May 24th, 2024
Os métodos para estudar a bioenergética mitocondrial sob concentrações de substrato fisiologicamente relevantes em células imunes são limitados. Fornecemos um protocolo detalhado que usa fluorespirometria de alta resolução para avaliar as mudanças na resposta do potencial da membrana mitocondrial à demanda de energia em células T humanas, monócitos e células mononucleares periféricas.
Para que uma célula funcione e sobreviva após um período de estresse fisiológico, ela precisa ser capaz de atender à demanda de energia necessária para restaurar a homeostase. Em nosso laboratório, procuramos identificar como as mitocôndrias respondem e se adaptam aos estressores nutricionais para entender melhor como as mitocôndrias medeiam o risco de desenvolver doenças. Os métodos atuais para testar a bioenergética do PBMC envolvem a medição da capacidade respiratória após a adição de inibidores e desacopladores.
Esses métodos nos ajudaram a entender mudanças bioenergéticas significativas em PBMCs em diferentes estados de doença. O potencial de membrana é essencial para a síntese de ATP e regula processos como fluxo respiratório, espécies reativas de oxigênio e autofagia. No entanto, ainda temos conhecimento limitado sobre como a respiração mitocondrial e o potencial de membrana respondem juntos às concentrações de substrato fisiológico em PBMCs.
A vantagem dessa técnica é que ela permite uma análise integrada do potencial da membrana mitocondrial e do consumo de oxigênio em PBMCs humanas em resposta ao aumento dos níveis de ADP. Este método permite quantificar a sensibilidade das mitocôndrias a uma mudança na demanda de energia.
Este estudo investiga como as mitocôndrias em células imunológicas humanas, especificamente células T e monócitos, respondem a estressores fisiológicos. Usando fluorespirometria de alta resolução, os pesquisadores avaliam mudanças no potencial de membrana mitocondrial e consumo de oxigênio, fornecendo insights sobre a bioenergética mitocondrial em resposta à demanda de energia.
High-resolution fluorespirometry enables integrated, quantitative assessment of mitochondrial membrane potential and oxygen consumption in human immune cells, directly informing early discovery and target validation for immunometabolic pathways. This approach enhances predictive confidence in evaluating mitochondrial adaptability to physiological energy demands, supporting risk-adjusted decisions in immunometabolic disease research portfolios. The method's ability to interrogate dynamic mitochondrial responses in accessible human cell populations positions it as a reusable capability for translational and preclinical pipeline advancement.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven interrogation of mitochondrial function in human immune cells, supporting both early discovery and translational research workflows.