Name: Isquemia Arterial Visceral Reversível Controlada, Congestão Venosa e Malperfusão Combinada via Laparotomia da Linha Média em Ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-07-05T14:50:00.000+00:00
Duration: 4 min 57 s
Description: Aprenda a induzir malperfusão visceral reversível controlada em ratos via laparotomia. Este método padronizado utiliza pinças microvasculares para isquemia arterial, congestão venosa e estados combinados, permitindo estudos fisiológicos com imagem hiperespectral.

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Todas as atividades com animais descritas aqui foram conduzidas em instalações credenciadas e aprovadas pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) do Conselho Regional de Baden-Württemberg em Karlsruhe, Alemanha (35-9185.81/G-62/23). Os animais experimentais foram manejados de acordo com os padrões institucionais, as leis alemãs para uso e cuidados com os animais, as diretrizes do Conselho da Comunidade Europeia (2010/63/UE) e as diretrizes ARRIVE. Ratos machos da raça Sprague Dawley com peso de ordem de 400 gramas foram utilizados após uma semana de aclimatação. Os detalhes dos reagentes e dos equipamentos utilizados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais.
1. Anestesia e analgesia
<ol><li>Anestesiar o rato com a medicação seguindo os protocolos institucionais. O isoflurano é recomendado para indução de sedação seguida por uma injeção intravenosa de 100 mg / kg de cetamina em peso corporal e 4 mg / kg de xilazina em peso corporal. Analgesia adicional pode ser alcançada com uma injeção s.c. de 5 mg / kg de carprofeno em peso corporal. Para detalhes, consulte Studier-Fischer et al.13.</li>
	<li>Aplique pomada oftálmica nos olhos para evitar o ressecamento.</li>
	<li>Garanta a profundidade analgésica adequada usando o teste de pinça do dedo do pé com pinça cirúrgica.</li>
	<li>Reavalie e ajuste regularmente a profundidade da anestesia durante a cirurgia.</li>
</ol>2. Preparação do procedimento
<ol><li>Prepare a mesa de esfregar com todos os materiais e instrumentos necessários, incluindo pinças microvasculares liberáveis e o aplicador (Figura 2A-C), pinça de overholt romba, tesoura de preparação fina e pinça.<ol><li>Prepare os ganchos de preparação cirúrgica dobrando cânulas em um ângulo de 135° a 1 cm em relação à ponta e conecte-as a tubos de perfusão de plástico via Luer-lock prontos para aplicar tensão usando uma pinça cirúrgica de mosquito (Figura 2D, E).</li>
	</ol></li>
	<li>Prepare um aparelho de exposição cirúrgica para roedores, incluindo hastes de fixação em forma de Y e uma almofada de aquecimento, conforme especificado em Studier-Fischer et al.13.</li>
	<li>Certifique-se de que a oxigenação adequada seja alcançada por meio da inalação de oxigênio a 100% usando uma máscara facial neonatal (Figura 2F).</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67171/67171fig02.jpg"> Figura 2: Configuração experimental e animal. (A) Instrumentos e materiais cirúrgicos necessários. (B, C) Pinça microvascular removível e aplicador. (D, E) Uma cânula dobrada conectada a um tubo de perfusão é usada como gancho de preparação cirúrgica. (F, G) Modelo de rato oxigenado com máscara facial e barbeado. (H) Incisão cutânea em todo o comprimento abdominal. (I-M) ressecção do xifóide e hemostasia. (N-Q) Mobilização hepática e dissecção do ligamento falciforme (seta 1). (R) Aplicação de ganchos de preparação e suportes de metal para exposição de órgãos após laparotomia. (S) Exposição visceral total dos grandes vasos abdominais com ganchos rombos (seta 2), alças de silicone (seta 3) e compressa cirúrgica (seta 4). (T, U) Aorta abdominal e veia cava. (V) Instrumentos de preparação atraumática. (W) Troca de algodão umidificado (seta 5). (X) Compressa umidificada em pinça (seta 6) e pinças de overholt rombas (seta 7). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67171/67171fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
3. Preparação cirúrgica
<ol><li>Faça a barba do local de acesso cirúrgico para uma laparotomia de linha média (Figura 2G). Realizar uma incisão cutânea sobre o comprimento abdominal desejado, ou seja, cerca de 7 cm (Figura 2H), avançar com a laparotomia dissecando a fáscia e costurar os ganchos de preparação cirúrgica com tubos plásticos acoplados e pinças cirúrgicas contra mosquitos através da pele. Exponha o sítio cirúrgico usando os ganchos de preparação cirúrgica, aplicando tensão no tecido.</li>
	<li>Certifique-se de que o peritônio seja dissecado cranialmente apenas até alguns milímetros abaixo do início do esterno, deixando parte do peritônio intacto. Colocar uma parte de uma compressa cirúrgica abaixo do esterno (Figura 2I) e ressecar o xifóide com uma tesoura de material resistente. Aplique pressão na área de ressecção usando a compressa cirúrgica para obter hemostasia suficiente dessa região bem perfundida (Figura 2I-M).</li>
	<li>Mobilize o fígado dorso-caudalmente para expor o ligamento falciforme (Figura 2N) e disseque o ligamento (Figura 2O-Q).</li>
	<li>Para o controle hemostático, dependendo de onde o pinçamento dos vasos maiores deve ser realizado, realizar uma exposição visceral completa dos vasos maiores abdominais (Figura 2R) e dos vasos pendurados com alças de silicone (Figura 2S-U). Apenas instrumentos de preparação atraumática devem ser usados (Figura 2V), como trocas de algodão umidificado (Figura 2W), compressa umidificada em fórceps e grampos overholt rombos (Figura 2X).</li>
</ol>4. Preparo e pinçamento da aorta abdominal para isquemia arterial
<ol><li>Realize uma medialização esquerda dos órgãos abdominais superiores usando instrumentos de preparação atraumática para obter acesso à artéria adrenal esquerda (Figura 3A-D).</li>
	<li>Identificar o local pulsátil tipicamente medial à extensão cranial da artéria adrenal esquerda, indicando o trajeto da aorta (Figura 3E). Avance através do tecido mole usando pinças de overholt para dissecção romba para acessar a aorta abdominal (Figura 3F,G).</li>
	<li>Tunelamente a aorta abdominal na extremidade mais cranial usando pinças de overholt rombas (Figura 3H-L) e estilingue a aorta usando uma alça de vaso de silicone (Figura 3M-T).</li>
	<li>Aplique uma pinça microvascular de aneurisma adequada usando a alça de silicone para luxar levemente a aorta ventralmente e guie a pinça microvascular do aneurisma ao longo da alça de silicone para garantir o pinçamento aórtico isolado (Figura 3U). Dependendo da questão da pesquisa, o grampo microvascular pode ser liberado novamente.</li>
</ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67171/67171fig03.jpg"> Figura 3: Preparo e pinçamento da aorta abdominal. (A) Exposição de órgãos viscerais. (BE) Medialização esquerda dos órgãos abdominais superiores usando instrumentos de preparação atraumática para obter acesso à artéria adrenal esquerda. (F, G) Dissecção romba medial da artéria adrenal esquerda no local pulsátil (seta cinza) para acesso à aorta abdominal. (H-L) Tunelização da aorta abdominal com pinças de overholt rombas. (MT) Lançar a aorta usando uma alça de vaso de silicone. (U) Aplicação de uma pinça microvascular de aneurisma liberável usando a alça de silicone como orientação. (V-Z) Visualização da artéria celíaca (laranja) em referência à aorta (vermelho) e à alça do vaso de silicone. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67171/67171fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
5. Preparo e pinçamento da veia cava abdominal supra-hepática para congestão venosa
<ol><li>Mobilize o fígado para a direita usando instrumentos de preparação atraumática, disseque bruscamente os ligamentos hepáticos e lateralize ainda mais o fígado (Figura 4A-C).</li>
	<li>Abra o espaço retro-hepático na cruz esquerda do diafragma usando grampos de overholt rombos (Figura 4D-G).</li>
	<li>Tunelamente a veia caval usando grampos overholt rombos ( Figura 4H-K ) e estilingue a veia caval usando alças de vaso de silicone ( Figura 4L-O ).</li>
	<li>Aplique uma pinça microvascular de aneurisma adequada usando a alça de silicone para luxar levemente a veia cava ventralmente e guie a pinça microvascular do aneurisma ao longo da alça de silicone para garantir o pinçamento isolado da veia cava (Figura 4R).</li>
</ol><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67171/67171fig04.jpg"> Figura 4: Preparo e pinçamento da veia cava abdominal supra-hepática. (A) Exposição de órgãos viscerais cranianos. (B) Mobilização tecidual-protetora do fígado e dissecção aguda dos ligamentos hepáticos usando instrumentos de preparação atraumática. (C) Lateralização do fígado. (DG) A abertura do espaço retro-hepático e preparação na cruz esquerda do diafragma. (H-K) Tunelização da veia caval (azul) usando pinças de overholt rombas. (L-O) Lançar a veia caval usando alças de vaso de silicone. (P, Q) Esforço de tensão para restringir provisoriamente o fluxo sanguíneo caval. (R) Aplicação de uma pinça microvascular de aneurisma liberável usando a alça de silicone como orientação. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67171/67171fig04large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
6. Pinçamento da aorta abdominal e veia cava abdominal supra-hepática para má perfusão combinada
<ol><li>Execute as etapas acima até que a aorta e a veia cava estejam presas com alças de vaso de silicone. Avance com a aplicação da pinça microvascular do aneurisma para ambos os vasos novamente usando a alça de silicone para orientação. Recomenda-se pinçar a aorta primeiro e minimizar o tempo necessário até o pinçamento caval subsequente para apenas alguns segundos. NOTA: Dependendo do cenário desejado e do objetivo da pesquisa, a má perfusão pode ser continuada ou liberada após um período de tempo definido, e os animais podem ser sacrificados por cardiectomia afiada (seguindo protocolos aprovados institucionalmente) para aplicações de não sobrevivência ou receber fechamento abdominal gradual usando suturas cirúrgicas em caso de acompanhamentos planejados e experimentos de sobrevivência. Para o presente estudo, os animais foram eutanasiados.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Modelo de rato para estudos de má perfusão de órgãos viscerais

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<li>Boys, J. A., Toledo, A. H., Anaya-Prado, R., Lopez-Neblina, F., Toledo-Pereyra, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+dantrolene+on+ischemia-reperfusion+injury+in+animal+models%3A+A+review+of+outcomes+in+heart%2C+brain%2C+liver%2C+and+kidney%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Investig+Med%22%5BJournal%5D)">Effects of dantrolene on ischemia-reperfusion injury in animal models: A review of outcomes in heart, brain, liver, and kidney.</a> J. Investig Med. 58 (7), 875-882 (2010).</li>
<li>Orihashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenteric+ischemia+in+acute+aortic+dissection%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Today%22%5BJournal%5D)">Mesenteric ischemia in acute aortic dissection.</a> Surg Today. 46 (5), 509-516 (2016).</li>
<li>Byard, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+mesenteric+ischemia+and+unexpected+death%5BTitle%5D)+AND+%22J+Forensic+Leg+Med%22%5BJournal%5D)">Acute mesenteric ischemia and unexpected death.</a> J Forensic Leg Med. 19 (4), 185-190 (2012).</li>
<li>Łagosz, P., Sokolski, M., Biegus, J., Tycinska, A., Zymlinski, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elevated+intra-abdominal+pressure%3A+A+review+of+current+knowledge%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Clin+Cases%22%5BJournal%5D)">Elevated intra-abdominal pressure: A review of current knowledge.</a> World J Clin Cases. 10 (10), 3005-3013 (2022).</li>
</ol>

Embora as implicações da privação de perfusão tecidual na forma de condições de má perfusão tecidual local ou sistêmica tenham sido reconhecidas há muito tempo, elas persistem como uma das principais causas de morbidade e mortalidade nos Estados Unidos e na Europa1. Essas condições de má perfusão são a terceira principal causa de degradação tecidual, após malignidade e inflamação séptica, mas têm um espectro de origens muito mais amplo em comparação com as duas últimas2.
Esse espectro varia de mecanismos locais, como fibrilação atrial com oclusão tromboembólica, vasoconstrição e dissecção iatrogênica ou traumática, a mecanismos sistêmicos, como insuficiência ou choque cardíaco, sepse, hipovolemia e fenômenos de roubo. Esses diversos mecanismos estão subjacentes a uma variedade de condições médicas e cirúrgicas. A significativa morbidade e mortalidade associadas a essas condições direcionaram a atenção médica para procedimentos para restabelecer o fluxo sanguíneo para tecidos mal perfundidos, a fim de prevenir a necrose e restaurar a função do órgão ao longo das décadas3.
Esse esforço de pesquisa resultou em uma variedade de soluções farmacêuticas, médicas e cirúrgicas para restaurar a perfusão fisiológica de órgãos, incluindo avanços na cirurgia de revascularização4, procedimentos endovasculares5, oxigenação por membrana extracorpórea6,7, perfusão de máquina de órgãos durante o transplante8e substitutos artificiaisdo sangue9.
No entanto, apesar desses desenvolvimentos significativos, a má perfusão, especialmente de órgãos viscerais, continua sendo uma questão premente no atendimento ao paciente, e a demanda por mais pesquisas sobre processos biomédicos e estratégias de resgate é alta. Modelos biológicos válidos são de extrema importância para permitir esse tipo de pesquisa. Devido aos aspectos multifatoriais da pesquisa de perfusão tecidual, que incluem não apenas biologia celular, mas também microanatomia vascular e reologia, um modelo apropriado requer um grau de complexidade biológica que apenas um organismo modelo completo pode fornecer, tornando os roedores o modelo óbvio de escolha.
A má perfusão tecidual pode ser diferenciada em três condições distintas: isquemia arterial isolada, congestão venosa isolada e má perfusão combinada10. Cenários clinicamente relevantes para essas condições incluem (1) Isquemia arterial: fibrilação atrial com oclusão tromboembólica, êmbolos sépticos, vasoconstrição, dissecção ou pinçamento vascular iatrogênico ou traumático, insuficiência ou choque cardíaco, dissecção aórtica, sepse e hipovolemia, obstrução arterial extrema devido a constrição externa, embolia da artéria pulmonar, doenças oclusivas vasculares arteriais crônicas ou fenômenos de roubo; (2) Congestão venosa: dissecção ou pinçamento vascular iatrogênico ou traumático, insuficiência cardíaca, fibrose hepática ou cirrose, obstrução venosa por constrição externa, trombose venosa, insuficiência venosa e síndrome de Budd-Chiari; (3) Má perfusão combinada: Combinações das condições acima e estágios avançados das condições acima mencionadas, como congestão venosa secundária devido à fibrose induzida por isquemia ou isquemia arterial secundária devido à retenção induzida por congestão, bem como condições específicas de órgãos, como inflamação isquêmica (por exemplo, colite isquêmica)11,12.
Este artigo, portanto, tem como objetivo fornecer um modelo passo a passo para induzir isquemia arterial visceral controlada e reversível, congestão venosa e má perfusão combinada via laparotomia da linha média em ratos para aplicações de sobrevivência e não sobrevivência, conforme ilustrado na Figura 1. O modelo experimental oferece um ambiente controlado para estudar a dinâmica multifacetada da isquemia arterial, congestão venosa e suas sequelas combinadas, emulando cenários clinicamente relevantes encontrados em várias condições.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67171/67171fig01.jpg"> Figura 1: Visão geral do protocolo. Representação esquemática da anatomia vascular do rato e representação do local de pinçamento (seta cinza). (A) Perfusão fisiológica. (B) Isquemia arterial. (C) congestão venosa. (D) Má perfusão combinada. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67171/67171fig01large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

<table><tbody><tr><td>Pinça de preparação atraumática</td><td>Aesculap</td><td>FB395R</td><td>DE BAKEY ATRAUMATA pinça atraumática, reta</td></tr><tr><td>Grampo de overholt rombudo</td><td>Aesculap</td><td>BJ012R</td><td>BABY-MIXTER braçadeira de preparação e ligadura, dobrada, 180 mm</td></tr><tr><td>Cânula</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>301300</td><td>BD Microlance 3 cânula 20 G</td></tr><tr><td>Hastes de fixação</td><td>legefirm</td><td>500343896</td><td>diapasões usados como hastes de fixação de metal em forma de Y</td></tr><tr><td>Almofada de aquecimento</td><td>Royal Gardineer</td><td>IP67</td><td>Royal Gardineer Almofada de aquecimento Tamanho S, 20 Watt</td></tr><tr><td>Tubo perfusor de plástico</td><td>M. Schilling GmbH</td><td>S702NC150</td><td>tubo de conexão COEX 150 cm</td></tr><tr><td>Abraçadeira de silicone</td><td>SERAG WIESSNER</td><td>SL26</td><td>Abraçadeira de silicone 2,5 mm vermelho</td></tr><tr><td>Rato Spraque Dawley</td><td>Janvier Labs</td><td>RN-SD-M</td><td>Rato Spraque Dawley</td></tr><tr><td>Chapa de aço</td><td>Maschinenbau Feld GmbH</td><td>C010206</td><td>Chapa galvanizada, 40 x 50 cm, espessura 4,0 mm</td></tr><tr><td>Clipe Yasargil</td><td>Aesculap</td><td>FE795K</td><td>YASARGIL Aneurisma Clip System Phynox Clip Temporário (Padrão) Aplicador</td></tr> de <tr><td>clipe Yasargil</td><td>Aesculap</td><td>FE558K</td><td>YASARGIL Aplicador de clipe de aneurisma Phynox (Padrão)</td></tr></tbody></table>

isquemia arterial visceral reversível controlada, congestão venosa e malperfusão combinada via laparotomia da linha média em ratos

Controlled Reversible Visceral Arterial Ischemia, Venous Congestion and Combined Malperfusion via Midline Laparotomy in Rats

Este protocolo foi realizado em 10 ratos machos (peso médio de 403 g ± 26 g) em um cenário de não sobrevivência. A taxa de sucesso foi definida pela sobrevida ao longo de 20 min após pinçamento arterial, pinçamento venoso e pinçamento combinado por 5 min com 10 min de reperfusão, cada um dos quais foi de 100%. A duração média do preparo desde a incisão na pele até que ambos os vasos fossem pendurados com alças de silicone foi de 11 min 45 s ± 3 min 23 s.
Para validação dos 4 diferentes estados de má perfusão, os parâmetros de índice para oxigenação (StO2) e perfusão (NIR) foram medidos usando imagens hiperespectrais (HSI) em 5 órgãos viscerais (Figura 5).
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67171/67171fig05.jpg"> Figura 5: Validação do modelo de má perfusão. (A,B) Quantificação dos valores de oxigenação e perfusão do HSI em quatro estados de perfusão diferentes e cinco órgãos viscerais diferentes com n = 10 animais. (C-F) Imagens de índice RGB e codificadas por cores de gravações HSI contendo órgãos viscerais em 4 estados de perfusão diferentes. As barras de erro indicam o desvio padrão. A barra de escala representa 5 cm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67171/67171fig05large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
Os valores foram fornecidos em unidades arbitrárias e mostraram uma diminuição significativa nos estados de má perfusão em comparação com o estado fisiológico do órgão (Tabela 1). Os resultados hiperespectrais estão de acordo com publicações recentes indicando que a viabilidade e a perfusão do tecido podem ser avaliadas usando valores de corte HSI StO2 específicos do órgão que correspondem aos valores observados neste estudo14,15. Exemplarmente para o estômago, foram 64,1% (±9,4%) para perfusão fisiológica, 43,1% (±7,4%) para isquemia arterial, 40,5% (±5,4%) para congestão venosa e 39,3% (±4,5%) para má perfusão combinada.
Como esses foram experimentos de não sobrevivência, não há dados experimentais sobre os resultados de longo prazo dos animais. No entanto, outros estudos relatam sobrevida de 100% e 57% em 24 h para ratos submetidos a 30 min e 60 min de pinçamento da artéria mesentérica superior16,17 e correlacionam com sucesso com os níveis séricos da proteína de choque térmico 70. Consequentemente, este pode ser um método possível para avaliar os resultados em futuros estudos de sobrevida de acordo com diferentes tempos de pinçamento.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>parâmetro</td>
			<td>órgão</td>
			<td>referência</td>
			<td>isquemia arterial</td>
			<td>congestão venosa</td>
			<td>Má perfusão combinada</td>
		</tr><tr><td rowspan="5">StO2</td>
			<td>estômago</td>
			<td>64,1% (±9,4%)</td>
			<td>43,1% (±7,4%)</td>
			<td>40,5% (±5,4%)</td>
			<td>39,3% (±4,5%)</td>
		</tr><tr><td>intestino delgado</td>
			<td>78,4% (±5,1%)</td>
			<td>44,8% (±5,5%)</td>
			<td>38,0% (±7,9%)</td>
			<td>41,9% (±6,9%)</td>
		</tr><tr><td>cólon</td>
			<td>74,6% (±5,0%)</td>
			<td>56,0% (±6,3%)</td>
			<td>51,3% (±4,1%)</td>
			<td>51,8% (±2,9%)</td>
		</tr><tr><td>fígado</td>
			<td>39,5% (±9,7%)</td>
			<td>16,9% (±2,6%)</td>
			<td>9,5% (±0,8%)</td>
			<td>9,3% (±1,1%)</td>
		</tr><tr><td>rim</td>
			<td>71,0% (±3,8%)</td>
			<td>26,3% (±3,0%)</td>
			<td>18,6% (±2,5%)</td>
			<td>21,2% (±2,6%)</td>
		</tr><tr><td rowspan="5">NIR</td>
			<td>estômago</td>
			<td>20,0% (±9,3%)</td>
			<td>8,3% (±6,7%)</td>
			<td>6,8% (±5,1%)</td>
			<td>7,5% (±8,1%)</td>
		</tr><tr><td>intestino delgado</td>
			<td>38,6% (±17,4%)</td>
			<td>12,9% (±11,0%)</td>
			<td>6,3% (±6,5%)</td>
			<td>5,7% (±5,9%)</td>
		</tr><tr><td>cólon</td>
			<td>12,6% (±13,7%)</td>
			<td>5,3% (±8,7%)</td>
			<td>3,8% (±7,5%)</td>
			<td>2,6% (±4,7%)</td>
		</tr><tr><td>fígado</td>
			<td>40,4% (±13,1%)</td>
			<td>0,3% (±0,7%)</td>
			<td>0,0% (±0,1%)</td>
			<td>0,0% (±0,0%)</td>
		</tr><tr><td>rim</td>
			<td>10,4% (±5,2%)</td>
			<td>0,0% (±0,0%)</td>
			<td>0,0% (±0,1%)</td>
			<td>0,0% (±0,0%)</td>
		</tr></tbody></table>Tabela 1: Parâmetros teciduais. Valores de oxigenação HIS StO2 e perfusão NIR em unidades arbitrárias em 5 órgãos viscerais e 4 estados de perfusão diferentes.

Isquemia Arterial Visceral Reversível Controlada, Congestão Venosa e Malperfusão Combinada via Laparotomia da Linha Média em Ratos

Besides sepsis and malignancy, malperfusion is the third leading cause of tissue degradation and a major pathomechanism for various medical and surgical ...

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Isquemia Arterial Visceral Reversível Controlada, Congestão Venosa e Malperfusão Combinada via Laparotomia da Linha Média em Ratos (Vídeo) | JoVE Journal

Isquemia Arterial Visceral Reversível Controlada, Congestão Venosa e Malperfusão Combinada via Laparotomia da Linha Média em Ratos

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