetro facilita as etapas futuras do procedimento.</li>
	<li>Com uma mão, use pinças para elevar a6ª ou7ª costela. Por outro lado, utilizar uma única lâmina da tesoura romba microdissecante - angulada paralela à parede torácica, borda arredondada voltada para baixo - e perfurar cuidadosamente o6º ou7º músculo intercostal para entrar na cavidade torácica (Figura 1C). Gire suavemente a tesoura conforme necessário e corte para fazer uma incisão de ~10 mm no espaço intercostal, tomando cuidado para evitar tocar o tecido pulmonar e cortar as costelas.</li>
	<li>Descarregar delicadamente ar comprimido em direção à incisão intercostal para aumentar o espaço entre o pulmão e a parede torácica. Descarregar o ar primeiro no pulso ou na mão para encontrar a força de fluxo adequada e limpar o bico de quaisquer detritos, depois em rajadas curtas na incisão para evitar lesões pulmonares.</li>
	<li>Com uma mão, use pinças para elevar a6ª ou7ª costela. Com a outra mão, segure o afastador fechado e insira-o na incisão intercostal. Orientar as lâminas do espaçador de forma que fiquem paralelas à parede torácica, tomando cuidado para não tocar o próprio pulmão (Figura 1D).</li>
	<li>Uma vez instalado o afastador, solte lentamente a alça, permitindo que o afastador abra e exponha o pulmão (Figura 1E). A Figura 2A mostra imagens representativas de metástases pulmonares expostas antes da fotoconversão, incluindo sua aparência a olho nu, e nos canais fluorescentes FITC (verde, não fotoconvertido) e TRITC (vermelho, fotoconvertido) usando iluminação de campo amplo.</li>
</ol>3. Fotoconversão de metástases pulmonares
Observação : detalhes e variações sobre as etapas a seguir podem ser encontrados na discussão.
<ol><li>Aplique suavemente 2-3 gotas de PBS estéril aquecido a 37 °C no tecido pulmonar exposto para evitar a secagem.</li>
	<li>Coloque um pedaço de papel alumínio estéril com um pequeno recorte sobre o mouse. Posicione o recorte diretamente sobre o tecido pulmonar exposto e dimensione-o para expor apenas a porção aberta do tórax e alguns milímetros de tecido mole circundante e pele para garantir a fotoconversão apenas do pulmão exposto.</li>
	<li>Coloque uma caixa com um recorte sobre o mouse e papel alumínio. Certifique-se de que o recorte esteja diretamente sobre o pulmão exposto.</li>
	<li>Coloque a lâmpada de fotoconversão diretamente sobre o recorte da caixa (Figura 1F).</li>
	<li>Ligue a lâmpada de fotoconversão e permita 6 min de iluminação contínua do tecido pulmonar exposto. NOTA: Monitore os sinais vitais do mouse usando os programas de monitoramento fisiológico no ventilador.</li>
	<li>Após a fotoconversão, desligue a lâmpada e remova a lâmpada, a caixa e a máscara de folha de alumínio do mouse.</li>
</ol>4. Procedimento para fechamento da parede torácica
<ol><li>Repetir o passo 2.13 para separar o pulmão da parede torácica.</li>
	<li>Segure cuidadosamente a alça do afastador e aperte para fechar as lâminas.</li>
	<li>Manobrar o afastador fechado para fora do espaço intercostal, tomando cuidado para não tocar o tecido pulmonar.</li>
	<li>Com fio de seda 5-0, fechar a incisão intercostal com um padrão de sutura simples e contínua que incorpora a costela em ambos os lados da incisão (Figura 1G). Puxe a sutura com força para garantir que as bordas da ferida sejam aposicionais e restabelecer a integridade da parede torácica (Figura 1H). Tome cuidado para não apertar demais a sutura, pois isso pode rasgar os músculos intercostais.</li>
	<li>Fixar a sutura amarrando as duas extremidades da sutura juntas 4x. Corte a cauda da sutura o mais próximo possível do nó.</li>
	<li>Feche a pele com grampos cirúrgicos.</li>
	<li>Retire o excesso de ar da cavidade torácica com uma seringa de insulina de 1 mL com uma agulha de 28 G acoplada. Localize o processo xifoide tactilmente e insira a agulha logo abaixo, avançando em direção ao ombro esquerdo para entrar na cavidade torácica através do diafragma. Retirar a seringa para ~1 mL; Retire a agulha do rato e descarregue o ar da seringa. Repita este processo 3-4x. OBS: Tome cuidado para não perfurar nenhum órgão interno. Além disso, é importante usar uma seringa de 1 mL e repetir o procedimento 3-4x em vez de usar uma seringa de maior volume e tentar remover todo o ar de uma só vez. O uso de uma seringa de maior volume pode resultar em um vácuo muito grande na cavidade torácica e levar à distensão e danos ao tecido pulmonar.</li>
	<li>Desligue o isoflurano.</li>
	<li>Continue a ventilação com oxigênio a 100% até que o camundongo mostre sinais de despertar.</li>
	<li>Quando o mouse mostrar sinais de despertar, desconecte o cateter de intubação do ventilador, corte a sutura ao redor do focinho e extube o camundongo.</li>
	<li>Destape o mouse e transfira-o para uma gaiola limpa colocada ~2 pés abaixo de uma lâmpada de calor. Monitore até que esteja totalmente recuperado. Se o camundongo apresentar sinais de dificuldade respiratória ou falta de mobilidade, anestesiar-se com isoflurano a 5% por 5 min, garantir anestesia adequada observando perda de reflexos ao pinçar os dedos dos pés e sacrificar por luxação cervical.</li>
	<li>Assim que o camundongo acordar completamente da anestesia e começar a se mover, prepare outra dose de 0,1 mg/kg de buprenorfina e injete-a por via subcutânea para analgesia pós-operatória.</li>
	<li>Após a cirurgia, certifique-se de que os ratos sejam alojados individualmente. Fornecer antibióticos na água potável (enrofloxacina, concentração final 0,4 mg/mL).</li>
	<li>Nos 3 dias seguintes à cirurgia, verifique o rato duas vezes por dia em busca de sinais de angústia. Para o controle da dor, administrar 0,1 mg/kg de buprenorfina (0,03 mg/mL) por via subcutânea a cada 4-6 horas. Eutanasie o rato se ele mostrar sinais de infecção, imobilidade ou dificuldade respiratória. Após o terceiro dia, os ratos podem ser verificados uma vez por dia.</li>
</ol>5. Processamento de amostras e detecção de células fotoconvertidas usando limpeza de tecidos
<ol><li>Entre 3 e 5 dias (ou o tempo desejado) após a cirurgia de fotoconversão, anestesiar o camundongo com isoflurano a 5%, reduzir o isoflurano de 5% para 2,5% após a indução, assegurar anestesia adequada observando perda dos reflexos ao pinçar os dedos dos pés e realizar perfusão transcárdica terminal com 10 mL de PBS à temperatura ambiente, seguido de 10 mL de paraformaldeído a 4% resfriado a 4 °C, conforme descrito anteriormente31.</li>
	<li>Coletar os órgãos de interesse e limpá-los opticamente conforme descrito anteriormente31.</li>
	<li>Obtenha imagens dos tecidos clareados com um microscópio de lâmina de luz, conforme descrito anteriormente31. Alternativamente, coloque os tecidos limpos em uma placa de fundo de vidro e imagem nos canais FITC e TRITC para visualizar células verdes (não fotoconvertidas) e vermelhas (fotoconvertidas) usando um microscópio confocal, disco giratório ou microscópio multifóton.</li>
</ol>6. Processamento de amostras e detecção de células fotoconvertidas usando desagregação tecidual
<ol><li>Anestesiar o camundongo com isoflurano a 5% por 5 min, garantir anestesia adequada observando perda de reflexos ao pinçar os dedos e sacrificar via luxação cervical 3-5 dias após a fotoconversão.</li>
	<li>Coletar e digerir os órgãos de interesse conforme descrito anteriormente13.</li>
	<li>Plaquear os tecidos digeridos e colocá-los em uma incubadora para aderir durante a noite, como descrito anteriormente13.</li>
	<li>No dia seguinte, obter imagens das células plaqueadas nos canais FITC e TRITC para visualizar as células verdes (não fotoconvertidas) e vermelhas (fotoconvertidas), conforme descrito anteriormente13.</li>
</ol>

Examinando a disseminação de células tumorais de metástases pulmonares

<ol><li>Dillekås, H., Rogers, M. S., Straume, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+90%25+of+deaths+from+cancer+caused+by+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Medicine%22%5BJournal%5D)">Are 90% of deaths from cancer caused by metastases.</a> Cancer Medicine. 8 (12), 5574-5576 (2019).</li>
<li>Gupta, G. P., Massagué, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+metastasis%3A+building+a+framework%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cancer metastasis: building a framework.</a> Cell. 127 (4), 679-695 (2006).</li>
<li>Nguyen, D. X., Bos, P. D., Massagué, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metastasis%3A+from+dissemination+to+organ-specific+colonization%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Metastasis: from dissemination to organ-specific colonization.</a> Nature Reviews. Cancer. 9 (4), 274-284 (2009).</li>
<li>Paget, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+distribution+of+secondary+growths+in+cancer+of+the+breast%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Metastasis+Reviews%22%5BJournal%5D)">The distribution of secondary growths in cancer of the breast.</a> Cancer Metastasis Reviews. 8 (2), 98-101 (1989).</li>
<li>Liu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-seeding+circulating+tumor+cells+promote+the+proliferation+and+metastasis+of+human+osteosarcoma+by+upregulating+interleukin-8%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+%26+Disease%22%5BJournal%5D)">Self-seeding circulating tumor cells promote the proliferation and metastasis of human osteosarcoma by upregulating interleukin-8.</a> Cell Death & Disease. 10 (8), 575(2019).</li>
<li>Liu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor-derived+exosomes+promote+tumor+self-seeding+in+hepatocellular+carcinoma+by+transferring+miRNA-25-5p+to+enhance+cell+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Tumor-derived exosomes promote tumor self-seeding in hepatocellular carcinoma by transferring miRNA-25-5p to enhance cell motility.</a> Oncogene. 37 (36), 4964-4978 (2018).</li>
<li>Kim, M. -Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+self-seeding+by+circulating+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Tumor self-seeding by circulating cancer cells.</a> Cell. 139 (7), 1315-1326 (2009).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+self-seeding+by+circulating+tumor+cells+in+nude+mouse+models+of+human+osteosarcoma+and+a+preliminary+study+of+its+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cancer+Research+and+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Tumor self-seeding by circulating tumor cells in nude mouse models of human osteosarcoma and a preliminary study of its mechanisms.</a> Journal of Cancer Research and Clinical Oncology. 140 (2), 329-340 (2014).</li>
<li>Dondossola, E., Crippa, L., Colombo, B., Ferrero, E., Corti, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromogranin+A+regulates+tumor+self-seeding+and+dissemination%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Chromogranin A regulates tumor self-seeding and dissemination.</a> Cancer Research. 72 (2), 449-459 (2012).</li>
<li>Brown, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymph+node+blood+vessels+provide+exit+routes+for+metastatic+tumor+cell+dissemination+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Lymph node blood vessels provide exit routes for metastatic tumor cell dissemination in mice.</a> Science. 359 (6382), 1408-1411 (2018).</li>
<li>Pereira, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymph+node+metastases+can+invade+local+blood+vessels%2C+exit+the+node%2C+and+colonize+distant+organs+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Lymph node metastases can invade local blood vessels, exit the node, and colonize distant organs in mice.</a> Science. 359 (6382), 1403-1407 (2018).</li>
<li>Coste, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematogenous+dissemination+of+breast+cancer+cells+from+lymph+nodes+is+mediated+by+tumor+microenvironment+of+metastasis+doorways%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Oncology%22%5BJournal%5D)">Hematogenous dissemination of breast cancer cells from lymph nodes is mediated by tumor microenvironment of metastasis doorways.</a> Frontiers in Oncology. 10, 571100(2020).</li>
<li>Borriello, L., Condeelis, J., Entenberg, D., Oktay, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breast+cancer+cell+re-dissemination+from+lung+metastases-a+mechanism+for+enhancing+metastatic+burden%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Medicine%22%5BJournal%5D)">Breast cancer cell re-dissemination from lung metastases-a mechanism for enhancing metastatic burden.</a> Journal of Clinical Medicine. 10 (11), 2340(2021).</li>
<li>Ullah, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolutionary+history+of+metastatic+breast+cancer+reveals+minimal+seeding+from+axillary+lymph+nodes%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Evolutionary history of metastatic breast cancer reveals minimal seeding from axillary lymph nodes.</a> The Journal of Clinical Investigation. 128 (4), 1355-1370 (2018).</li>
<li>Gundem, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+evolutionary+history+of+lethal+metastatic+prostate+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The evolutionary history of lethal metastatic prostate cancer.</a> Nature. 520 (7547), 353-357 (2015).</li>
<li>Brown, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phylogenetic+analysis+of+metastatic+progression+in+breast+cancer+using+somatic+mutations+and+copy+number+aberrations%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Phylogenetic analysis of metastatic progression in breast cancer using somatic mutations and copy number aberrations.</a> Nature Communications. 8, 14944(2017).</li>
<li>Kalhor, R., Mali, P., Church, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapidly+evolving+homing+CRISPR+barcodes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Rapidly evolving homing CRISPR barcodes.</a> Nature Methods. 14 (2), 195-200 (2017).</li>
<li>Kalhor, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+barcoding+of+whole+mouse+via+homing+CRISPR%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Developmental barcoding of whole mouse via homing CRISPR.</a> Science. 361 (6405), eaat9804(2018).</li>
<li>McKenna, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-organism+lineage+tracing+by+combinatorial+and+cumulative+genome+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Whole-organism lineage tracing by combinatorial and cumulative genome editing.</a> Science. 353 (6298), aaf7907(2016).</li>
<li>Junker, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Massively+parallel+clonal+analysis+using+CRISPR%2FCas9+induced+genetic+scars%5BTitle%5D)+AND+%22bioRxiv%22%5BJournal%5D)">Massively parallel clonal analysis using CRISPR/Cas9 induced genetic scars.</a> bioRxiv. , 056499(2017).</li>
<li>Zhang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+bone+microenvironment+invigorates+metastatic+seeds+for+further+dissemination%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The bone microenvironment invigorates metastatic seeds for further dissemination.</a> Cell. 184 (9), 2471.e20-2486.e20 (2021).</li>
<li>Kedrin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+imaging+of+metastatic+behavior+through+a+mammary+imaging+window%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Intravital imaging of metastatic behavior through a mammary imaging window.</a> Nature Methods. 5 (12), 1019-1021 (2008).</li>
<li>Grau, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatiotemporally+controlled+induction+of+gene+expression+in+vivo+allows+tracking+the+fate+of+tumor+cells+that+traffic+through+the+lymphatics%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Cancer%22%5BJournal%5D)">Spatiotemporally controlled induction of gene expression in vivo allows tracking the fate of tumor cells that traffic through the lymphatics.</a> International Journal of Cancer. 147 (4), 1190-1198 (2020).</li>
<li>Riihimäki, M., Thomsen, H., Sundquist, K., Sundquist, J., Hemminki, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+landscape+of+cancer+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Medicine%22%5BJournal%5D)">Clinical landscape of cancer metastases.</a> Cancer Medicine. 7 (11), 5534-5542 (2018).</li>
<li>Gurskaya, N. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+of+a+monomeric+green-to-red+photoactivatable+fluorescent+protein+induced+by+blue+light%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Engineering of a monomeric green-to-red photoactivatable fluorescent protein induced by blue light.</a> Nature Biotechnology. 24 (4), 461-465 (2006).</li>
<li>Zhang, G. -L., Zhang, Y., Cao, K. -X., Wang, X. -M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+injection+of+breast+cancer+cells+into+the+mice+mammary+fat+pad%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Orthotopic injection of breast cancer cells into the mice mammary fat pad.</a> Journal of Visualized Experiments. (143), (2019).</li>
<li>Pavese, J., Ogden, I. M., Bergan, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+orthotopic+murine+model+of+human+prostate+cancer+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">An orthotopic murine model of human prostate cancer metastasis.</a> Journal of Visualized Experiments. (79), (2013).</li>
<li>Thies, K. A., Steck, S., Knoblaugh, S. E., Sizemore, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathological+analysis+of+lung+metastasis+following+lateral+tail-vein+injection+of+tumor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Pathological analysis of lung metastasis following lateral tail-vein injection of tumor cells.</a> Journal of Visualized Experiments. (159), (2020).</li>
<li>Das, S., MacDonald, K., Sucie Chang, h-y, Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+mouse+lung+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">A simple method of mouse lung intubation.</a> Journal of Visualized Experiments. (73), e50318(2013).</li>
<li>DuPage, M., Dooley, A. L., Jacks, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conditional+mouse+lung+cancer+models+using+adenoviral+or+lentiviral+delivery+of+Cre+recombinase%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Conditional mouse lung cancer models using adenoviral or lentiviral delivery of Cre recombinase.</a> Nature Protocols. 4 (7), 1064-1072 (2009).</li>
<li>Hsu, C. -W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EZ+Clear+for+simple%2C+rapid%2C+and+robust+mouse+whole+organ+clearing%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">EZ Clear for simple, rapid, and robust mouse whole organ clearing.</a> eLife. 11, e77419(2022).</li>
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</ol>

Os autores declaram não haver conflitos de interesse.

Neste trabalho, descrevemos um protocolo cirúrgico para a fotoconversão seletiva de células tumorais no pulmão. Essa técnica permite que os pesquisadores marquem seletivamente as células tumorais no pulmão e rastreiem seu destino, reidentificando-as em todo o corpo em um momento posterior, facilitando o estudo de metástases de metástases pulmonares. Com esse protocolo, foi possível visualizar células fotoconvertidas no cérebro, fígado e pulmão direito não fotoconvertido de camundongos submetidos à cirurgia com fotoconver...

Metástases são a principal causa de mortes relacionadas ao câncer1. O câncer metastático surge quando células do tumor primário se disseminam por todo o corpo e proliferam em tumores clinicamente detectáveis em órgãos distantes 2,3.
Embora a metástase seja comumente considerada como um processo unidirecional em que as células tumorais se disseminam a partir do tumor primário e colonizam órgãosdistantes4, evidências clínicas e experimentais crescentes sugerem que um processo multidirecional mais complexo está em jogo. Tem sido demonstrado que células tumorais circulantes podem resemear o tumor primário (se ainda existentes)5,6,7,8,9, e células tumorais de focos metastáticos existentes podem viajar para sítios terciários e dar origem a novas lesões10,11,12,13 . De fato, evidências de análises genômicas recentes sugerem que algumas lesões metastáticas não surgem do tumor primário, mas de outras metástases, fenômeno conhecido como "semeadura de metástases de metástases" ou "semeadura de metástase para metástase"14,15,16. A disseminação de metástases para metástases pode perpetuar o processo da doença mesmo após a remoção do tumor primário, aumentando a carga metastática e diminuindo a qualidade de vida e a sobrevida dos pacientes. Portanto, compreender os processos por trás da semeadura de metástase para metástase é crucial para refinar as estratégias de tratamento para pacientes com doença metastática.
Apesar das implicações clínicas potencialmente graves, pouco se sabe sobre a semeadura de metástases para metástases, devido, em parte, a limitações logísticas e tecnológicas. Os estudos em humanos são limitados pela escassez de amostras clínicas. A ressecção clínica e a biópsia de lesões metastáticas são incomuns, assim como a biópsia de órgãos aparentemente saudáveis, onde células tumorais disseminadas únicas podem se esconder. Isso significa que os estudos em humanos normalmente só são possíveis usando amostras de autópsia de indivíduos cujos tumores primários ainda estão em vigor ou foram ressecados anteriormente, mas ainda estão disponíveis para os pesquisadores. Quando essas amostras estão disponíveis, análises de linhagens da progressão do câncer devem ser realizadas por métodos desequenciamento14. No entanto, o sequenciamento em massa de tumores primários e metástases compatíveis não tem a sensibilidade necessária para o rastreamento abrangente da linhagem. Por exemplo, o sequenciamento em massa de uma lesão pode revelar um subclone que é indetectável em qualquer uma de suas lesões pareadas. Nesse caso, não seria possível determinar a origem desse subclone. Pode estar presente no tumor primário ou em outra metástase com frequência abaixo do limite de detecção, ou pode ter surgido após a colonização inicial da lesão metastática em que foi encontrado. O sequenciamento unicelular proporciona maior sensibilidade, mas seu alto custo limita a aplicação em larga escala dessa técnica. A natureza retrospectiva desses estudos também significa que eles fornecem informações limitadas sobre eventos metastáticos transitórios e o cenário da doença em diferentes pontos de tempo.
Em modelos animais, avanços tecnológicos recentes permitem o mapeamento filogenético prospectivo com alta resolução espacial e temporal 17,18,19,20. Essas técnicas utilizam a edição do genoma CRISPR/Cas9 para projetar células com um código de barras em evolução - mutações hereditárias que se acumulam ao longo do tempo. Após o sequenciamento, a linhagem de cada célula pode ser traçada com base no perfil mutacional de seu código de barras 17,18,19,20. De fato, essa tecnologia já está sendo usada para mapear a semeadura de metástase para metástase. Em trabalho recente, Zhang e col. demonstraram que células de câncer de mama e próstata em metástases ósseas se redisseminam do osso para semear metástases secundárias em múltiplosórgãos21.
Embora esses novos métodos tenham grande potencial para gerar mapas filogenéticos detalhados e de alta resolução da progressão do câncer, eles são altamente impraticáveis para aqueles que estudam o momento exato dos eventos de semeadura de metástase para metástase e o que os promove ou impede. Preencher essas lacunas de conhecimento é crucial para refinar nossa compreensão e tratamento do câncer metastático, mas há uma notável falta de tecnologias para facilitar tais estudos. Para atender a essa necessidade, desenvolvemos recentemente - e apresentamos aqui - uma nova técnica que nos permite marcar especificamente células tumorais via fotoconversão em um sítio metastático (o pulmão) e, posteriormente, reidentificá-las em órgãos terciários. Recentemente, com essa técnica, demonstramos que células de câncer de mama se redisseminam a partir de metástases pulmonares e de órgãos terciários desementes13. Esta técnica também pode ser utilizada para determinar o momento dos eventos de redisseminação dentro de uma janela estreita e quantificar as células tumorais redisseminadas, facilitando o estudo do organotropismo das células redisseminadas e o que promove/impede a redisseminação.
Embora a fotoconversão e os sistemas cre/lox localmente induzíveis que substituem permanentemente uma proteína fluorescente por outra tenham sido usados anteriormente para marcar e rastrear células tumorais11,22,23, até onde sabemos, nenhuma abordagem para marcação espaço-temporal de células tumorais foi otimizada para atingir o pulmão - um dos sítios mais comuns de metástase entre homens e mulheres diagnosticados com qualquer um dos 14 cânceres mais comuns24. Qualquer tipo de célula cancerosa e qualquer protocolo para geração de metástases pulmonares podem ser usados com nosso procedimento, tornando-o amplamente útil para pesquisadores de metástases. Todas as células cancerosas usadas para gerar metástases pulmonares devem expressar uma proteína fotoconversível ou fotocomutável, e os pesquisadores podem escolher qual proteína usar com base em suas necessidades e recursos específicos. Neste estudo, usamos 6DT1 células de câncer de mama que expressaram de forma estável a proteína fluorescente fotoconversível verde-vermelho Dendra2 (células 6DT1-Dendra2)25 marcadas com a histona H2B. Foram injetadas 5,0 × 104 células 6DT1-Dendra2 no quarto coxim gorduroso mamário de fêmeas de camundongos Rag2-/-. Os tumores primários foram palpáveis entre 12 e 16 dias após a injeção e não foram ressecados durante todo o experimento. Metástases pulmonares espontâneas se desenvolveram entre 19 e 26 dias após a injeção de células tumorais. As cirurgias de fotoconversão foram realizadas entre 26 e 29 dias após a injeção das células tumorais. Os camundongos foram sacrificados 72 h após a cirurgia devido à carga de metástases pulmonares.

<table><tbody><tr><td>Fonte de alimentação de 0-30 V, 0-3 A</td><td>MPJA</td><td>9616 PS</td><td></td></tr><tr><td>12 VDC, 1,2 A Plugue não regulado MPJA</td><td></td><td>17563 PD</td><td></td></tr><tr><td>28 G Seringa de insulina BD de 1 mL BD</td><td></td><td>BD 329410</td><td></td></tr><tr><td>Lâmpada de matriz de diodos emissores de luz de 400 nm</td><td>LedEngin Inc.</td><td>897-LZPD0UA00</td><td>Lâmpada de fotoconversão, personalizada (peças individuais incluídas abaixo)</td></tr> <tr><td>Sutura de seda trançada 5-0 com agulha de corte RB-1</td><td>Ethicon, Inc.</td><td>774B</td><td></td></tr><tr><td>9 cm 2-0 gravata de seda</td><td>Ethicon, Inc.</td><td>LA55G</td><td></td></tr><tr><td>Baytril 100 (enrofloxacina)</td> <td>Bayer (Santa Cruz Biotechnology)</td> <td>sc-362890Rx</td><td>Antibiótico usado em água potável</td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Hospira</td><td>0409-2012-32</td> Cabos <td>analgésicos</td></tr><tr><td>(conjuntos de cabos) 2.5 JK-ST 72 "ZIP CD</td><td>Mouser</td><td>172-0250</td><td></td></tr><tr><td>Solução de clorexidina</td><td>Durvet</td><td>7-45801-10258-3</td><td>Clorexidina Solução desinfetante</td></tr><tr><td>Vasilha de ar comprimido</td><td>Falcon</td><td>DPSJB-12</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de Micro Dissecação Extra Fina 4" Reta Afiada/Afiada 24 mm</td><td>Roboz Surgical</td><td>RS-5912</td><td>Tesoura Micro Dissecadora Afiada</td></tr><tr><td>Iluminador de fibra óptica</td><td>O.C. White Company</td><td>FL3000</td><td>Usado durante a intubação do mouse</td></tr><tr><td>Kit de Cauterização Gemini</td><td>Harvard Apparatus</td><td>726067</td><td>Caneta de cauterização</td></tr><tr><td>Germinador 500</td><td>CellPoint Scientific</td><td>GER&nbsp; 5287-120V</td><td>Esterilizador de Esferas</td></tr><tr><td>Graefe fórceps</td><td>Roboz</td><td>RS-5135</td><td></td></tr><tr><td>LEDs de alta potência - ultravioleta de cor única 90 watts</td><td>Mouser</td><td>LZP-D0UA00</td><td></td></tr><tr><td>Lâmpada de calor infravermelho</td><td>Braintree Scientific</td><td>HL-1</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano SOL 250 mL PVL</td><td>Covetrus</td><td>29405</td><td>Vaporizador anestésico</td></tr><tr><td>de isoflurano</td><td>SurgiVet</td><td>VCT302</td><td></td></tr><tr><td>Porta-agulhas Jacobson com trava</td> Fita de rotulagem <td>cirúrgica Kalson T1-140</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Refletores de iluminação LED Fisher Scientific</td><td>S68702</td><td></td></tr><tr><td>CREE MP-L SNGL REFLETOR DE LENTE & LOC PIN</td><td>Mouser</td><td>928-C11395TM</td><td></td></tr><tr><td>Aplicadores de ponta de algodão longa</td><td>Medline Industries</td><td>MDS202055</td><td></td></tr><tr><td>Masscool / Soccket 478 / Intel Pentium 4/Celeron até 3.4GHz / Rolamento de esferas / Núcleo de cobre / Ventilador de refrigeração da CPU</td><td>CompUSA</td><td>#S457-1023</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura Micro Dissecante 4" Reta Blunt/Blunt</td><td>Roboz Surgical</td><td>RS-5980</td><td>Tesoura Micro Dissecante</td></tr><tr><td>Ventilador Murine</td><td>Kent Scientific&nbsp;</td><td>PS-02</td><td>PhysioSuite</td></tr><tr><td>Nair Loção Depilatória</td><td>Amazon</td><td>B001RVMR7K</td><td>Creme depilatório</td></tr><tr><td>Personnet mini afastador</td><td>Roboz</td><td>RS-6504</td><td></td></tr><tr><td>Afastador Fosfato Tampolado Salino 1x</td><td>Fisher Scientific</td><td>14190144</td><td>PBS</td></tr><tr><td>pLenti.CAG.H2B-Dendra2.W</td><td>Addgene</td><td>51005</td><td>Dendra2 lentivírus</td></tr><tr><td>Puralube</td><td>Henry Schein Animal Health</td><td>008897</td><td>Lubrificante</td></tr> para <tr><td>os Olhos Suporte de intubação de roedores</td><td>Braintree Scientific</td><td>RIS 100</td><td></td></tr><tr><td>Bulbo de inflação de pulmão para pequenos animais</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-9083</td><td></td></tr><tr><td>Plataforma Cirúrgica Multifuncional SurgiSuite para Camundongos, com Aquecimento</td><td>Kent Scientific</td><td>SURGI-M02</td><td>Plataforma Cirúrgica Aquecida</td></tr> Test <tr><td>Leads 48" TEST LEAD BANANA - Preto</td> Cabos de Teste <td>Mouser</td><td>565-1440-48-0</td><td></td></tr><tr><td>48" CABO DE TESTE BANANA - Vermelho</td><td>Mouser</td><td>565-1440-48-2</td><td></td></tr><tr><td>Cateter traqueal&nbsp;</td><td>Exelint International</td><td>26746</td><td>22 G cateter</td></tr><tr><td>Sistema de fechamento de feridas kit veterinário</td><td>Clay Adams</td><td>IN015</td><td>Kit de grampeamento cirúrgico veterinário</td></tr></tbody></table>

rastreando a disseminação de células tumorais a partir de metástases pulmonares usando fotoconversão

Tracking Tumor Cell Dissemination from Lung Metastases Using Photoconversion

A metástase - a disseminação sistêmica do câncer - é a principal causa de mortes relacionadas ao câncer. Embora a metástase seja comumente pensada como um processo unidirecional em que as células do tumor primário se disseminam e semeiam metástases, as células tumorais em metástases existentes também podem se redisseminare dar origem a novas lesões em sítios terciários, em um processo conhecido como "metástase de metástases" ou "semeadura de metástase para metástase". A semeadura de metástases para metástases pode aumentar a carga metastática e diminuir a qualidade de vida e a sobrevida do paciente. Portanto, compreender os processos por trás desse fenômeno é crucial para refinar as estratégias de tratamento de pacientes com câncer metastático.
Pouco se sabe sobre a semeadura de metástases para metástases, devido, em parte, a limitações logísticas e tecnológicas. Os estudos sobre a semeadura de metástases para metástases dependem principalmente de métodos de sequenciamento, o que pode não ser prático para os pesquisadores que estudam o momento exato dos eventos de semeadura de metástase para metástase ou o que os promove ou impede. Isso evidencia a falta de metodologias que facilitem o estudo da semeadura de metástases para metástases. Para resolver isso, desenvolvemos - e descrevemos aqui - um protocolo cirúrgico murino para a fotoconversão seletiva de metástases pulmonares, permitindo marcação específica e rastreamento do destino de células tumorais que se redisseminam do pulmão para sítios terciários. Até onde sabemos, este é o único método para estudar a redisseminação de células tumorais e a semeadura de metástases para metástases a partir dos pulmões que não requer análise genômica.

Os passos da cirurgia descritos neste protocolo estão ilustrados na Figura 1. Em resumo, o camundongo é anestesiado e os pelos são removidos do tórax esquerdo. O camundongo é então intubado e ventilado, o que permite que o camundongo receba oxigênio enquanto a cavidade torácica está aberta. O tecido mole é removido para expor a caixa torácica, e uma incisão é feita no6º ou7º músculo intercostal. Um afastador é inserido na brecha intercostal e liberado para espalhar as c...

Apresentamos um método para estudo da redisseminação de células tumorais a partir de metástases pulmonares envolvendo um protocolo cirúrgico para fotoconversão seletiva de metástases pulmonares, seguido da identificação de células tumorais redisseminadas em órgãos terciários.

Rastreando a Disseminação de Células Tumorais a partir de Metástases Pulmonares Usando Fotoconversão

Metastasis - the systemic spread of cancer - is the leading cause of cancer-related deaths. Although metastasis is commonly thought of as a unidirectional ...

Evidências recentes sugerem que lesões metastáticas existentes podem atuar como fonte de disseminação de células tumorais que dão origem a novas lesões. Esse processo é chamado de metástase para semeadura de metástases e pode aumentar a carga tumoral e diminuir a qualidade de vida e a sobrevida dos pacientes com câncer. Nosso método foi desenvolvido para estudar a semeadura de metástases e os fatores que a influenciam.Essa técnica ajudou nosso laboratório a estabelecer que as células do câncer de mama podem se espalhar a partir de metástases pulmonares e nos permitiu investigar fatores que promovem ou previnem metástases. Essas descobertas podem orientar pesquisas futuras sobre retardar a progressão do câncer metastático. Os pulmões são um sítio comum de metástase, mas poucas técnicas permitem o estudo da dinâmica das células tumorais in vivo.Esta técnica permite o rastreamento de células tumorais em camundongos vivos, facilitando o estudo de vias de disseminação e terapias específicas para metástases pulmonares. O câncer metastático é muitas vezes uma doença incurável e fatal. Essa técnica pode ser usada para estudar maneiras de reduzir sua disseminação levando a terapias que prolonguem a vida dos pacientes.

tracking-tumor-cell-dissemination-from-lung-metastases-using

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Pesquisa sobre o Câncer

Aqui, descrevemos os métodos para construir, visualizar e quantificar as reações bioluminescentes de ambos vagalume e Renilla enzimas luciferase expressos em células de câncer de mama metastático durante o seu crescimento e...

In vivo dupla Substrato Bioluminescent imagem

Tomografia de fluorescência difusa oferece uma abordagem de custo relativamente baixo e com elevado potencial de todo a...

Tomografia Computadorizada guiada por tomografia difusa no domínio do tempo de fluorescência em pequenos animais para localização de biomarcadores de câncer

O protocolo romance relatado no presente estudo permite a detecção seletiva de metástases pulmonares em resolução única célula em camundongos...

Visualização melhorada de metástases pulmonares em Resolução única célula em Ratos por Combinado<em&gt; In-situ</em&gt; Perfusão do tecido pulmonar e X-Gal coloração de<em&gt; LacZ</em&gt;-Tagged Células Tumorais

Descreve-se um método relativamente simples para a imagiologia ex vivo, ao vivo das interacções de células de estroma tumoral dentro de metástase pulmonar, utilizando repórteres fluorescentes, em ratinhos. Utilizando microscopia confocal de disco rotativo, esta técnica permite a visualização de células vivas durante pelo menos 4 horas e pode ser adaptado para estudar outras condições inflamatórias do pulmão.

Ex vivo de imagens ao vivo de pulmão Metástase e seu microambiente

Descreve-se um método para rotulagem de xenoenxertos estável derivado do doente (PDXs) com partículas lentivirais que expressam a proteína e repórteres de luciferase fluorescente verde. Este método permite acompanhar o crescimento de PDXs no sítio primário, bem como a detecção de metástases espontâneas e experimentais que utilizam em sistemas de imagem in vivo.

Rotulagem de cancro da mama xenoenxertos derivados do paciente com rastreáveis ​​Repórteres para o crescimento de tumores e metástases Estudos

Um modelo animal é necessário decifrar o papel de células tumorais (CTC) em promover a colonização de pulmão durante a metástase do cancro em circulação. Aqui, nós estabelecemos e realizou com sucesso um na vivo do ensaio para teste especificamente a exigência de assembly de fibronectina poliméricos (polyFN) na CTC para a colonização de pulmão.

O estabelecimento de um ensaio de colonização de pulmão para visualização de células de Tumor nos tecidos do pulmão de circulação

Descreveremos um protocolo para pré-clínicos em vivo rastreamento de metástases. É baseado em um repórter de radionuclídeos-fluorescência combinando o symporter de iodeto de sódio, detectado pelo não-invasiva [18F] tetrafluoroborate-animal de estimação e uma proteína fluorescente para confirmação simplificada ex vivo . O método é aplicável para pré-clínicos na vivo celular rastreamento além da biologia do tumor.

Radionuclídeo-fluorescência Gene do repórter de imagem para controlar a progressão do Tumor em modelos de roedores Tumor

Aqui, demonstramos os métodos para a quantificação na vivo de saída de leucócitos de ingênuo, inflamado e pele murino maligna. Realizamos uma Head-to-comparação de dois modelos: transdermal FITC photoconversion de aplicativo e in situ . Além disso, vamos demonstrar a utilidade da photoconversion para controlar a saída de leucócitos de tumores cutâneos.

Quantificar a saída de leucócitos através de vasos linfáticos da pele murino e tumores

A abordagem descrita combina ensaios experimentais de metástase da veia da cauda com imagens de animais vivos in vivo in vivo para permitir o monitoramento em tempo real da formação e crescimento da metástase do câncer de mama, além da quantificação do número e tamanho da metástase nos pulmões.

Uso combinado de ensaios de metástase de veia de cauda e imagens in vivo em tempo real para quantificar a colonização metastática do câncer de mama e carga nos pulmões

Aqui, apresentamos um protocolo para a implantação cirúrgica de uma janela óptica permanentemente habitante para o tórax murino, que permite imagens intravitais de alta resolução do pulmão. A permanência da janela torna-a adequada ao estudo de processos celulares dinâmicos no pulmão, especialmente aqueles que estão evoluindo lentamente, como a progressão metastática das células tumorais disseminadas.

Uma janela permanente para investigar metástase do câncer no pulmão

O manuscrito descreve uma metodologia para o estabelecimento, bem como o monitoramento longitudinal do crescimento de metástases pulmonares espontâneas de tumores de mama injetados ortotopicamente, passíveis de intervenção em todos os estágios da cascata metastática.

In vivo Imagem para medir metástase pulmonar espontânea de células tumorais de mama injetadas ortotopicamente

Aprenda a rastrear a disseminação de células tumorais a partir de metástases pulmonares usando fotoconversão seletiva. Este método permite estudar a dinâmica de células de câncer de mama em órgãos terciários.

Rastreando a Disseminação de Células Tumorais a partir de Metástases Pulmonares Usando Fotoconversão

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